TGF-β對(duì)膀胱癌組織中巨噬細(xì)胞來(lái)源腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞的影響及其機(jī)制

蒲石 沈成全 胡鼎 趙新釗 秦瑞澤 劉昌學(xué) 王永華

［摘要］ 目的

探討TGF-β對(duì)膀胱癌組織中巨噬細(xì)胞來(lái)源腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞（CAF）的影響及其機(jī)制。

方法 采用Kaplan-Meier法分析膀胱癌組織中α-SMA+CD68+CAF表達(dá)水平與患者的總生存率（OS）的關(guān)系；采用免疫熒光技術(shù)檢測(cè)α-SMA+CD68+CAF在膀胱癌組織中的浸潤(rùn)情況；采用Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)TGF-β對(duì)α-SMA+CD68+CAF體外誘導(dǎo)作用。同時(shí)構(gòu)建膀胱癌小鼠模型，采用免疫熒光技術(shù)和免疫組化法檢測(cè)TGF-β對(duì)膀胱癌小鼠體內(nèi)α-SMA+CD68+CAF的誘導(dǎo)作用及對(duì)CD8+T細(xì)胞浸潤(rùn)的影響。

結(jié)果 膀胱癌組織中α-SMA與CD68的表達(dá)呈正相關(guān)，且α-SMA+CD68+CAF高表達(dá)的患者預(yù)后更差（χ2=9.05，P<0.05）。免疫熒光技術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示，膀胱癌組織中存在α-SMA+CD68+CAF。Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果顯示，TGF-β可顯著促進(jìn)α-SMA+CD68+CAF的生成。膀胱癌小鼠模型體內(nèi)實(shí)驗(yàn)顯示，TGF-β可促進(jìn)膀胱癌組織中α-SMA+CD68+CAF的生成，從而抑制CD8+T細(xì)胞的浸潤(rùn)。

結(jié)論 TGF-β可顯著促進(jìn)膀胱癌組織中巨噬細(xì)胞來(lái)源CAF的生成，從而抑制CD8+T細(xì)胞的浸潤(rùn)。

［關(guān)鍵詞］ 轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β；癌相關(guān)成纖維細(xì)胞；膀胱腫瘤；腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞；免疫耐受；CD8陽(yáng)性T淋巴細(xì)胞；細(xì)胞浸潤(rùn)

［中圖分類(lèi)號(hào)］ R737.14??? ［文獻(xiàn)標(biāo)志碼］ A

隨著近年來(lái)腫瘤免疫治療的興起，以PD-1/PD-L1為代表的免疫檢查點(diǎn)抑制劑在腫瘤免疫治療中取得了良好的效果，但對(duì)于晚期膀胱癌患者存在著免疫治療反應(yīng)低及耐藥等問(wèn)題，限制了其在臨床中的應(yīng)用[1]。既往研究發(fā)現(xiàn)膀胱癌免疫治療耐藥的產(chǎn)生與免疫抑制腫瘤微環(huán)境的形成有關(guān)[2]，而腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞（CAF）是免疫抑制腫瘤微環(huán)境形成的重要因素之一[3]，但膀胱癌中CAF的具體來(lái)源尚不清楚。近年來(lái)在腫瘤微環(huán)境中發(fā)現(xiàn)了表達(dá)成纖維標(biāo)志物的腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞（TAM）[4-6]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β（TGF-β）、TAM、CAF與膀胱癌患者免疫治療耐藥密切相關(guān)[7-8]，由此推測(cè)TGF-β可通過(guò)誘導(dǎo)TAM向CAF轉(zhuǎn)化，參與膀胱癌免疫治療耐藥性的產(chǎn)生。本研究通過(guò)體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)觀察膀胱癌組織中TGF-β對(duì)巨噬細(xì)胞來(lái)源的CAF的影響，探討膀胱癌中TAM向CAF轉(zhuǎn)化的相關(guān)機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 膀胱癌組織中α-SMA與CD68表達(dá)相關(guān)性及Kaplan-Meier（K-M）生存曲線(xiàn)分析

