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    脂聯(lián)素對膿毒癥小鼠急性腎損傷的治療作用及機(jī)制

    2024-04-16 02:28:04葉方雄郭誠萬雨涵李威袁進(jìn)洪茂林楊定平
    山東醫(yī)藥 2024年10期
    關(guān)鍵詞:小鼠

    葉方雄,郭誠,萬雨涵,李威,袁進(jìn),洪茂林,楊定平

    1 武漢大學(xué)人民醫(yī)院腎病內(nèi)科,武漢 430060;2 鄂州市中醫(yī)醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科;3 襄陽職業(yè)技術(shù)學(xué)院;4 鄂州市中醫(yī)醫(yī)院腦病科

    膿毒癥是一種宿主對感染反應(yīng)失調(diào)所致的臨床綜合征,以嚴(yán)重的全身炎癥和多器官功能障礙綜合征(MODS)為特點[1]。發(fā)生膿毒癥時,外源性毒素可刺激機(jī)體產(chǎn)生并釋放大量細(xì)胞因子和炎性介質(zhì),激發(fā)組織炎癥反應(yīng),引起包括腦、心臟、腎臟在內(nèi)的多種臟器損傷,其中急性腎損傷(AKI)是最常見的并發(fā)癥[2-3]。脂聯(lián)素(APN)是一種脂肪細(xì)胞分泌的多聚性脂肪因子,能提高胰島素敏感性,具有抗炎、改善糖脂代謝、抑制動脈粥樣硬化及抗纖維化特性[4]。APN 濃度的降低與心肌梗死、冠心病、高血壓和其他代謝性心血管功能障礙有關(guān)[5]。近年研究表明,APN 在膿毒癥免疫應(yīng)答及抗炎過程中發(fā)揮重要作用,膿毒癥患者APN 水平的下調(diào)與其嚴(yán)重程度呈負(fù)相關(guān)[6]。LIU 等[7]發(fā)現(xiàn),APN 能通過激活A(yù)MPK/mTOR 通路減少肝細(xì)胞凋亡,對膿毒癥大鼠的肝損傷具有保護(hù)作用,但APN 對膿毒癥AKI 的影響鮮見報道。2021 年9 月—2022 年12 月,我們通過腹腔注射脂多糖(LPS)建立膿毒癥小鼠模型,觀察APN 在膿毒癥腎損傷小鼠中的治療作用,并探討其可能機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物與試劑 雄性SPF 級C57BL/6 小鼠24 只,6~8 周齡,體質(zhì)量22~25 g,由武漢大學(xué)人民醫(yī)院動物實驗中心提供,許可證編號SYXK(鄂)2015-0027。LPS 購自美國Sigma 公司;APN 購自美國PeproTech公司,超氧化物陰離子熒光探針(DHE)購自上海碧云天生物科技有限公司;BCA 蛋白濃度檢測試劑盒購自美國Thermo Fisher 公司;核苷酸結(jié)合寡聚域樣受體3(NLRP3)單克隆抗體、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶(Caspase)-1 單克隆抗體購自英國Abcam 公司;白細(xì)胞介素(IL)-1β 多克隆抗體、GADPH 單克隆抗體購自武漢三鷹生物技術(shù)有限公司;NLRP3、IL-1β 和腫瘤壞死因子(TNF)-α 引物由武漢塞維爾生物科技有限公司設(shè)計提供;全自動生化分析儀購自深圳雷杜生命科技有限公司。

    1.2 動物模型及分組處理 采用隨機(jī)數(shù)字表法將小鼠分為空白對照組(CON 組)、模型組(LPS組)、實驗組( LPS+APN 組)。按10 mg/kg 腹腔注射LPS 制備膿毒癥模型,CON 組腹腔注射等量0.9%氯化鈉注射液,實驗組在造模前8 h 按0.1 mg/kg 尾靜脈注射APN 進(jìn)行干預(yù)。造模后24 h 處死小鼠,眼球取血2 mL,離心收集上清,-80 ℃冰箱中保存;縱切左側(cè)腎臟,置于4%多聚甲醛溶液中固定,右側(cè)腎臟用液氮速凍制作冰凍切片待用。

    1.3 腎組織病理學(xué)評定 固定好的腎組織脫水,包埋于石蠟中,將組織切成3 μm 切片,行HE 染色,參照文獻(xiàn)[8]依據(jù)Paller 評分法進(jìn)行腎小管損傷病理評分:形態(tài)正常為0分;腎小管擴(kuò)張、細(xì)胞扁平、刷狀緣損傷為1 分;管腔脫落或壞死為1 分;上皮細(xì)胞核固縮、空泡狀或顆粒狀為1 分;刷狀緣脫落、腎小管管型為2分。

