程水明,李露欣,劉杰鳳
(廣東石油化工學(xué)院 生物工程系,廣東 茂名 525000)
火龍果(Hylocereus undulatusBritt)屬仙人掌科(Cactaceae)、量天尺屬(Hylocereus Britton.&.Rose)[1],果肉顏色多樣[2],原產(chǎn)于中美洲[3],中國于1645年引種,目前在福建、廣東、海南、臺灣及廣西大面積種植,規(guī)模達3.33~4.00萬hm2[4]?;瘕埞恰盎ü尜p,賞食兼用”的園林綠化植物,全身是寶,果皮占火龍果總質(zhì)量的25%,富含多糖、膳食纖維、天然色素及黃酮類等物質(zhì),其中,花青素含量較高。火龍果上市時間集中、量大、貨架期短、不易保存;食用后的果皮當(dāng)作廢棄物扔掉,導(dǎo)致嚴重的資源浪費和環(huán)境污染[5]。目前,對果皮的研究利用非常有限,僅限于天然色素和膳食纖維提取[6-12],研究多認為火龍果皮色素成分為β-青苷,不含花青素[6,8]。但楊洪元等[13-14]認為火龍果紅色素是由有多種結(jié)構(gòu)的植物色素混合而成,既含甜菜苷,又含花色苷和花青素等。色素提取研究較多地集中于紅色素方面,有關(guān)花青素、甜菜苷研究成果報道少且存在不全面、不系統(tǒng)、不深入等問題,值得進一步研究。
目前,花青素主要靠物理手段或化學(xué)方法從植物材料中直接提取[8-10],但存在易破壞花青素結(jié)構(gòu)且工藝復(fù)雜、有機溶劑使用量大、毒性高、提取率低、產(chǎn)品純度不高,大規(guī)模制備時經(jīng)濟成本高且操作困難等不足。如何經(jīng)濟有效地提高花青素提取率一直是個探索熱點。與傳統(tǒng)的物理化學(xué)提取方法相比,生物轉(zhuǎn)化因其具有選擇性高、可限制不需要副產(chǎn)物的聯(lián)產(chǎn)、常在溫和的溫度及壓力下進行等特點,隨著生物代謝調(diào)控手段及合成生物學(xué)的迅速發(fā)展,以生長周期短、遺傳背景簡單、操作方便的微生物作為生物代謝反應(yīng)器進行天然活性產(chǎn)物合成(如黃酮類物質(zhì))逐漸成為研究熱點[15]。利用微生物發(fā)酵植物在《千金要方》[14]中已有記載,現(xiàn)代利用微生物發(fā)酵植物研究始于上個世紀八十年代,如淡豆豉、六神曲、豆黃等[16-18];其研究成果充分證明微生物轉(zhuǎn)化是有效增加天然產(chǎn)物多效性方法之一,已在食品、醫(yī)藥、工業(yè)等領(lǐng)域廣泛應(yīng)用[15,18],但運用食用真菌來發(fā)酵火龍果皮提取相關(guān)活性物質(zhì)則報道甚少。如何有效地提高植物材料中花青素類物質(zhì)的產(chǎn)量,這一困惑生產(chǎn)實踐中的問題,既需從學(xué)術(shù)理論上加以闡述,又關(guān)乎相關(guān)產(chǎn)業(yè)轉(zhuǎn)型與持續(xù)發(fā)展,值得深入研究與探討。
基于此,本研究選用20種食用真菌分別發(fā)酵火龍果皮,利用pH示差法測定發(fā)酵液中花青素含量,篩出適用于火龍果皮發(fā)酵的食用真菌菌株,并在單因素試驗基礎(chǔ)上,以花青素含量為響應(yīng)值,通過響應(yīng)面法優(yōu)化菌株發(fā)酵工藝條件,為植物材料中花青素類物質(zhì)的資源開發(fā)及深度利用提供科學(xué)的方法與依據(jù)。
1.1.1 材料與菌株
火龍果(Hylocereus undulatusBritt),品種為玉龍果,產(chǎn)于廣東湛江,市購。
20種供試食用真菌:滑菇(Pleurotus ostreatus)、茯苓(Wolfporia cocos)、黃傘(Pholiota adiposa)、香菇(Lentinula edodes)、阿魏菇(Pleurotus ferulae)、猴頭菇(Hericium erinaceus)、蛹蟲草(Cordyceps militaris)、毛栓菌(Trametes hirsuta)、桑黃(Fleckedflesh polypore)、金針菇(Flammulina velutipes)、繡球菌(Sparassis crispa)、長根菇(Pleurotus ne brodensis)、黑平菇(Pleurotus ostreatus)、裂褶菌(Schizo phyllum commune)、野蘑菇(Agaricus arvensis)、蜜環(huán)菌(Armillaria mellea)、灰褐香蘑(Lepista panaeola)、白小圈齒麟傘(Pholiota albocrenulata)、玉覃離褶傘(Lyophyllum shimeji)、毛柄庫恩菇(Kuehneromyces mutabilis),依次用2~21表示,所有菌株均由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院菌種保藏中心提供。