通過(guò)TCGA-BLCA數(shù)據(jù)庫(kù)（https：//portal.gdc.cancer.gov/）收集膀胱癌患者的臨床信息，以及膀胱癌組織中α-SMA與CD68 mRNA的表達(dá)水平，并通過(guò)Spearman方法分析α-SMA與CD68表達(dá)水平的相關(guān)性。根據(jù)CD68高表達(dá)膀胱癌組織中的α-SMA表達(dá)水平將患者分為高、低表達(dá)組，采用K-M法分析α-SMA+CD68+CAF表達(dá)水平與患者的總生存率（OS）的關(guān)系。

1.2 儀器與試劑

鼠源性膀胱癌細(xì)胞MB49購(gòu)自武漢普諾賽生命科技有限公司。12只4周齡的C57B16/N小鼠購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司。α-SMA、CD68、CD8、GAPDH抗體購(gòu)自武漢三鷹生物技術(shù)有限公司，TGF-β、重組小鼠巨噬細(xì)胞集落刺激因子（M-CSF）購(gòu)自上海MedChemExpress LLC，十二烷基硫酸鈉（SDS）裂解液、二喹啉甲酸（BCA）試劑盒購(gòu)自美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司，HRP偶聯(lián)二抗購(gòu)自美國(guó)Jackson Immuno Research公司。FITC、PE抗體購(gòu)自艾博抗（上海）貿(mào)易有限公司。熒光顯微鏡購(gòu)買(mǎi)于美國(guó)Olympus life science公司，EVOS FL Auto顯微鏡購(gòu)買(mǎi)于加拿大Thermo Fisher公司。

1.3 臨床樣本的收集

收集2023年5月—2023年8月于青島大學(xué)附屬醫(yī)院泌尿外科行全膀胱切除術(shù)的10例患者的膀胱癌組織及其正常膀胱組織，正常膀胱組織距癌灶邊緣5 cm以上。隨后將提取的膀胱癌組織及正常膀胱組織經(jīng)脫水、石蠟包埋后制成5 μm厚的石蠟切片?；颊咝g(shù)前均未接受過(guò)新輔助化療、放療或免疫治療。

1.4 小鼠骨髓源性巨噬細(xì)胞（BMDM）向CAF的轉(zhuǎn)化誘導(dǎo)

4周齡C57B16/N小鼠脫頸處死后，用1 mL注射器從其脛骨、股骨和髂骨骨髓腔中抽取骨髓和細(xì)胞混合液，離心后收集骨髓細(xì)胞。將骨髓細(xì)胞接種于含有10%熱滅活胎牛血清（FBS）和含50 μg/L M-CSF的DMEM/F12培養(yǎng)基中，培養(yǎng)7 d后，按照相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道的方法[9]，通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞中CD68+巨噬細(xì)胞的濃度，當(dāng)超過(guò)95%的細(xì)胞為CD68+細(xì)胞時(shí)，則認(rèn)為BMDM培養(yǎng)成功。

將BMDM細(xì)胞接種于24孔板中，分為對(duì)照組和TGF-β組，TGF-β組中每孔加入含10% FBS及5 μg/L TGF-β的DMEM培養(yǎng)基150 μL，對(duì)照組中每孔加入含10% FBS以及PBS的DMEM培養(yǎng)基150 μL，將24孔板置于37 ℃含體積分?jǐn)?shù)0.05的CO2恒溫培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)5 d，用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.5 Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)BMDM細(xì)胞中α-SMA蛋白表達(dá)量

取培養(yǎng)5 d后的上述兩組BMDM細(xì)胞，吸出24孔板中的原培養(yǎng)液，每孔加入1 mmol/L SDS裂解液裂解細(xì)胞，收集細(xì)胞懸液并12 000 r/min離心30 min，分離上清液，使用BCA試劑盒檢測(cè)各樣本中的蛋白濃度。使用PAGE凝膠快速制備試劑盒制備SDS-PAGE凝膠，每孔上樣20 μL蛋白樣品后，80 V電泳30 min，120 V電泳1 h，隨后290 mA轉(zhuǎn)膜1.5 h。室溫牛奶封閉2 h，將膜與α-SMA一抗（1∶4 000）4 ℃下孵育過(guò)夜。次日再將膜與HRP偶聯(lián)二抗（1∶10 000）室溫孵育1 h。洗膜后用增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光試劑盒顯影。采用Image J軟件檢測(cè)各個(gè)條帶的灰度值，以GAPDH（1∶10 000）為內(nèi)參，計(jì)算各目的蛋白的相對(duì)表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次，結(jié)果取均值。

