陳勁松,郭紫晶,黃雄挺,張志東,李彥敏
(西南民族大學(xué)動物醫(yī)學(xué)四川省高等學(xué)校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川 成都 610041)
豬圓環(huán)病毒2 型(PCV2)屬于圓環(huán)病毒科圓環(huán)病毒屬,是環(huán)狀單鏈DNA病毒。PCV-2感染后會引起斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征(PMWS)、豬呼吸道疾病綜合征(PRDC)、豬皮炎與腎病綜合征(PDNS)、初生仔豬先天性震顫(CT)[1-3]。PCV2基因組大小為1 767~1 768 nt,包含2個主要的開放閱讀框(ORFs),其中ORF1 編碼病毒復(fù)制相關(guān)蛋白Rep,ORF2編碼衣殼蛋白(Cap)。PCV2基因組易發(fā)生點(diǎn)突變和基因重組,在疫苗免疫和自然感染選擇壓力作用下,PCV2 流行株持續(xù)進(jìn)化和變異[4-5]。
本研究從四川省某發(fā)病豬場病料組織中成功分離并鑒定出一株P(guān)CV2毒株(SMU-2022),通過克隆測序獲得全基因組序列,并對其進(jìn)行分子生物學(xué)特征分析。
1.1 細(xì)胞和臨床樣本 豬腎細(xì)胞(PK-15)由本單位實(shí)驗(yàn)室保存;從四川省某養(yǎng)豬場疑似PMWS發(fā)病豬上采集18 份組織樣本,其中3 份肺臟、4份脾臟、3份肝臟、4 份腎臟和4份淋巴結(jié)組織,-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2 主要試劑100 U/mL 青霉素、100 μg/mL 鏈霉素雙抗、DMEM 培養(yǎng)基,購自Gibco 公司;病毒DNA/RNA提取試劑盒、Dream TaqGreenPCR預(yù)混液(2×)、膠回收試劑盒,購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;PMD-19T 載體,購自Takara 公司;大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;DL2000Marker、質(zhì)粒提取試劑盒,購自天根生化科技(北京)有限公司;PCV2兔源多抗,來自GeneTex 公司;FITC 標(biāo)記羊抗兔IgG,來自Biosharp 公司;D(+)-氨基葡萄糖,購自Sigma試劑公司。
1.3 方法
1.3.1 DNA提取 將收集到的肺臟、脾臟、肝臟、腎臟和淋巴結(jié)病料組織在無菌條件下剪碎,每份病料剪取約1 g,置于無菌研磨管中,加入PBS 1 mL和勻漿珠4粒,按照標(biāo)準(zhǔn)研磨程序研磨,4 ℃、10 500 r/min 離心3~5min,吸取上清液,參照DNA提取試劑盒說明書提取病毒DNA。
1.3.2 PCV2的PCR檢測 參考文獻(xiàn)[6]合成P1檢測引物,參考文獻(xiàn)[7]合成P2、P3 全基因序列擴(kuò)增引物(表1)。用P1 引物對提取的DNA 進(jìn)行PCR擴(kuò)增。25μL PCR 反應(yīng)體系:DreamTaq Green PCR預(yù)混液(2×)12.5μL,上下游引物各1μL,DNA模板2 μL,無酶水(RNase freewater)8.5 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s,62 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共35個循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測后送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
表1 引物序列
