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    廣東規(guī)?;u場(chǎng)死雞胚中雞毒支原體的分離鑒定、致病性及藥物敏感性

    2024-02-01 15:23:02陳玥彤劉曉涵王芷洋趙宇馨周鐵忠胡增金王少輝田明星丁思羽祁晶晶于圣青
    畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào) 2024年1期
    關(guān)鍵詞:血清

    陳玥彤,劉曉涵,王芷洋,趙宇馨,周鐵忠,胡增金,朱 悅,王少輝, 田明星,丁思羽,祁晶晶*,于圣青*

    (1.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院上海獸醫(yī)研究所,上海 200241;2.錦州醫(yī)科大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,錦州 121000; 3.山東畜牧獸醫(yī)職業(yè)學(xué)院,濰坊 261000;4.揚(yáng)州優(yōu)佳創(chuàng)生物科技有限公司,揚(yáng)州 225261)

    雞毒支原體(Mycoplasmagallisepticum,MG)又稱為雞敗血支原體、雞霉形體,是雞慢性呼吸道疾病(chronic respiratory diseases,CRD)的主要病原[1]。受感染的雞會(huì)出現(xiàn)流涕、呼吸啰音、叫聲嘶啞、食減神郁、縮頸垂翅等,病程一般持續(xù)時(shí)間為1~2月,若無并發(fā)癥其死亡率在10%左右。若與其它病原體混合感染,死亡率可迅速上升至60%[2]。MG主要有水平和垂直兩種傳播方式,感染該病原將會(huì)影響雞群增重、生長(zhǎng)發(fā)育和產(chǎn)蛋率,并且一般很難根治[3]。Osman等[4]對(duì)埃及雞群的MG進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)MG在雞群的感染率達(dá)到33.3%。Roussan等[5]對(duì)約旦雞場(chǎng)進(jìn)行了調(diào)查,發(fā)現(xiàn)MG的陽性率達(dá)到了6.6%,且MG和禽流感病毒的混合感染雞場(chǎng)比例達(dá)到了5.7%。在我國(guó),程倩倩[6]對(duì)太原、忻州兩市的15個(gè)蛋雞場(chǎng)的1 325份雞血清進(jìn)行平板凝集試驗(yàn),結(jié)果顯示這些雞場(chǎng)MG抗體的陽性率平均為36.3%。姜蘭蘭等[7]對(duì)北京市127個(gè)養(yǎng)雞場(chǎng)進(jìn)行調(diào)查,發(fā)現(xiàn)MG抗體陽性率達(dá) 80.6%。林琳[8]對(duì)閩北地區(qū)不同免疫背景及不同用途的90個(gè)白羽肉雞養(yǎng)殖場(chǎng)采集1 800份喉氣管拭子樣品進(jìn)行Real-time PCR檢測(cè),MG陽性場(chǎng)率為33.33%。由此可見,國(guó)內(nèi)外MG感染情況十分嚴(yán)重。郭楊麗等[9]和魏津等[10]從MG感染的氣囊病料中分離出MG;隋兆峰等[11]從病雞肺、氣囊中分離出MG;牛家強(qiáng)等[12]從疑似慢性呼吸道病感染的雞氣管中分離出MG;吳春琳等[13]從感染的雞喉拭子中分離出MG。目前較少見從雞胚中分離MG的報(bào)道。國(guó)內(nèi)外對(duì)于MG 的研究已開展百余年,但至今對(duì)支原體病的控制,尤其對(duì)MG感染的防控仍是現(xiàn)代集約化養(yǎng)禽業(yè)的重點(diǎn)。目前藥物控制、疫苗免疫和加強(qiáng)管理是控制該病的主要措施。國(guó)內(nèi)外禽支原體病治療和預(yù)防過程中使用較為廣泛的藥物是大環(huán)內(nèi)酯類、氟喹諾酮類、四環(huán)素類等抗菌藥,但不同地區(qū)分離的菌株對(duì)抗生素的敏感性有差異,且耐藥性問題也較為嚴(yán)重,由此造成MG感染防治困難,病情反復(fù),威脅公共衛(wèi)生安全。本研究對(duì)廣東某禽業(yè)未出殼死胚進(jìn)行分離培養(yǎng)、血清學(xué)試驗(yàn)、16S rRNA支原體通用引物序列鑒定及基于該基因序列的遺傳進(jìn)化分析、動(dòng)物致病性及藥物敏感性試驗(yàn),為今后的雞毒支原體診斷、治療及疫苗研制提供了基礎(chǔ)保障。