1.6 膀胱癌小鼠模型的建立

將12只C57BL/6N小鼠在25 ℃下適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d，取密度1×1010個(gè)/L的鼠源性膀胱癌細(xì)胞MB49細(xì)胞懸液500 μL，皮下接種于小鼠左腹股溝，將小鼠隨機(jī)分為對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組，每組6只。當(dāng)接種部位出現(xiàn)肉眼可見(jiàn)的腫瘤時(shí)，實(shí)驗(yàn)組小鼠尾靜脈注射含5 μg/L TGF-β的PBS 100 μL，對(duì)照組小鼠尾靜脈注射等體積PBS，兩組小鼠均每2 d注射一次。飼養(yǎng)至第30天時(shí)麻醉后處死兩組小鼠，完整剝離出腫瘤組織，置于4%甲醛中固定，依次經(jīng)脫水、石蠟包埋后制成5 μm厚的石蠟切片。

1.7 免疫熒光技術(shù)檢測(cè)膀胱癌患者及小鼠組織切片中的α-SMA、CD68表達(dá)

將膀胱癌患者的腫瘤組織和正常組織石蠟切片，以及小鼠腫瘤組織的石蠟切片60 ℃下烘烤2 h，經(jīng)二甲苯脫蠟，梯度乙醇脫水、蒸餾水水化后，置于抗原修復(fù)液中高壓煮沸20 min，并以1% ABS封閉1 h。將切片分別與稀釋以后的α-SMA（1∶400）、CD68（1∶400）一抗在4 ℃下孵育過(guò)夜。次日室溫下與熒光二抗孵育1 h，使用DAPI染色劑染色細(xì)胞核。最后加入抗熒光淬滅劑，甘油封片，使用Olympus熒光顯微鏡觀察α-SMA、CD68的熒光染色情況，并用Image J軟件計(jì)算α-SMA+CD68+細(xì)胞占比（每個(gè)視野下α-SMA+CD68+雙陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)與總細(xì)胞數(shù)的比值）。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次，結(jié)果取均值。

1.8 免疫組化檢測(cè)小鼠切片組織中α-SMA、CD8的表達(dá)

將小鼠腫瘤組織石蠟切片依次經(jīng)脫蠟、水化等處理以后，置于檸檬酸鈉抗原修復(fù)液（0.01 mol/L，pH 6）當(dāng)中加熱20 min，冷卻至室溫后，用3%牛血清白蛋白（BSA）封閉30 min。將切片分別與α-SMA（1∶200）、CD8（1∶10 000）一抗4 ℃下孵育過(guò)夜，第2天室溫下與同種屬的二抗孵育30 min，DAB顯色后，用蘇木素染色劑染色細(xì)胞核，脫水封片。使用EVOS FL Auto顯微鏡觀察切片染色情況并拍照，統(tǒng)計(jì)每個(gè)視野下α-SMA+細(xì)胞數(shù)目與CD8+T細(xì)胞數(shù)目。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次，結(jié)果取均值。

1.9 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)BMDM細(xì)胞中α-SMA、CD68表達(dá)

取培養(yǎng)5 d的兩組BMDM細(xì)胞，置于離心管中以1 000 r/min離心15 min，隨后以PBS緩沖液重懸細(xì)胞，再以1 000 r/min離心15 min，棄去上清液，隨后在每管中加入300 μL上樣緩沖液重懸，再依次加入5 μL FITC（陽(yáng)性表示α-SMA+）和10 μL PE（陽(yáng)性表示CD68+）染色液。最后使用流式細(xì)胞儀分析并計(jì)算α-SMA+CD68+細(xì)胞在BMDM細(xì)胞中的占比。