1.1.2 試劑
醋酸(分析純):西隴科學(xué)股份有限公司;醋酸鈉、鹽酸、硫酸鎂、氯化鉀(均為分析純):天津市百世化工有限公司;葡萄糖(分析純):天津市永大化學(xué)試劑有限公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.3 培養(yǎng)基
液體培養(yǎng)基[19]:葡萄糖2%、酵母膏0.2%、蛋白胨0.2%、磷酸二氫鉀0.046%、硫酸鎂0.05%、磷酸氫二鉀0.1%,pH自然,115 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。
火龍果果皮液體培養(yǎng)基:將火龍果果皮去除綠色部分,冷凍干燥,粉碎過100目篩,按料液比1∶45(g∶mL)加入到液體培養(yǎng)基中,115 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。
FA2104電子分析天平:上海良平儀器儀表有限公司;V-5000型722分光光度計:上海元析儀器有限公司;DF-15高速萬能粉碎機:浙江溫嶺市林大機械有限公司;SPX-250B人工智能生化培養(yǎng)箱:天津市泰斯特儀器有限公司;Super-Genie U大流量RO純水超純水工作站:上海樂楓生物科技有限公司;CR-080S超聲波清洗器:深圳市春霖清洗設(shè)備有限公司;DHG-9073BS-Ⅲ電熱鼓風(fēng)干燥箱:上海新苗醫(yī)療器械有限公司;NRY-1102立式恒溫搖床:上海南榮實驗室設(shè)備有限公司;TG16A-WS臺式高速微量離心機:上海盧湘儀離心機儀器有限公司;RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠;L5S紫外可見分光光度計:上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司。
1.3.1 食用真菌的篩選
將活化后的供試食用真菌分別接種到液體培養(yǎng)基中,100 r/min、25 ℃培養(yǎng)3 d得種子液;將種子液按4%的接種量接種于火龍果果皮液體培養(yǎng)基中,以未接種的火龍果果皮液體培養(yǎng)基為空白對照,100 r/min、25 ℃培養(yǎng)7 d,測定發(fā)酵液中的花青素含量,篩選出花青素含量最高的食用真菌作為后續(xù)工藝優(yōu)化用菌株。
1.3.2 食用菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素工藝優(yōu)化
單因素試驗:固定其他條件不變,考察發(fā)酵溫度(22.5℃、25.0 ℃、27.5 ℃、30.0 ℃、32.5 ℃)、料液比(1∶40、1∶45、1∶50、1∶55、1∶60)(g∶mL)、發(fā)酵時間(3 d、5 d、7 d、9 d、11 d)、接種量(2%、4%、6%、8%、10%)對發(fā)酵液中花青素含量的影響。
響應(yīng)面試驗:以單因素試驗結(jié)果為依據(jù),以花青素含量(Y)為響應(yīng)值,選擇發(fā)酵時間(A)、接種量(B)、發(fā)酵溫度(C)和料液比(D)4個因素為自變量,采用Design Expert 8.0.6軟件設(shè)計Box-Behnken響應(yīng)面試驗,試驗因素與水平見表1。
表1 食用菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素工藝優(yōu)化Box-Behnken響應(yīng)面試驗因素及水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken response surface tests for anthocyanidin production process optimization from pitaya pericarp by edible fungi fermentation
1.3.3 花青素含量的測定
參照參考文獻[20-21]中pH示差法測定花青素含量。
1.3.4 數(shù)據(jù)處理
每個試驗重復(fù)測定3次,結(jié)果用“平均值±標(biāo)準差”表示,采用Excel 2013對數(shù)據(jù)進行處理;采用Origin 2019軟件繪圖;通過Design Expert 8.0.6軟件響應(yīng)面試驗結(jié)果。
20種供試食用真菌菌株發(fā)酵火龍果果皮后,發(fā)酵液中的花青素含量見圖1。
圖1 20種供試食用真菌發(fā)酵火龍果果皮花青素含量的測定結(jié)果Fig.1 Determination results of anthocyanin contents in pitaya pericarp fermented by 20 kinds of tested edible fungi