    1 材料與方法

    1.1 病料、菌株、試劑及實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    病料來源于廣東某禽業(yè)未出殼死胚;MG Rlow菌株、MG標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清、MS標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清、SPF雞陰性血清均購自中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所;支原體培養(yǎng)基基礎(chǔ)購自青島海博生物技術(shù)有限公司;馬血清購自美國(guó)Gibco公司;瓊脂購自英國(guó)Oxoid公司;膠回收試劑盒購自美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司;2×Taq Master Mix、DM2000 DNA Marker、青霉素和氯化鈉購自上海生工生物工程有限股份公司;綠如藍(lán)核酸染料購自澤葉生物有限公司;SPF雞胚和3周齡SPF雞均購自浙江立華農(nóng)業(yè)科技有限公司。

    雞毒支原體液體培養(yǎng)基[14]:支原體基礎(chǔ)培養(yǎng)基26.4 g溶解于800 mL ddH2O中,高壓滅菌15 min,冷卻至室溫,無菌加入10%馬血清;LB液體培養(yǎng)基:Tryptone 8 g、Yeast extract 4 g、NaCl 8 g溶解于800 mL ddH2O中高壓滅菌后備用。LB固體培養(yǎng)基:在上述液體LB培養(yǎng)基基礎(chǔ)上加入12 g瓊脂高壓滅菌后制成平板放入4 ℃冰箱備用。

    1.2 抗菌藥物信息

    替米考星(含量90%,批號(hào)909G201),購自北京索萊寶科技有限公司;泰樂菌素(批號(hào)FS1622261),購自天津阿爾塔科技有限公司;泰萬菌素(800 U·mg-1)、紅霉素(920 U·mg-1,批號(hào)Y18F8C29407)、吉他霉素(含量>1 400 U·mg-1,批號(hào)L09J9K65033)、泰妙菌素(含量98%,批號(hào)X10S6H3193)、氟苯尼考(含量98%,批號(hào)S19A8Y34179)、多西環(huán)素(含量98%,批號(hào)Y30A8C42634)及恩諾沙星(規(guī)格98%,批號(hào)H20A9Z68212)均購自上海源葉生物科技有限公司;鹽酸沃尼妙林(含量98.8%,批號(hào)100603),購自湖北龍翔藥業(yè)科技股份有限公司;林可霉素(批號(hào)C14549481)、土霉素(批號(hào)C14849549)購自麥克林試劑;大觀霉素(批號(hào)WD0317B4014J)購自生工生物工程(上海)股份有限公司。

    1.3 病原的分離培養(yǎng)與形態(tài)觀察

    取死胚卵黃液、卵黃組織、肺和肝于4 mL含100 μg·mL-1濃度青霉素的支原體液體培養(yǎng)基中,37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱放置5 h后,5 000 r·min-1離心10 min,取上清液1 mL,接種至新的支原體液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2~3 d,觀察培養(yǎng)基顏色變化。待培養(yǎng)基顏色由紅變橘黃時(shí),將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)接到固體培養(yǎng)基上培養(yǎng),4~5 d后于顯微鏡下觀察菌落形態(tài),并挑取單菌落,轉(zhuǎn)接于液體培養(yǎng)基中擴(kuò)大培養(yǎng)。

    1.4 細(xì)菌L型鑒定

    將分離株用不含青霉素的培養(yǎng)基連續(xù)傳代9次,再將其接種于固體支原體培養(yǎng)基上,3~5 d涂片、染色鏡檢,觀察其是否恢復(fù)成細(xì)菌形態(tài)。

    1.5 平板凝集試驗(yàn)