2 結(jié)? 果

2.1 α-SMA+CD68+與膀胱癌患者預(yù)后的相關(guān)性

對(duì)TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)相關(guān)數(shù)據(jù)分析顯示，膀胱癌患者腫瘤組織中CAF標(biāo)記物α-SMA和TAM標(biāo)記物CD68的表達(dá)呈正相關(guān)（R=0.24，P<0.05）。K-M生存曲線(xiàn)分析結(jié)果顯示，α-SMA+CD68+高表達(dá)組患者OS明顯低于α-SMA+CD68+低表達(dá)組（χ2=9.05，P<0.05）。

2.2 α-SMA+CD68+細(xì)胞在膀胱癌患者腫瘤組織中的浸潤(rùn)情況

免疫熒光染色結(jié)果顯示，膀胱癌患者的腫瘤組織當(dāng)中存在CAF標(biāo)記物α-SMA+和TAM標(biāo)記物CD68+共定位表達(dá)的現(xiàn)象，正常組織和腫瘤組織中α-SMA+CD68+細(xì)胞占比分別為（0.33±0.18）%、（2.84±1.45）%，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（t=2.971，P<0.05）。見(jiàn)圖1。

2.3 TGF-β對(duì)α-SMA+CD68+細(xì)胞體外誘導(dǎo)作用

Western blot實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)結(jié)果顯示，對(duì)照組和TGF-β組BMDM細(xì)胞中α-SMA蛋白相對(duì)表達(dá)量為分別為0.01±0.01、0.69±0.08，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（t=15.41，P<0.05）。見(jiàn)圖2。流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示，TGF-β組中α-SMA+CD68+細(xì)胞占比明顯高于對(duì)照組。見(jiàn)圖3。

2.4 TGF-β對(duì)膀胱癌小鼠體內(nèi)α-SMA+CD68+細(xì)胞的誘導(dǎo)作用及對(duì)CD8+T細(xì)胞浸潤(rùn)的影響

免疫熒光染色結(jié)果顯示，對(duì)照組以及實(shí)驗(yàn)組小鼠腫瘤組織當(dāng)中α-SMA+CD68+細(xì)胞占比分別為（1.33±1.10）%、（23.25±9.15）%，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（t=4.120，P<0.05）。見(jiàn)圖4。切片免疫組化染色結(jié)果顯示，對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組小鼠腫瘤組織中每個(gè)視野下α-SMA+細(xì)胞數(shù)目分別為（10.74±5.46）、（40.93±6.87）個(gè)，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（t=8.432，P<0.05），對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組的腫瘤組織中每視野下CD8+T細(xì)胞數(shù)目分別為（61.81±11.25）、（10.07±5.54）個(gè)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（t=10.10，P<0.05）。見(jiàn)圖5。

3 討? 論

腫瘤微環(huán)境是目前影響腫瘤治療的主要因素之一[10]，CAF是腫瘤微環(huán)境中最豐富的基質(zhì)細(xì)胞類(lèi)型，具有高度異質(zhì)性和多功能性[11-13]，其與腫瘤的惡性進(jìn)展、侵襲轉(zhuǎn)移以及不良預(yù)后密切相關(guān)[14-16]。有研究表明CAF可通過(guò)增強(qiáng)腫瘤微環(huán)境中細(xì)胞外基質(zhì)（ECM）的硬度從而阻礙免疫細(xì)胞的浸潤(rùn)[17-18]。

此外CAF還可通過(guò)釋放細(xì)胞因子促進(jìn)血管生成以加快腫瘤的惡性進(jìn)展[19]。因此，深入探索CAF的形成分化、分子分型以及其在腫瘤免疫抑制微環(huán)境形成中的作用，對(duì)于闡明膀胱癌免疫治療耐藥性的機(jī)制，克服膀胱癌免疫治療目前面臨的反應(yīng)性低、耐藥性等瓶頸問(wèn)題具有重要意義。