由圖1可知,火龍果果皮經(jīng)供試食用真菌發(fā)酵后,花青素含量(0.20~1.90mg/100mL)均比空白對照(0.17mg/100mL)有所增加,表明經(jīng)微生物發(fā)酵可促進火龍果果皮中花青素的形成和釋放。其中,蜜環(huán)菌(菌株17)發(fā)酵后花青素含量最高,為(1.90±0.02)mg/100 mL,顯著高于空白對照及其他供試菌株,為空白對照的11.18倍,故而后續(xù)試驗采用蜜環(huán)菌為供試菌株。
2.2.1 發(fā)酵溫度對花青素含量的影響
發(fā)酵溫度對蜜環(huán)菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素的影響見圖2。
圖2 發(fā)酵溫度對花青素含量的影響Fig.2 Effect of fermentation temperature on anthocyanidin contents
由圖2可知,隨著發(fā)酵溫度的升高,發(fā)酵液中的花青素含量呈先升高后下降的趨勢,當(dāng)發(fā)酵溫度為25 ℃時,花青素含量最高為1.84 mg/100 mL,分析原因可能是由于發(fā)酵溫度過低或過高都不利于蜜環(huán)菌生長,導(dǎo)致發(fā)酵性能下降[22]。同時還因為花青素不能耐受高溫,高溫時可能引起花青素的結(jié)構(gòu)變化甚至分解,從而使得花青素含量下降[22-23]。綜合考慮,確定最佳發(fā)酵溫度為25 ℃。
2.2.2 發(fā)酵時間對花青素含量的影響
發(fā)酵時間對蜜環(huán)菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素的影響見圖3。
圖3 發(fā)酵時間對花青素含量的影響Fig.3 Effect of fermentation time on anthocyanidin contents
由圖3可知,在發(fā)酵3~5d內(nèi),花青素含量隨發(fā)酵延長而逐漸增加,當(dāng)發(fā)酵5d時,花青素含量達最大,為1.90 mg/100 mL。發(fā)酵5 d后,隨著發(fā)酵時間延長,花青素含量逐漸降低。分析原因可能是發(fā)酵時間過短,微生物群體較小,生長較為緩慢且以菌體生長為主,用于轉(zhuǎn)化的酶積累較少,故而轉(zhuǎn)化花青素的量也相應(yīng)較少;發(fā)酵5 d時菌體生長進入快速期,次級代謝轉(zhuǎn)旺,花青素轉(zhuǎn)化速度加快,含量增長亦加快;發(fā)酵時間過長,因次級代謝旺盛,會產(chǎn)生更多代謝物質(zhì),與花青素發(fā)生復(fù)雜反應(yīng),導(dǎo)致花青素結(jié)構(gòu)破壞,從而使花青素含量下降。綜合考慮,選擇最佳發(fā)酵時間為5 d。
2.2.3 料液比對花青素含量的影響
料液比對蜜環(huán)菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素的影響見圖4。
圖4 料液比對花青素含量的影響Fig.4 Effect of material-liquid ratio on anthocyanidin contents
由圖4可知,花青素的含量隨料液比在1∶40~1∶50(g∶mL)范圍減小而增加,當(dāng)料液比達到1∶50時,花青素含量達最大值1.94 mg/100 mL;繼續(xù)增大料液比,花青素含量略有降低但變化不大。原因可能是因隨發(fā)酵液體積增加,火龍果皮粉與發(fā)酵液接觸面積亦不斷增加,加快了花青素類物質(zhì)的溶出速度,但發(fā)酵液用量過大,會加速果皮中其他成分溶出,溶出物與花青素反應(yīng)或干擾花青素穩(wěn)定性,導(dǎo)致花青素的得率反而降低。綜合考慮,選擇最佳料液比為1∶50(g∶mL)。
2.2.4 接種量對花青素含量的影響
接種量對蜜環(huán)菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素的影響見圖5。
圖5 接種量對花青素含量的影響Fig.5 Effect of inoculum on anthocyanidin content
由圖5可知,隨著接種量不斷增大,發(fā)酵液中花青素含量逐漸升高,當(dāng)接種量為6.0%時,花青素含量達到最高,為1.87 mg/100 mL;繼續(xù)增加接種量,花青素含量略有下降并趨于穩(wěn)定,分析原因可能是接種量過大,微生物生長較快,使群體峰值較早出現(xiàn),從而導(dǎo)致生長限制因子快速消耗,容易導(dǎo)致菌體衰老或自溶現(xiàn)象出現(xiàn)。綜合考慮,選擇最佳接種量為6.0%。
2.3.1 響應(yīng)面試驗結(jié)果