    于50 mL培養(yǎng)基中擴(kuò)大培養(yǎng)分離菌株,10 000 r·min-1離心15 min,500 μL PBS緩沖液重懸菌體沉淀,取1片干凈載玻片,從左邊至右分別滴加10 μL MG標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清、 MS標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清、SPF雞陰性血清,再分別向血清中滴加10 μL重懸菌液,用槍頭將其混勻,1 min觀察結(jié)果。

    1.6 分子生物學(xué)鑒定

    1.6.1 分離菌株基因組粗提 取分離株菌液2 mL,12 000 r·min-1離心15 min,用移液槍吸掉上清部分,用200 μL PBS重懸沉淀,夾上防爆夾,放在浮漂上,水溫100 ℃煮10 min,冰上放置5 min,5 000 r·min-1離心5~10 min,吸取上清部分即為菌株的粗提基因組。

    1.6.2 支原體16 S rRNA通用引物PCR擴(kuò)增 根據(jù) GenBank 中MG Rlow株16S rRNA基因設(shè)計(jì)引物,由生工生物工程(上海)有限公司合成,上下游引物序列分別為5′-GAGTTTGATCCTGGCTCA-3′和5′-ATTACCGCGGCTGGCAG-3′。對(duì)分離菌進(jìn)行PCR擴(kuò)增的預(yù)期產(chǎn)物大小為500~600 bp。PCR 擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,72 ℃最后延伸10 min;共30個(gè)循環(huán)。

    1.6.3 PCR產(chǎn)物測(cè)序 取10 μL上述PCR產(chǎn)物,在1%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳,電壓100 V,電泳30 min,對(duì)產(chǎn)物條帶進(jìn)行膠回收:具體操作參考Thermo Fisher Scientific膠回收試劑盒說明書進(jìn)行。測(cè)定濃度后,送上海擎科生物公司進(jìn)行序列測(cè)序。將測(cè)序結(jié)果用BLASTp檢索non-redundant protein sequences (nr)數(shù)據(jù)庫,并用MEGA 5.0軟件與其它支原體16S rRNA進(jìn)行序列比對(duì)。

    1.7 支原體分離菌株生長(zhǎng)曲線測(cè)定試驗(yàn)

    將純化后的分離株轉(zhuǎn)接到支原體液體培養(yǎng)基中,待培養(yǎng)基顏色剛剛變黃,按5%轉(zhuǎn)接比例轉(zhuǎn)接到新的支原體液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取培養(yǎng)不同時(shí)間點(diǎn)(0、12、15、18、21、24、28、32、36、48和60 h)的菌液,分別測(cè)定其顏色改變單位(color change units, CCUs)和菌落形成單位(colony forming units, CFUs)。

    1.8 血凝試驗(yàn)

    在支原體液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)MGRlow和待鑒定的分離菌株,至液體變?yōu)殚冱S色,8 000 r·min-1離心后PBS洗滌2次,最后用PBS重懸并調(diào)整菌液濃度,使其OD600 nm值為1.0。取1塊細(xì)胞凝集板,每孔加入25 μL PBS,取調(diào)整好濃度的待測(cè)菌液25 μL加入第1孔,吹打均勻后換槍頭吸取25 μL至第2孔,重復(fù)該操作至第11孔,吸取25 μL棄掉,最后1孔為血細(xì)胞對(duì)照組。每孔再加入25 μL PBS和25 μL 1%雞紅細(xì)胞,震蕩混勻,室溫40 min觀察結(jié)果。

    1.9 致病性試驗(yàn)

    1.9.1 SPF雞胚攻毒試驗(yàn) 將分離株以及MG Rlow分別培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,8 000 r·min-1離心10 min,PBS洗滌2次后用PBS重懸即為待攻毒菌液。將SPF雞胚在溫度38 ℃、濕度60%的孵化箱中進(jìn)行孵化至7日齡,取35只成功孵化的雞胚,分為7組,每組5只,分別接種新鮮處理的5株分離株、MG Rlow攻毒菌液(2×105CCU·只-1),以及PBS (200 μL·只-1),接種方式為卵黃囊接種。接種后繼續(xù)孵化雞胚,直至出殼,每天照蛋一次,記錄雞胚死亡情況。