本研究通過(guò)TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)分析巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD68與成纖維細(xì)胞標(biāo)志物α-SMA之間的相關(guān)性，并檢測(cè)臨床樣本中兩種標(biāo)志物的表達(dá)情況，結(jié)果發(fā)現(xiàn)在膀胱癌組織中α-SMA表達(dá)與CD68表達(dá)存在正相關(guān)，且在膀胱癌腫瘤組織中α-SMA、CD68共定位表達(dá)現(xiàn)象明顯高于正常膀胱組織，提示在膀胱癌腫瘤微環(huán)境中存在巨噬細(xì)胞來(lái)源的CAF細(xì)胞，即α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞，目前已被證實(shí)腫瘤微環(huán)境中的CAF來(lái)源于多種細(xì)胞途徑，如內(nèi)皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化、上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化等[20]。CHEN等[21]研究顯示，TGF-β可加快腎臟纖維化的進(jìn)展，而骨髓源性巨噬細(xì)胞是纖維化中成纖維細(xì)胞的主要來(lái)源[22-23]。研究發(fā)現(xiàn)在肺癌和神經(jīng)母細(xì)胞癌中TAM與CAF水平顯著相關(guān)[4]，臨床上，巨噬細(xì)胞標(biāo)志物的CAF也被認(rèn)為是口腔鱗狀細(xì)胞癌患者預(yù)后不良的指標(biāo)[24]，這提示α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞可能在腫瘤微環(huán)境中發(fā)揮重要作用，但對(duì)于α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞的具體作用機(jī)制及相關(guān)信號(hào)通路目前尚不清楚。

為了進(jìn)一步研究α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞對(duì)腫瘤微環(huán)境的影響以及相關(guān)的信號(hào)通路，本研究通過(guò)TGF-β干預(yù)BMDM細(xì)胞的方式來(lái)嘗試體外誘導(dǎo)α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞生成，通過(guò)Western blot方法檢測(cè)α-SMA蛋白表達(dá)水平，結(jié)果發(fā)現(xiàn)TGF-β干預(yù)后BMDM細(xì)胞中α-SMA蛋白的表達(dá)水平明顯上調(diào)，這提示TGF-β可能在誘導(dǎo)α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞生成過(guò)程中發(fā)揮作用。本研究的流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示，TGF-β干預(yù)后α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞數(shù)明顯多于對(duì)照組。上述結(jié)果提示TGF-TGF-β/Smad3通路是骨髓源性巨噬細(xì)胞向成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化的重要通路[25]。TGF-β/Smad3信號(hào)傳導(dǎo)的失調(diào)與腫瘤發(fā)生和纖維化顯著相關(guān)，該通路可將成纖維細(xì)胞重編程從而導(dǎo)致CAF活化[26]，其主要通過(guò)調(diào)節(jié)ECM積累和CAF活化來(lái)發(fā)揮促腫瘤作用[22]。TANG等[9]通過(guò)單細(xì)胞測(cè)序研究發(fā)現(xiàn)，在非小細(xì)胞肺癌中，Smad3可通過(guò)TGF-β/Smad3通路促進(jìn)巨噬細(xì)胞來(lái)源的CAF生成，并通過(guò)促進(jìn)ECM及新生血管生成來(lái)加速腫瘤的發(fā)生發(fā)展。此外，TGF-β還可通過(guò)抑制免疫細(xì)胞的功能參與腫瘤免疫抑制微環(huán)境的形成[27]。本研究通過(guò)構(gòu)建膀胱癌小鼠模型來(lái)驗(yàn)證TGF-β對(duì)于α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞生成及免疫微環(huán)境的影響，通過(guò)免疫熒光技術(shù)檢測(cè)小鼠腫瘤組織中α-SMA與CD68的共定位表達(dá)情況，結(jié)果發(fā)現(xiàn)加入TGF-β后，小鼠腫瘤組織中α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞明顯增多，這進(jìn)一步說(shuō)明TGF-β促進(jìn)了α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞的生成。研究顯示，CAF通過(guò)分泌ECM形成物理屏障，進(jìn)而阻礙免疫細(xì)胞（如T細(xì)胞）浸潤(rùn)，以及參與免疫抑制微環(huán)境的形成[28]，而TGF-β是促進(jìn)腫瘤微環(huán)境當(dāng)中CAF生成的關(guān)鍵信號(hào)通路[9]。本研究通過(guò)給予膀胱癌小鼠TGF-β處理并通過(guò)免疫組化檢測(cè)α-SMA與CD8+T細(xì)胞染色情況，結(jié)果發(fā)現(xiàn)TGF-β的干預(yù)促進(jìn)了小鼠腫瘤組織中α-SMA+細(xì)胞的生成，同時(shí)其還抑制了小鼠腫瘤組織中CD8+T細(xì)胞的浸潤(rùn)，提示TGF-β可通過(guò)促進(jìn)α-SMA+CD68+CAF生成，來(lái)抑制免疫細(xì)胞浸潤(rùn)，從而參與免疫抑制微環(huán)境的形成。