1.3.3 病毒的分離 將經(jīng)PCR 檢測為陽性的樣品制成組織懸液,離心后取組織上清液用氯仿處理,每1 mL 上清加入50 μL 氯仿,室溫下不斷混合10 min,2 000 r/min 離心10 min。取上清,用0.22 μm 濾膜過濾。將長成單層的PK-15細(xì)胞用0.05%EDTA-胰酶消化液消化,制成細(xì)胞濃度為5×104個/mL 的細(xì)胞懸液。取上清液1 mL 接種到10 mL細(xì)胞懸液,分裝到2個25 cm2(T25)細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,并加300~500 μL 300 mMD(+)-氨基葡萄糖,置于37 ℃5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng);同時培養(yǎng)正常PK-15 細(xì)胞作為對照。接種后18~24 h,細(xì)胞長成50%~60%單層,用300 mMD(+)-氨基葡萄糖處理細(xì)胞,用預(yù)熱無菌PBS 液(37 ℃)溶解D(+)-氨基葡萄糖,溶液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾。棄去培養(yǎng)液,加入1~2mL預(yù)熱的300 mMD(+)-氨基葡萄糖。37 ℃孵育30 min,去除D(+)氨基葡萄糖,用PBS 洗滌細(xì)胞,加入含2%FBS 的DMEM維持液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。按上述步驟將病毒盲傳5 代后進(jìn)行PCR 檢測,鑒定為陽性的病毒繼續(xù)傳代。
1.3.4 病毒的PCR 鑒定 收獲的每一代次細(xì)胞病毒液以P1 為引物,以PCV2 臨床陽性樣本為陽性對照,同時設(shè)立未接毒的PK-15細(xì)胞為陰性對照,進(jìn)行PCR檢測。將擴(kuò)增結(jié)果為陽性的PCR產(chǎn)物送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
1.3.5 病毒的間接免疫熒光鑒定 將病毒接種到預(yù)先培養(yǎng)的PK-15 細(xì)胞上,37 ℃培養(yǎng)48~60 h后棄去培養(yǎng)基,用預(yù)冷PBS洗滌2次,晾干;用4%多聚甲醛(溶于PBS 中,pH7.6)室溫下固定細(xì)胞10min,用預(yù)冷PBS洗滌3次,晾干;用0.25%Triton X-100(溶于PBS 中,pH7.6)室溫下孵育10min,用預(yù)冷PBS洗滌3次,晾干;加封閉液(1%BSA+含22.52 mg/mL 甘氨酸的PBST)封閉45min,用預(yù)冷PBS洗滌3次,晾干;加入兔源PCV2 多抗(1∶500)50 μL/孔,4 ℃孵育過夜,用預(yù)冷PBS 洗滌3 次,晾干;加入FITC 標(biāo)記的羊抗兔IgG(1∶1 000)50 μL/孔,室溫下避光孵育1 h,用預(yù)冷PBS洗滌3次,晾干;熒光顯微鏡下觀察。
1.3.6 PCV2 全基因組擴(kuò)增及克隆 根據(jù)表1 全基因擴(kuò)增引物P2、P3 擴(kuò)增全基因組序列。25 μL PCR 反應(yīng)體系:Dream TaqGreen PCR預(yù)混液(2×)12.5 μL,上下游引物各1 μL,DNA模板2 μL,無酶水8.5 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s,62 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,共36次循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。擴(kuò)增出的目的條帶用DNA純化回收試劑盒回收,回收產(chǎn)物與pMD19-T 載體連接,導(dǎo)入大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,最后將鑒定為陽性的單菌落送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