    1.9.2 SPF雞攻毒試驗(yàn) 準(zhǔn)備新鮮的分離株和MG Rlow株攻毒菌液,方法同“1.9.1”,取3周齡SPF雞35只,采取氣管灌注方式進(jìn)行攻毒,每個(gè)分離株和MG Rlow各攻毒5只,攻毒劑量為5×107CCU·只-1,剩余5只按同樣方式灌注500 μL PBS作為陰性對(duì)照,觀察雞的臨床癥狀,3周后解剖雞,并拍照記錄病理變化。

    1.10 最小抑菌濃度 (MIC)測(cè)定

    將分離株以及MG Rlow分別培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,以MG菌株編號(hào)標(biāo)記96孔板各行。每行第1孔加入用培養(yǎng)基配制好的兩倍最高測(cè)試濃度的抗生素200 μL,其后2~12孔則均加入100 μL支原體液體培養(yǎng)基。吸取第1孔100 μL至第2孔,依次稀釋直至第10孔吹打混勻后吸棄100 μL。用支原體培養(yǎng)基將原培養(yǎng)液稀釋至105CCU·mL-1。第12孔以及第10~第1孔,由低稀釋度到高稀釋度依次加入100 μL菌液。其中倒數(shù)第二孔為陰性對(duì)照,倒數(shù)第一孔為陽性對(duì)照。置于培養(yǎng)箱,37 ℃溫箱孵育4~7 d,每日觀察,直至陽性對(duì)照孔顏色變黃且陰性對(duì)照孔顏色未變,抑制菌株生長(zhǎng)不發(fā)生顏色變化的最高稀釋度即為測(cè)試藥物的最小抑菌濃度(MIC)。每種藥物設(shè)3個(gè)平行。每種藥物的MIC重復(fù)測(cè)定3次。

    2 結(jié) 果

    2.1 病原的分離培養(yǎng)與形態(tài)學(xué)觀察

    取死胚的卵黃液、卵黃膜、肺和肝的浸泡液,在支原體培養(yǎng)基中培養(yǎng)1~2 d,可見顏色由紅變?yōu)殚冱S,將變黃菌液10倍稀釋涂于支原體固體培養(yǎng)基,培養(yǎng)5~7 d可見小水珠樣菌落,低倍鏡下可見其菌落形態(tài)為中央凸起的“油煎蛋狀”(圖1),符合支原體的形態(tài)特征。

    2.2 細(xì)菌L型鑒定

    將各分離株用支原體培養(yǎng)基連續(xù)傳代8~10代,接種于支原體固體培養(yǎng)基上,其菌體依然能通過0.45 μm濾器,并保持其原來菌落形態(tài)。說明分離株不是細(xì)菌或病毒。

    2.3 平板凝集鑒定

    各分離株能與MG標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清反應(yīng),與MS標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清、SPF雞血清不發(fā)生凝集反應(yīng),見圖2。

    2.4 分子生物學(xué)鑒定

    2.4.1 支原體16S rRNA通用引物PCR擴(kuò)增 將分離株粗提基因組DNA用作模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,在550 bp左右可見條帶,如圖3。

    A. 分離株在支原體液體培養(yǎng)基中生長(zhǎng)后培養(yǎng)基顏色變化;B. 分離株在40倍物鏡下菌落形態(tài);C. 分離株在 100倍物鏡下菌落形態(tài) A. The color of the culture medium changes after the isolated strain grows in the liquid medium of Mycoplasma; B. Colony morphology of isolated strains under a 40× objective lens; C. Colony morphology of isolated strains under a 100× objective lens圖1 分離株在支原體液體培養(yǎng)基和固體培養(yǎng)基上的生長(zhǎng)狀態(tài)Fig.1 The growth of new isolates on liquid medium and solid medium of mycoplasma