總之，本研究在膀胱癌腫瘤微環(huán)境中檢測(cè)到了α-SMA+CD68+CAF細(xì)胞，并揭示了TGF-β參與免疫抑制腫瘤微環(huán)境形成的機(jī)制，可能是通過(guò)促進(jìn)α-SMA+CD68+CAF的生成，進(jìn)一步抑制了免疫細(xì)胞的浸潤(rùn)。本研究有助于進(jìn)一步闡明膀胱癌免疫治療的耐藥機(jī)制，為抑制膀胱癌免疫治療耐受提供了數(shù)據(jù)參考。

倫理批準(zhǔn)和知情同意：本研究涉及的所有試驗(yàn)均已通過(guò)青島大學(xué)附屬醫(yī)院倫理委員會(huì)的審核批準(zhǔn)（文件號(hào)QYFYWZLL28770）。所有研究過(guò)程均遵照《赫爾辛基宣言》的規(guī)定進(jìn)行。受試對(duì)象或其親屬已經(jīng)簽署知情同意書(shū)。

倫理批準(zhǔn)和動(dòng)物權(quán)利聲明：本研究涉及的所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)均已通過(guò)青島大學(xué)醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)的審核批準(zhǔn)（文件號(hào)20230714C571820230-905032）。所有實(shí)驗(yàn)過(guò)程均遵照《實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理?xiàng)l例》的規(guī)定進(jìn)行。

［參考文獻(xiàn)］

[1]CRISPEN P L， KUSMARTSEV S. Mechanisms of immune evasion in bladder cancer[J]. Cancer Immunol Immunother， 2020，69（1）：3-14.

[2]MARIATHASAN S， TURLEY S J， NICKLES D， et al. TGF-β attenuates tumour response to PD-L1 blockade by contributing to exclusion of T cells[J]. Nature， 2018，554（7693）：544-548.

[3]DESBOIS M， WANG Y L. Cancer-associated fibroblasts： Key players in shaping the tumor immune microenvironment[J]. Immunol Rev， 2021，302（1）：241-258.

[4]KRAMAN M， BAMBROUGH P J， ARNOLD J N， et al. Suppression of antitumor immunity by stromal cells expressing fibroblast activation protein-alpha[J]. Science， 2010，330（6005）：827-830.

[5]ARNOLD J N， MAGIERA L， KRAMAN M， et al. Tumoral immune suppression by macrophages expressing fibroblast activation protein-α and heme oxygenase-1[J]. Cancer Immunol Res， 2014，2（2）：121-126.

[6]MULIADITAN T， CARON J， OKESOLA M， et al. Macrophages are exploited from an innate wound healing response to facilitate cancer metastasis[J]. Nat Commun， 2018，9（1）：2951.

[7]SHEN C Q， LIU J， JIAO W， et al. A feed-forward loop based on aerobic glycolysis and TGF-β between tumor-associated macrophages and bladder cancer cells promoted malignant progression and immune escape[J]. J Cancer Res Clin Oncol， 2023，149（14）：12867-12880.

[8]ZHANG Z， YU Y B， ZHANG Z L， et al. Cancer-associated fibroblasts-derived CXCL12 enhances immune escape of bladder cancer through inhibiting P62-mediated autophagic degradation of PDL1[J]. J Exp Clin Cancer Res， 2023，42（1）：316.

[9]TANG P C， CHUNG J Y， XUE V W， et al. Smad3 promotes cancer-associated fibroblasts generation via macrophage-myofibroblast transition[J]. Adv Sci， 2022，9（1）：e2101235.