1.3.7 遺傳進(jìn)化分析 測序結(jié)果經(jīng)BLAST 比對后進(jìn)行手動拼接。從GenBank 中選取源于不同國家、不同基因型的PCV2 毒株全基因組核苷酸序列,使用Mega 7.0 和DNAstar 中的Seqman和MegAlign軟件對本次分離的PCV2 毒株與GenBank 中PCV2 參考毒株進(jìn)行全基因核苷酸序列相似性比對;利用Mega 7.0 軟件進(jìn)行遺傳進(jìn)化分析,采用ClustalW方法和Neighbor-Joining(NJ)(Bootstrap,1 000次重復(fù))法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。
1.3.8 PCV2 Cap蛋白的氨基酸序列和抗原指數(shù)分析 從GenBank中選取與PCV2分離毒株同源性最高的20 株參考毒株、4 株參考疫苗株進(jìn)行比對,利用DNAstar 中的MegAlign 和Mega 7.0 軟件分析ORF2基因編碼的氨基酸序列的相似性。利用DNAstar 中Protean 軟件的Anligenicily Jameson-Wolf方法,預(yù)測PCV2分離株的Cap蛋白抗原指數(shù),并與4株參考疫苗株(GenBank 號:HM038027.1、HM641752、AY686764、HM038034)的Cap蛋白抗原指數(shù)進(jìn)行比對分析。
2.1 臨床樣品PCV2 的檢測 對采集的18 份疑似PMWS患病豬的臨床樣本進(jìn)行PCR檢測,結(jié)果顯示,有3 份樣本(脾臟、淋巴結(jié)和腎臟)擴(kuò)增得到大小約537 bp 的目的片段,與預(yù)期結(jié)果相符(圖1)。測序結(jié)果進(jìn)一步表明,這3 份樣品均為PCV2陽性。
圖1 部分病料組織中PCV2的PCR擴(kuò)增
2.2 病毒的分離與鑒定 將3份PCV2陽性的組織病料接種到PK-15 細(xì)胞上,并連續(xù)傳代7 次后再次進(jìn)行PCR檢測。結(jié)果顯示,只有腎臟接種的每一代PK-15 細(xì)胞能擴(kuò)增出特異性PCV2 條帶(圖2),表明分離到的PCV2能夠在PK-15細(xì)胞上增殖。與對照細(xì)胞相比,PCV2 感染的PK-15 細(xì)胞未出現(xiàn)細(xì)胞病變效應(yīng)(CPE)。通過間接免疫熒光檢測,在接種PCV2的第7代PK-15細(xì)胞中出現(xiàn)特異性綠色染色,陰性對照細(xì)胞上沒有出現(xiàn)特異性染色??傊驹囼?yàn)從疑似PMWS患豬的腎臟組織中分離到一株P(guān)CV2,命名為SMU-2022。
圖2 每一代PK15細(xì)胞中PCV2的PCR擴(kuò)增
2.3 PCV2 基因組擴(kuò)增及克隆 用引物P2 和P3對分離毒株進(jìn)行克隆測序,結(jié)果顯示,在960 bp、980 bp 左右處出現(xiàn)目的電泳條帶,擴(kuò)增結(jié)果與預(yù)期結(jié)果相一致(圖3)。將測序獲得的2 個基因組序列片段與P1擴(kuò)增的序列片段進(jìn)行拼接,得到PCV2(SMU-2022)分離毒株的全基因序列,全長為1767nt,提交至GenBank,登錄號為OQ656424。
圖3 PCV2的PCR擴(kuò)增結(jié)果
2.4 PCV2分離株的遺傳進(jìn)化分析PCV2分離株(SMU-2022)與國內(nèi)外46 株P(guān)CV2 參考毒株進(jìn)行全基因組核苷酸序列比對及遺傳進(jìn)化分析,結(jié)果顯示,PCV2 分離株與國內(nèi)外46 株參考毒株的相似性為91.8%~99.1%,與我國參考株QZ1410 毒株(江蘇,GenBank 號:MG732832.1)的相似性最高,親緣關(guān)系最接近?;谌蚪M序列和ORF2基因序列所構(gòu)建的遺傳進(jìn)化樹顯示,PCV2 分離株(SMU-2022)屬于PCV2d基因型(圖4)。
圖4 PCV2全基因組(A)和ORF2基因(B)的系統(tǒng)進(jìn)化樹