    A~E. 各分離株與血清的反應(yīng);F. MG Rlow與血清的反應(yīng);1. MG標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清;2. MS標(biāo)準(zhǔn)陽性雞血清;3. SPF雞血清 A-E. The isolates react with sera; F. MG Rlow reacts with sera; 1. MG standard positive chicken sera; 2. MS standard positive chicken sera; 3. SPF chicken sera圖2 分離菌株平板凝集試驗(yàn)Fig.2 Plate agglutination test of isolated strains

    M. DM 2000 marker;a~e. 各分離株基因組DNA;f. MG Rlow基因組DNA;g. ddH2O M. DM 2000 marker; a-e. Genomic DNAs of each isolate; f. Genomic DNAs of MG Rlow; g. ddH2O圖3 分離株用支原體16S rRNA 通用引物PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.3 The PCR amplification results of different isolates using universal primers for 16S rRNA

    2.4.2 測(cè)序與分析 將擴(kuò)增產(chǎn)物送上海擎科生物公司進(jìn)行序列測(cè)定,用DNA Strar比對(duì)分離株和MG 16S rRNA序列,結(jié)果顯示,分離株的16S rRNA與MG相似性達(dá)99.9%,表明這5株分離株均為雞毒支原體,分別命名為MG 18-31、MG 18-32、MG 18-3、MG 8-13、MG 8-15。

    2.5 分離株生長(zhǎng)曲線測(cè)定

    各分離株在支原體液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)0~60 h的生長(zhǎng)情況大致相同,以其中一株MG 18-31為例,可見該菌株在0~32 h均處于滴度上升期,32 h達(dá)峰值,此時(shí)滴度為109CCU·mL-1,32 h后滴度開始下降,60 h分離株死亡,分離株CFU計(jì)數(shù)法生長(zhǎng)曲線與CCU計(jì)數(shù)法生長(zhǎng)曲線結(jié)果完全一致,如圖4。

    A. 分離株CCU計(jì)數(shù)法生長(zhǎng)曲線;B. 分離株CFU計(jì)數(shù)法生長(zhǎng)曲線 A. Growth curve based on CCU counting method; B. Growth curve based on CFU counting method圖4 分離株MG 18-31生長(zhǎng)曲線Fig.4 Growth curve of MG 18-31 strain

    A~E. 各分離株與紅細(xì)胞發(fā)生凝集反應(yīng);F. MG Rlow與紅細(xì)胞發(fā)生凝集反應(yīng);1~11.血清稀釋度分別為1∶2、1∶4、1∶8、1∶16、1∶32、1∶64、1∶128、1∶256、1∶512、1∶1 024、1∶2 048;12.陰性對(duì)照 A-E. Agglutination reaction of each isolate with red blood cells; F. Agglutination reaction of Rlow with red blood cells; 1-11. Sera were diluted at 1∶2, 1∶4, 1∶8, 1∶16, 1∶32, 1∶64, 1∶128, 1∶256, 1∶512, 1∶1 024, 1∶2 048, respectively; 12. Negative control圖5 分離菌株血凝試驗(yàn)Fig.5 Hemagglutination test of the different isolates

    2.6 血凝試驗(yàn)

    各分離株(MG18-31、MG 18-32、MG18-3、MG 8-13、MG 8-15)及MG Rlow分別與1%雞紅細(xì)胞發(fā)生凝集反應(yīng),凝集效價(jià)為1∶16、1∶4、1∶4、1∶4、1∶4和1∶8,見圖5。

    2.7 SPF雞胚致病性試驗(yàn)

    分離株和MG Rlow菌液(106CCU·mL-1,200 μL·只-1)和PBS(200μL·只-1)各接種5枚6~8日齡SPF雞胚卵黃囊,結(jié)果顯示感染雞胚大多于17~21 d死亡,其中MG Rlow、MG 18-31、MG 18-3攻毒雞胚全部死亡,MG 18-32、MG 8-13出殼一枚,MG 8-15出殼兩枚,MG Rlow、MG 18-31、MG 18-3死亡率均為100%,MG 18-32和MG 8-13死亡率為80%,MG 8-15死亡率為60%。死亡胚體表現(xiàn)為胚體發(fā)育遲緩、蜷縮,剖檢可見雞氣囊有干酪物,出殼感染雞表現(xiàn)為生長(zhǎng)遲緩,精神不振,對(duì)照組均正常出殼,見圖6。