[10]BINNEWIES M， ROBERTS E W， KERSTEN K， et al. Understanding the tumor immune microenvironment （TIME） for effective therapy[J]. Nat Med， 2018，24（5）：541-550.

[11]DASARI S， FANG Y M， MITRA A K. Cancer associated fibroblasts： Naughty neighbors that drive ovarian cancer progression[J]. Cancers， 2018，10（11）：406.

[12]TAO L L， HUANG G C， SONG H Z， et al. Cancer associated fibroblasts： An essential role in the tumor microenvironment[J]. Oncol Lett， 2017，14（3）：2611-2620.

[13]CHEN X M， SONG E W. Turning foes to friends： Targeting cancer-associated fibroblasts[J]. Nat Rev Drug Discov， 2019，18（2）：99-115.

[14]LAVIE D， BEN-SHMUEL A， EREZ N， et al. Cancer-asso-

ciated fibroblasts in the single-cell era[J]. Nat Cancer， 2022，3（7）：793-807.

[15]RIMAL R， DESAI P， DAWARE R， et al. Cancer-associated fibroblasts： Origin， function， imaging， and therapeutic targeting[J]. Adv Drug Deliv Rev， 2022，189：114504.

[16]KILVAER T K， KHANEHKENARI M R， HELLEVIK T， et al. Cancer associated fibroblasts in stage Ⅰ-ⅢA NSCLC： Prognostic impact and their correlations with tumor molecular markers[J]. PLoS One， 2015，10（8）：e0134965.

[17]CORONA A， BLOBE G C. The role of the extracellular matrix protein TGFBI in cancer[J]. Cell Signal， 2021，84：110028.

[18]MAO X Q， XU J， WANG W， et al. Crosstalk between cancer-associated fibroblasts and immune cells in the tumor microenvironment： New findings and future perspectives[J]. Mol Cancer， 2021，20（1）：131.

[19]DERYUGINA E I， QUIGLEY J P. Tumor angiogenesis： MMP-mediated induction of intravasation- and metastasis-sustaining neovasculature[J]. Matrix Biol， 2015，44-46：94-112.

[20]RSNEN K， VAHERI A. Activation of fibroblasts in cancer stroma[J]. Exp Cell Res， 2010，316（17）：2713-2722.

[21]CHEN J Z， TANG Y， ZHONG Y， et al. P2Y12 inhibitor clopidogrel inhibits renal fibrosis by blocking macrophage-to-myofibroblast transition[J]. Mol Ther， 2022，30（9）：3017-3033.

[22]LEBLEU V S， TADURI G， OCONNELL J， et al. Origin and function of myofibroblasts in kidney fibrosis[J]. Nat Med， 2013，19（8）：1047-1053.

[23]ZHOU Y Y， LI Z L， YU S Y， et al. Iguratimod prevents renal fibrosis in unilateral ureteral obstruction model mice by suppressing M2 macrophage infiltration and macrophage-myofibroblast transition[J]. Ren Fail， 2024，46（1）：2327498.

[24]ZHAO X X， DING L， LU Z Y， et al. Diminished CD68+ cancer-associated fibroblast subset induces regulatory T-cell （treg） infiltration and predicts poor prognosis of oral squamous cell carcinoma patients[J]. Am J Pathol， 2020，190（4）：886-899.

[25]SEMENZA G L. Cancer-stromal cell interactions mediated by hypoxia-inducible factors promote angiogenesis， lymphangiogenesis， and metastasis[J]. Oncogene， 2013，32（35）：4057-4063.

[26]GARRISON G， HUANG S K， OKUNISHI K， et al. Reversal of myofibroblast differentiation by prostaglandin E（2）[J]. Am J Respir Cell Mol Biol， 2013，48（5）：550-558.

[27]BATLLE E， MASSAGU J. Transforming growth factor-β signaling in immunity and cancer[J]. Immunity， 2019，50（4）：924-940.

[28]BIFFI G， TUVESON D A. Diversity and biology of cancer-associated fibroblasts[J]. Physiol Rev， 2021，101（1）：147-176.