    1.4 腎功能檢測 取小鼠血清,采用全自動生化分析儀檢測肌酐(Scr)和尿素氮(BUN)濃度,評估小鼠腎功能。

    1.5 活性氧(ROS)檢測 采用超氧化物陰離子熒光探針(DHE)。用DSMO 溶解DHE 配制成染色探針工作液,清洗液清洗冰凍切片3 min,滴加染色探針工作液,37 ℃培養(yǎng)箱避光孵育40 min,裝載熒光探針完畢,移除染色液,并用PBS 洗滌切片3 次,加蓋玻片封片,以535 nm 作為激發(fā)波長,在熒光顯微鏡下觀察ROS的熒光強(qiáng)度,使用Image-Pro Plus 軟件對平均熒光強(qiáng)度進(jìn)行量化分析。

    1.6 NLRP3、IL-1β、TNF-α mRNA 表達(dá)檢測 采用RT-qPCR 法。TRIzol 試劑提取腎臟組織中的RNA,紫外分光光度計確定各組小鼠總RNA 濃度后逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。用Mx3000P qPCR 系統(tǒng)在96 孔光學(xué)反應(yīng)板上對NLRP3、IL-1β、TNF-α 和GAPDH 的mRNA表達(dá)進(jìn)行定量分析。NLRP3 正向引物:5'-TAAGAACTGTCATAGGGTCAAAACG-3',反向引物:5'-GTCTGGAAGAACAGGCAACATG-3';IL-1β 正向引物:5'-AGGCTCCGAGATGAACAACAAA-3',反向向引物:5' -GTGCCGTCTTTCATTACACAGGA-3';TNF-α 正向引物:5'-CTCTTCTGTCTACTGAACTTCGGG-3',反向引物:5'-GGTGGTTTGTGAGTGTGAGGGT-3';GAPDH 正向引物:5'-CCTCGTCCCGTAGACAAAATG-3',反向引物:5'-GTAACAGTCCGCCTAGAAGCAC-3'。qPCR 反應(yīng)條件:95 ℃初始變性3 min、95 ℃變性30 s、60 ℃退火40 s、72 ℃延伸30 s,重復(fù)40個循環(huán),最后75 ℃延伸8 min。以GAPDH作為內(nèi)參基因,使用2-ΔΔCt法分析數(shù)據(jù)并計算基因的相對表達(dá)量。實驗重復(fù)3次,取平均值。

    1.7 NLRP3、Caspase-1、IL-1β蛋白表達(dá)檢測 采用Western blotting 法。從腎組織勻漿中提取總蛋白,BCA 法測量蛋白質(zhì)濃度。在上樣緩沖液中95 ℃加熱變性10 min,將蛋白質(zhì)上樣至SDS-聚丙烯酰胺凝膠,電泳轉(zhuǎn)膜到PVDF 膜上。5%的脫脂奶粉封閉1 h,4 ℃下與NLRP3、Caspase-1、IL-1β、GAPDH 一抗孵育過夜。TBST 洗滌3 次,用辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗孵育1 h,在化學(xué)發(fā)光儀中顯影觀察,采集圖像并用Image Lab軟件分析條帶灰度值,以目的蛋白灰度值/內(nèi)參灰度值表示目的蛋白的相對表達(dá)量。

    1.8 統(tǒng)計學(xué)方法 采用GraphPad Prism 8 統(tǒng)計軟件。符合正態(tài)分布的計量資料以±s表示,兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較用LSD 檢驗。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組小鼠腎損傷比較 CON 組小鼠腎小球形態(tài)結(jié)構(gòu)正常,毛細(xì)血管光滑通暢,腎小管上皮細(xì)胞完整;與CON 組相比,LPS 組小鼠腎臟可見腎小管擴(kuò)張,上皮細(xì)胞核溶解壞死,刷狀緣損傷,腎小管出現(xiàn)細(xì)胞管型;與LPS 組相比,LPS+APN 組小鼠腎臟損傷明顯減輕。見圖1。與CON 組比較,LPS 組小鼠腎臟損傷評分、Scr 及BUN 水平升高(P<0.05);與LPS 組比較,LPS+APN 組腎臟損傷評分、Scr 及BUN水平下降(P<0.05)。見表1。

    表1 各組小鼠Paller評分、Scr、BUN比較(± s)

    表1 各組小鼠Paller評分、Scr、BUN比較(± s)