    2.8 SPF雞攻毒試驗(yàn)

    分離株和MG Rlow各攻毒5只三周齡SPF雞,每只雞攻毒500 μL,攻毒劑量為108CCU·mL-1,結(jié)果顯示雞在攻毒后10 d左右出現(xiàn)啰音,叫聲嘶啞。3周后剖檢主要病變?yōu)殡u氣囊增厚,有干酪樣物附著于表面,PBS組氣囊未見病變,見圖7。

    2.9 MIC測(cè)定

    MG分離株對(duì)13種抗生素藥物的MIC測(cè)定結(jié)果見表1。5株MG分離株對(duì)鹽酸沃尼妙林(<0.062 5 μg·mL-1)、多西環(huán)素(0.062 5 μg·mL-1)、泰妙菌素(0.062 5~0.125 μg·mL-1)及泰萬菌素(0.062 5~0.25 μg·mL-1)均表現(xiàn)出較高的敏感性;其次是土霉素(0.125~2 μg·mL-1)、氟苯尼考(0.5~4 μg·mL-1)、大觀霉素(1~16 μg·mL-1)及恩諾沙星(2~8 μg·mL-1);對(duì)泰樂菌素(4~16 μg·mL-1)、替米考星(8~64 μg·mL-1)、吉他霉素(>32 μg·mL-1)、紅霉素(>32 μg·mL-1),特別是對(duì)林可霉素(8~128 μg·mL-1)的敏感性較低。

    A~F. MG 18-31、MG 18-32、MG 18-3、MG 8-13、MG 8-15、MG Rlow感染雞胚死胚剖檢氣囊病變;G. PBS對(duì)照剖檢氣囊;H~M. MG 18-31、MG 18-32、MG 18-3、MG 8-13、MG 8-15、MG Rlow感染雞胚蜷縮狀死胚;N. 感染雞胚與PBS對(duì)照組出殼后雞狀態(tài)對(duì)比 A-F. MG 18-31, MG 18-32, MG 18-3, MG 8-13, MG 8-15, MG Rlow infected chicken embryos with dead embryo dissection for balloon lesions; G. PBS control dissection of airbags; H-M Infected chicken embryos with MG 18-31, MG 18-32, MG 18-3, MG 8-13, MG 8-15, and MG Rlow resulted in curled up dead embryos; N. Comparison of chickens hatching from infected chicken embryos and PBS control chicken embryos圖6 雞胚致病性試驗(yàn)Fig.6 Chicken embryos infection test

    A~G. MG 18-31、MG 18-32、MG 18-3、MG 8-13、MG 8-15、MG Rlow攻毒SPF雞氣囊;G. PBS對(duì)照SPF雞氣囊 A-G. Air bags from MG 18-31, MG 18-32, MG 18-3, MG 8-13, MG 8-15, or MG Rlow challenged SPF chicken; G. Air bags from PBS inoculated SPF chicken圖7 SPF雞攻毒試驗(yàn)Fig.7 SPF chickens infection test

    表1 MG分離株和標(biāo)準(zhǔn)菌株MG Rlow對(duì)13種藥物的MIC測(cè)定結(jié)果Table 1 The minimum inhibitory concentrations of 13 drugs for 5 MG isolates and standard strain MG Rlow μg·mL-1