2.5 Cap蛋白的氨基酸序列和抗原指數(shù)分析ORF2基因長為705 bp,編碼235 個氨基酸,利用Mega 7.0 軟件將分離株的Cap 蛋白氨基酸序列與國內(nèi)外20個參考毒株進(jìn)行序列比對,結(jié)果得出氨基酸相似性為98.3%~99.1%。與4 株參考疫苗株的氨基酸相似性為81.7%~86%。分析PCV2 分離株(SMU-2022)的ORF2 氨基酸位點(diǎn),發(fā)現(xiàn)在Cap蛋白B細(xì)胞表位區(qū)有1個特異性突變位點(diǎn)V30L,在T細(xì)胞表位區(qū)有1個特異性突變位點(diǎn)T232K。
對PCV2 分離株(SMU-2022)的Cap 蛋白與4株疫苗株的Cap 蛋白進(jìn)行抗原指數(shù)分析,結(jié)果顯示:PCV2分離株與4株疫苗株的抗原指數(shù)差異較大,主要集中在第20-30、40-75、90-100、130-140、195-205、210-220 位氨基酸這6 個區(qū)域,且PCV2分離株的抗原指數(shù)明顯高于疫苗株。
3.1 PCV2 在我國的流行情況 根據(jù)全基因組序列和ORF2 基因序列分析,PCV2 分為8 種基因亞型(a、b、c、d、e、f、g、h),目前國內(nèi)流行毒株為PCV2a、PCV2b 和PCV2d 基因亞型[8]。PCV2a 是臨床上最流行的基因型,之后發(fā)生兩次基因型轉(zhuǎn)移,即從PCV2a 到PCV2b再到PCV2d,而PCV2d 已成為中國當(dāng)前流行的主要基因型[9]。Liu[10]等綜合整理2015~2019年間已報道的各地區(qū)的PCV2流行情況,發(fā)現(xiàn)PCV2總流行率為46.0%,其中東北地區(qū)最高,PCV2 流行率最高的是保育豬(50.9%)。集約型農(nóng)場和粗放型農(nóng)場的PCV2 感染率分別為50.1%和37.5%。這些結(jié)果表明PCV2 在中國豬群中有較高的感染率,給我國生豬養(yǎng)殖業(yè)帶來了嚴(yán)重的威脅和挑戰(zhàn)[11-12]。
本研究從疑似PMWS 發(fā)病豬的組織樣本中成功分離到一株P(guān)CV2(SMU-2022,GenBank 號:OQ656424),該毒株為PCV2d 基因型。通過基因組和Cap 基因序列遺傳進(jìn)化分析,發(fā)現(xiàn)該分離株與QZ1410 毒株(江蘇,GenBank 號:MG732832.1)的親緣關(guān)系密切,但是其PCV2d基因組在進(jìn)化樹上單獨(dú)分為一支。相似性分析顯示,該毒株與國內(nèi)外46株參考毒株的核苷酸相似性為91.8%~99.1%,表明PCV2毒株基因型正在不斷變異和進(jìn)化。
3.2 Cap 蛋白抗原性分析Cap 蛋白作為PCV2唯一的結(jié)構(gòu)蛋白,包含與病毒免疫相關(guān)的主要抗原決定性表位及中和表位(47-87aa、113-147aa、165-200aa、230-233aa),決定了PCV2 抗原性和致病性[13-15]。Cap蛋白氨基酸序列的微小變化也會改變構(gòu)象,影響病毒與受體的結(jié)合以及病毒的免疫逃避[16]。此外,Cap 蛋白還參與調(diào)節(jié)宿主生物過程、病毒復(fù)制和運(yùn)輸?shù)龋?5]。
當(dāng)前國內(nèi)豬場接種的商品化疫苗多基于PCV2a 和PCV2b 基因型研發(fā),在臨床防控PCV2的流行和傳播方面仍然有效。但是,在疫苗免疫的選擇壓力下PCV2 基因亞型的變異速度加快,新的流行毒株可能會破壞疫苗保護(hù)效力,故應(yīng)加快研制針對當(dāng)前流行毒株的疫苗。
本研究從四川地區(qū)某發(fā)病豬場的臨床樣本中成功分離到一株P(guān)CV2 流行毒株,該毒株為當(dāng)前主要流行的基因型——PCV2d。該毒株的Cap蛋白氨基酸序列存在2 個突變位點(diǎn),抗原指數(shù)與當(dāng)前市場疫苗株的差異較大。本研究結(jié)果為四川省PCV2的遺傳進(jìn)化分析和疫苗株的篩選提供了數(shù)據(jù)支撐。