根據(jù)單因素試驗結(jié)果,選取發(fā)酵時間(A)、接種量(B)、發(fā)酵溫度(C)和料液比(D)作為考察因素,以花青素含量(Y)為響應(yīng)值,采用Design Expert 8.0.6軟件設(shè)計Box-Behnken響應(yīng)面試驗,試驗設(shè)計及結(jié)果見表2,回歸模型方差分析見表3。
表2 蜜環(huán)菌發(fā)酵火龍果果皮產(chǎn)花青素工藝優(yōu)化Box-Behnken試驗設(shè)計及結(jié)果Table 2 Design and results of Box-Behnken tests for anthocyanidin production process optimization from pitaya pericarp by Armillaria mellea
表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model
采用Design Expert 8.0.6對表2的數(shù)據(jù)進行多元回歸擬合,得到各因素水平對花青素含量的二次多項回歸模型方程:Y=2.04+0.078A+0.050B-0.12C+0.012D-0.089AB+0.013AC+5.75AD+0.043BC-5BD+0.039CD-0.37A2-0.30B2-0.33C2-0.063D2。
由表3可知,回歸模型P值<0.0001,極顯著,失擬項P值>0.05,不顯著,表明模型高度可靠[24-27]。決定系數(shù)R2=0.957 3,說明模型能解釋95.73%的響應(yīng)值變化,誤差小,模型F值=22.42、調(diào)整決定系數(shù)R2Adj=0.914 6,表明該模型預(yù)測值與實測值擬合度高,可以很好地解釋響應(yīng)值的實際變化情況。4個因素對花青素轉(zhuǎn)化的影響程度為C>A>B>D,即發(fā)酵溫度>發(fā)酵時間>接種量>料液比。其中,一次項A、C,二次項A2、B2、C2對花青素含量的影響極顯著(P<0.01),一次項B,交互項AB對花青素含量影響顯著(P<0.05),其他項對花青素含量影響不顯著(P>0.05)。結(jié)果表明,該模型可較好地預(yù)測不同條件下花青素轉(zhuǎn)化量的變化規(guī)律。
2.3.2 因素間交互作用分析
響應(yīng)面和等高線圖可直觀表示各因素間交互作用對花青素含量的影響。三維響應(yīng)面圖中坡度越陡,說明該因素對響應(yīng)值的影響越大,反之,走勢平滑則表明影響較小[25-26]。等高線呈橢圓形代表兩因素間交互作用較強,圓形則代表交互作用不顯著。發(fā)酵時間與接種量間交互作用對花青素含量影響的響應(yīng)面及等高線見圖6。由圖6可知,發(fā)酵時間與接種量間交互作用對花青素含量影響的響應(yīng)面呈凸面,坡度較陡;等高線呈橢圓形,顏色變化較快,說明AB交互作用顯著,與方差分析結(jié)果一致。
圖6 發(fā)酵時間與接種量間交互作用對花青素含量影響的響應(yīng)面(a)及等高線(b)Fig.6 Response surface plots (a) and contour lines (b) of effects of interaction between each factor on anthocyanidin content
2.3.3 驗證試驗結(jié)果
通過Design Expert 8.0.6軟件對二次回歸方程各個自變量求極值,得到預(yù)測的最佳工藝條件:發(fā)酵時間5.17 d、接種量6.2%、發(fā)酵溫度22.23 ℃、料液比1∶49.22(g∶mL),在此條件下花青素含量預(yù)測值為2.04 mg/100 mL??紤]實際操作,將最佳工藝條修正為發(fā)酵時間5 d、接種量6%、發(fā)酵溫度25℃、料液比1∶50(g∶mL),在此條件下進行5次平行驗證試驗,得到發(fā)酵液中花青素含量實際值為(2.03±0.02)mg/100 mL。與預(yù)測值2.04 mg/100 mL接近,誤差極小,說明該模型能準確反映各因素的變化與花青素含量之間的關(guān)系,模型設(shè)計可靠。
本研究以花青素含量為評價指標(biāo),選取20種食用真菌發(fā)酵火龍果果皮,篩選得到蜜環(huán)菌轉(zhuǎn)化火龍果皮中花青素的效率最高,花青素含量是空白對照的11.18倍;通過單因素試驗和Box-Behnken試驗設(shè)計確定蜜環(huán)菌轉(zhuǎn)化花青素發(fā)酵工藝條件為:發(fā)酵時間5 d、接種量6%、發(fā)酵溫度25 ℃、料液比1∶50(g∶mL),在此條件下,發(fā)酵液中花青素含量最高達到(2.03±0.02)mg/100 mL,是未經(jīng)食用真菌轉(zhuǎn)化的11.94倍。結(jié)果證實,微生物可有效轉(zhuǎn)化火龍果皮中花青素。