    注:與CON組比較,*P<0.05;與LPS組比較,#P<0.05。

    組別CON組LPS組LPS+APN組BUN(mg/dL)19.22 ± 2.87 55.34 ± 9.25*41.97 ± 6.04*#n8 8 8 Paller評分(分)0.63 ± 0.52 7.62 ± 1.19*4.38 ± 0.92*#Scr(μmol/L)21.73 ± 5.43 116.70 ± 14.16*79.88 ± 10.63*#

    圖1 各組小鼠腎臟病理學(xué)比較(HE染色,×400)

    2.2 各組小鼠腎組織活性氧比較 CON 組、LPS組、LPS+APN 組ROS 相對熒光強(qiáng)度分別為1.00 ±0.00、26.67 ± 3.38、16.32 ± 2.51。LPS 組小鼠腎組織切片紅色熒光明顯強(qiáng)于對照組,LPS+APN組紅色熒光較對照組強(qiáng),而比LPS 組弱(P<0.05)。

    2.3 各組小鼠腎組織NLRP3、IL-1β、TNF-α mRNA表達(dá)比較 與對照組比較,LPS 組NLRP3、IL-1β、TNF-α 的mRNA 表達(dá)明顯升高(P均<0.05);與LPS組比較,LPS+APN 組NLRP3、IL-1β、TNF-α 的mRNA表達(dá)明顯降低(P均<0.05)。見表2。

    表2 各組腎組織NLRP3、IL-1β和TNF-α mRNA相對表達(dá)量比較(± s)

    表2 各組腎組織NLRP3、IL-1β和TNF-α mRNA相對表達(dá)量比較(± s)

    注:與CON組比較,*P<0.05;與LPS組比較,#P<0.05。

    組別CON組LPS組LPS+APN組TNF-α mRNA 1.01 ± 0.16 2.52 ± 0.49*1.52 ± 0.33*#n8 8 8 NLRP3 mRNA 1.04 ± 0.31 3.93 ± 0.74*1.86 ± 0.47*#IL-1β mRNA 1.01 ± 0.15 2.74 ± 0.50*1.43 ± 0.16*#

    2.4 各組小鼠NLRP3、Caspase-1、IL-1β 蛋白表達(dá)比較 與對照組比較,LPS 誘導(dǎo)的膿毒癥小鼠腎組織NLRP3、Caspase-1 和IL-1β 蛋白表達(dá)明顯升高(P均<0.05);與模型組比較,APN 干預(yù)組小鼠腎臟NLRP3、Caspase-1和IL-1β蛋白表達(dá)明顯下降(P均<0.05)。見表3。

    表3 各組腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-1β蛋白相對表達(dá)量比較(± s)

    表3 各組腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-1β蛋白相對表達(dá)量比較(± s)

    注:與CON組比較,*P<0.05;與LPS組比較,#P<0.05。

    組別CON組LPS組LPS+APN組IL-1β 0.49 ± 0.04 1.42 ± 0.16*0.92 ± 0.12*#n8 8 8 NLRP3 0.26 ± 0.06 1.15 ± 0.14*0.52 ± 0.07*#Caspase-1 0.12 ± 0.01 0.72 ± 0.11*0.45 ± 0.04*#

    3 討論

    膿毒癥是危重病患者死亡的主要原因之一,據(jù)統(tǒng)計,危重患者中AKI 的發(fā)病率高達(dá)60%,不低于40%的膿毒癥會出現(xiàn)包括AKI在內(nèi)的多器官功能衰竭,膿毒癥相關(guān)急性腎損傷(SA-AKI)患者進(jìn)展為慢性腎病的風(fēng)險顯著增加[2,9]。近年來,隨著拯救膿毒癥運(yùn)動的推廣和集束化治療的應(yīng)用,膿毒癥病死率較前有所下降[10]。SA-AKI 的病理機(jī)制尚未完全清楚,目前普遍認(rèn)為各種病原菌感染后導(dǎo)致全身性炎癥反應(yīng)綜合征,大量炎癥因子和介質(zhì)如TNF-α、IL-1等相互作用引起的“瀑布炎癥反應(yīng)”是SA-AKI 發(fā)生的重要原因[11]。因此,抑制炎癥因子釋放及防止炎性介質(zhì)的產(chǎn)生成為治療SA-AKI的關(guān)鍵。