    3 討 論

    1905年英國(guó)科學(xué)家Dodd首次發(fā)現(xiàn)了MG感染火雞的病例,當(dāng)時(shí)將此病稱為“流行性肺腸炎”[15]。1933年Nelson[16]首次從感染雞群中分離到MG,之后便在全世界范圍內(nèi)廣泛傳播。Marouf等[17]在進(jìn)行細(xì)菌學(xué)檢查的332個(gè)樣本中,發(fā)現(xiàn)206個(gè)樣本呈MG陽性,陽性率為62%。雖然MG感染率很高,但是若無并發(fā)癥其死亡率并不高,在10%左右。若與其它病原體[如新城疫病毒(Newcastle disease virus,NDV)、雞傳染性支氣管炎病毒(infectious bronchitis virus,IBV)、大腸桿菌(Escherichiacoli,E.coli)、禽流感病毒(avian influenza virus,AIV)等]混感,死亡率可迅速上升至60%[18]。MG因其獨(dú)特的感染表現(xiàn),早期的診斷和預(yù)防顯得尤為重要。目前,MG鑒別診斷方法包括分離鑒定、血清學(xué)及分子生物學(xué)檢測(cè)等。支原體的分離極其困難,成功率不高,盡管這樣,分離鑒定依然是診斷支原體感染的“金標(biāo)準(zhǔn)”。臨床上常用血清學(xué)診斷主要包括血清平板凝集(SPA)、血凝抑制(HI)和酶聯(lián)免疫吸附(ELISA試驗(yàn))[19]三種試驗(yàn)方法。血清學(xué)診斷的優(yōu)點(diǎn)在于可檢測(cè)大量樣本、操作簡(jiǎn)單、快捷、方便,因此臨床上對(duì)該方法應(yīng)用較普遍;但其缺點(diǎn)是存在非特異性反應(yīng)和交叉反應(yīng),易出現(xiàn)假陽性結(jié)果。分子學(xué)檢測(cè)主要以PCR為主,該方法照比血清學(xué)方法更加特異、高效,是目前應(yīng)用最為廣泛的一種檢測(cè)方法。

    本試驗(yàn)對(duì)廣東某規(guī)?;u場(chǎng)死雞胚進(jìn)行細(xì)菌的分離鑒定,結(jié)果從中成功分離到5株MG,且其均為卵黃液中分離,可見從雞胚的卵黃液中分離MG的成功率較高。將這些分離株接到固體培養(yǎng)基上,5 d左右看到和支原體形態(tài)相似的菌落。在無青霉素的液體培養(yǎng)基中連續(xù)傳9代,未見菌落形態(tài)發(fā)生變化,確定分離株不是細(xì)菌或病毒。將分離株菌懸液與MG標(biāo)準(zhǔn)陽性血清混合,可見出現(xiàn)明顯凝集顆粒,與MS標(biāo)準(zhǔn)陽性血清和SPF雞陰性血清混合則未見凝集,初步推測(cè)分離株為雞毒支原體。

    致病性與非致病性禽源支原體主要區(qū)別在于致病性禽源支原體可吸附雞、火雞等的紅細(xì)胞,產(chǎn)生紅細(xì)胞凝集反應(yīng)[20]。血凝試驗(yàn)證實(shí),所分離的5株MG均能產(chǎn)生明顯的血凝反應(yīng),其血凝效價(jià)不完全相同,其中MG18-31株和參考株MG Rlow株的血凝效價(jià)較高,分別為1∶16及1∶8,其余4株MG菌血凝效價(jià)均為1∶4。雞胚感染試驗(yàn)結(jié)果顯示,MG Rlow、MG 18-31、MG 18-3攻毒雞胚死亡率100%,MG 18-32、MG 8-13攻毒雞胚死亡率80%,MG 8-15攻毒死亡率為60%。其中血凝效價(jià)較高的MG18-31株和參考株MGRlow株攻毒后的雞胚均顯示100%死亡,提示血凝效價(jià)高的MG菌株其致病性也可能較強(qiáng),但血凝效價(jià)高低是否與菌株毒力相關(guān)還有待進(jìn)一步研究。

    MG菌對(duì)雞胚攻毒的癥狀比SPF雞攻毒癥狀更為明顯。死亡胚體表現(xiàn)為胚體發(fā)育遲緩、蜷縮,剖檢可見雞氣囊有干酪物,將黃色干酪物進(jìn)行分菌鑒定,均分離到支原體。盡管有小雞順利出殼,但其生長(zhǎng)緩慢,精神沉郁,極少飲水進(jìn)食,站立困難,一周以內(nèi)死亡,說明所分離MG菌株可使雞胚致弱甚至致死。而SPF雞攻毒后主要引起雞聲音沙啞、食欲減退、眼眶輕微紅腫等表征,剖檢后能看到明顯的氣囊病變,但肝、脾、肺等臟器未見明顯病變,僅有個(gè)別雞只有脾腫大現(xiàn)象。結(jié)合攻毒試驗(yàn)結(jié)果,建議對(duì)MG菌株毒力評(píng)估采用雞胚攻毒和SPF雞攻毒兩種評(píng)價(jià)方式共同進(jìn)行。

    由于沒有細(xì)胞壁,支原體不受許多抗生素的影響,如β-內(nèi)酰胺類、糖肽類和針對(duì)細(xì)胞壁合成的磷霉素。在動(dòng)物中,針對(duì)支原體感染的最有效和最廣泛使用的抗菌劑是四環(huán)素類、大環(huán)內(nèi)酯類、氟喹諾酮類和截短側(cè)耳素類抗生素。對(duì)5株MG臨床分離株的藥敏試驗(yàn)結(jié)果顯示,其與標(biāo)準(zhǔn)株MG Rlow的MIC值相比,對(duì)于泰萬菌素(大環(huán)內(nèi)酯類)、多西環(huán)素(半合成四環(huán)素類)、鹽酸沃尼妙林及泰妙菌素(截短側(cè)耳素類)均具有較高敏感性,與標(biāo)準(zhǔn)株MG Rlow的MIC值無顯著性差異;對(duì)于大環(huán)內(nèi)酯類的替米考星、泰樂菌素、紅霉素、吉他霉素,以及氟喹諾酮類的恩諾沙星而言,則表現(xiàn)出不同程度的耐藥趨勢(shì)。國(guó)內(nèi)外有幾項(xiàng)研究報(bào)道了MG的體外藥敏水平[21-24]。MG對(duì)泰妙菌素的MIC值始終低于體外測(cè)試的其他抗菌劑的MIC值;大多數(shù)MG也對(duì)四環(huán)素類抗生素敏感,對(duì)土霉素和多西環(huán)素的MIC值較低;MG對(duì)紅霉素等大環(huán)內(nèi)酯類藥物沒有內(nèi)在的耐藥性,大多數(shù)菌株對(duì)大環(huán)內(nèi)酯類藥物敏感。然而本研究發(fā)現(xiàn)MG分離株對(duì)多種大環(huán)內(nèi)酯類藥物,如替米考星、泰樂菌素、紅霉素、吉他霉素等存在顯著的耐藥性,對(duì)恩諾沙星也存在一定程度的耐藥趨勢(shì)。由于在國(guó)內(nèi)外都常常使用以恩諾沙星、替米考星、泰樂菌素等來治療MG感染,所以國(guó)內(nèi)外都出現(xiàn)了不同程度的耐藥性,MG耐藥性的逐漸攀升增加了臨床的治療壓力和成本,因此需要對(duì)常用抗生素的耐藥機(jī)制進(jìn)行研究以幫助臨床解決耐藥壓力問題,并對(duì)臨床用藥起到指導(dǎo)作用。

    4 結(jié) 論

    盡管目前雞毒支原體分離鑒定的案例較多,從死雞胚中分離培養(yǎng)MG的報(bào)道較少見,本研究從廣東省某規(guī)模化雞場(chǎng)的死雞胚卵黃液中成功分離到5株MG,雞胚和SPF雞攻毒試驗(yàn)均證實(shí)分離株能致死雞胚,引起雞氣囊炎。藥物敏感性試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)這5株MG均對(duì)泰萬菌素、多西環(huán)素、鹽酸沃尼妙林及泰妙菌素有較高敏感性,對(duì)替米考星、泰樂菌素、恩諾沙星、紅霉素、吉他霉素、林可霉素呈現(xiàn)出不同程度耐藥性。該研究為MG的分離鑒定提供可參考的技術(shù)方法,為MG攻毒模型建立提供研究基礎(chǔ),為MG感染治療的用藥選擇提供參考依據(jù)。

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