    APN 是一種具有內(nèi)源活性的多肽,由4 個結(jié)構(gòu)域組成并參與代謝和炎癥過程。APN 通過加速抗炎因子的分泌,減少炎性介質(zhì)的產(chǎn)生和釋放,從而發(fā)揮抗炎作用,避免機(jī)體發(fā)生過度的免疫反應(yīng)[12-13]。有研究表明,在盲腸結(jié)扎穿刺法建立的大鼠膿毒癥模型中,APN 能顯著降低血清TNF-α 等炎癥因子表達(dá)[7]。本研究結(jié)果顯示,LPS 小鼠腎組織病理評分高,腎小管上皮細(xì)胞損傷嚴(yán)重,腎功能指標(biāo)Scr、BUN水平升高,炎性因子IL-1β 及TNF-α 的轉(zhuǎn)錄和分泌增加。相較于模型組,存在APN 干預(yù)的小鼠病理評分低,腎小管上皮細(xì)胞及毛細(xì)血管損傷減輕,Scr、BUN 下降,炎性因子的轉(zhuǎn)錄和分泌減少。說明APN對SA-AKI具有保護(hù)作用。

    細(xì)胞焦亡是一種與炎癥相關(guān)的程序性細(xì)胞死亡,由Caspase 介導(dǎo),分為依賴Caspase-1 介導(dǎo)的經(jīng)典途徑和依賴Caspase-4/5/11 介導(dǎo)的非經(jīng)典途徑[14]。NLRP3 炎癥小體由NLRP3、接頭蛋白ASC 和效應(yīng)蛋白Caspase-1組成,是一種大分子蛋白復(fù)合體。最新研究發(fā)現(xiàn),無論是經(jīng)典途徑還是非經(jīng)典途徑,NLRP3炎癥小體在細(xì)胞焦亡過程中均發(fā)揮重要調(diào)控作用[15]。膿毒癥發(fā)生時,細(xì)胞缺氧導(dǎo)致線粒體功能紊亂,產(chǎn)生釋放大量ROS,激活NLRP3,進(jìn)而觸發(fā)細(xì)胞焦亡?;罨腘LRP3 招募ASC 和Caspase-1,形成NLRP3 炎癥小體復(fù)合物,ASC 通過切割無活性的Caspase-1 前體成為成熟的Caspase-1。成熟的Caspase-1 隨后催化IL-1β 和IL-18 前體剪切成熟,分泌到細(xì)胞外,啟動相應(yīng)的信號級聯(lián)反應(yīng),并最終導(dǎo)致IL-1β、IL-18、TNF-α 等大量炎性介質(zhì)釋放[16]。本研究中,相較于對照,LPS 小鼠腎組織活性氧含量升高,炎癥小體相關(guān)蛋白NLRP3、Caspase-1 表達(dá)增多,炎性因子IL-1β 的mRNA 及蛋白表達(dá)增加,與既往文獻(xiàn)報道一致。

    在膿毒癥中,APN 與疾病的嚴(yán)重程度及預(yù)后相關(guān),而外源性的APN 在抗氧化過程中發(fā)揮重要作用。張占琴等[17]研究表明,APN 能調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)蛋白Caspase-3、Bax 及抗凋亡蛋白Bcl-2 表達(dá),通過抑制線粒體損傷誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激保護(hù)小鼠的神經(jīng)及認(rèn)知功能,減輕膿毒癥小鼠腦損傷。亦有研究證實APN 通過調(diào)節(jié)AMPK、Akt和NF-κB 信號通路限制單核細(xì)胞微粒誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞活化,而NF-κB 通路的活化,在NLRP3 經(jīng)典信號通路的激活以及炎性因子IL-1β、TNF-α 的釋放過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用[18]。本實驗結(jié)果顯示,在LPS 誘導(dǎo)的膿毒癥急性腎損傷小鼠的腎組織中,活性氧含量增加,炎性因子TNF-α分泌明顯增多;APN 干預(yù)后,膿毒癥小鼠腎組織活性氧的含量及TNF-α 表達(dá)明顯減少。說明APN 對膿毒癥急性損傷的保護(hù)作用與活性氧的調(diào)節(jié)及炎性介質(zhì)的減少有關(guān)。

    綜上所述,APN 可通過調(diào)控炎癥反應(yīng)及細(xì)胞焦亡相關(guān)通路對SA-AKI起保護(hù)作用,其機(jī)制可能與降低腎組織氧化應(yīng)激水平,抑制NLRP3 炎性小體的產(chǎn)生,減少TNF-α、IL-1β 等炎性因子的釋放有關(guān)。本研究為SA-AKI的治療提供了新思路,但仍存在以下不足:一是APN 調(diào)控氧化應(yīng)激的分子機(jī)制尚不清楚;二是膿毒癥的發(fā)生由多種原因?qū)е?,本研究以LPS 誘導(dǎo)的膿毒癥為模型,存在一定局限性,這些在后期研究中有待進(jìn)一步完善。

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