摘要:春季發(fā)芽期(Timing of spring bud flush,TBF)是茶樹重要的農(nóng)藝性狀,對茶葉的風味品質(zhì)和經(jīng)濟效益均具有重要的影響。為了挖掘調(diào)控茶樹TBF 性狀的關(guān)鍵候選基因,以龍井43×白毫早雜交的F1 群體327 株子代為材料,利用基于該群體構(gòu)建的茶樹高密度遺傳圖譜,采用MapQTL 6.0 和GACD 1.2 軟件對茶樹春季發(fā)芽指數(shù)(Sprouting indexs,SPI)進行數(shù)量性狀基因座(QTL)定位。連續(xù)兩年(2022、2023 年)對群體子代的春季SPI 進行觀測,結(jié)果顯示,SPI 在F1 群體內(nèi)存在明顯的性狀分離,表現(xiàn)出數(shù)量性狀的特征。利用MapQTL6.0 軟件定位到1 個主效的QTL(qSPI-5-1),分別可解釋18.30%(2022 年)和7.60%(2023 年)的表型變異;利用GACD 1.2 軟件定位到2 個穩(wěn)定的QTL 位點(qSPI-1,qSPI-5-2),解釋2.75%~18.40%的表型變異,且qSPI-5-2 與qSPI-5-1 位點基本重合。進一步將上述3 個位點的置信區(qū)間與茶樹參考基因組進行比對,通過基因功能注釋分析共篩選到23 個與調(diào)控茶樹春季發(fā)芽期相關(guān)的候選基因。研究結(jié)果為進一步探究茶樹春季萌發(fā)的調(diào)控基因和分子機理提供了理論參考。
關(guān)鍵詞:茶樹;春季發(fā)芽期;數(shù)量性狀基因座;候選基因
中圖分類號:S571.1;S326 文獻標識碼:A 文章編號:1000-369X(2023)06-747-10
茶樹[Camellia sinensis (L.) O. Kuntze]是多年生常綠木本經(jīng)濟作物。茶樹芽葉經(jīng)加工制成的茶葉,因富含多種對人體健康有益的次生代謝物以及具有良好的風味品質(zhì)而受到人們喜愛[1-3]。糧農(nóng)組織統(tǒng)計數(shù)據(jù)庫(FAOSTAT,www.fao.org/faostat)顯示,目前已有超過48個國家種植茶樹,茶樹已經(jīng)成為全球范圍內(nèi)重要的經(jīng)濟作物。春季發(fā)芽期(Timing of springbud flush,TBF)是茶樹重要的農(nóng)藝性狀,具有早芽性狀的茶樹品種具有較高的栽培育種價值。一方面,茶樹經(jīng)過一個冬季的休止期,春季新梢積累了更多的次級代謝物,使得茶葉品質(zhì)優(yōu)異;另一方面,春季發(fā)芽較早的茶樹品種其茶葉上市早,春茶采收期長,使得春茶產(chǎn)量和經(jīng)濟效益提高。
研究表明,即使在相同的生長環(huán)境下,不同茶樹品種的TBF 差異仍然很大,最大可相差40 d[4]。為明確TBF 的調(diào)控機制和重要基因,科學(xué)家們也開展了相應(yīng)的研究。Wang 等[4]使用抑制差減雜交( Suppression subtractivehybridization,SSH)的方法研究了休眠和萌發(fā)腋芽的差異表達基因( Differentiallyexpressed genes,DEGs),主要涉及脅迫反應(yīng)、能量代謝和激素調(diào)節(jié)等。Hao 等[5]利用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)(RNA-seq)分析了腋芽的休眠期和萌發(fā)期等不同時期的基因表達量,發(fā)現(xiàn)16 125個DEGs,主要富集在表觀遺傳、植物激素信號、胼胝體等調(diào)控通路。Tan 等[6]通過對休眠芽和萌發(fā)芽差異表達基因分析發(fā)現(xiàn),MADS、NY-FC、AP2-ERFs 等轉(zhuǎn)錄因子和植物激素相關(guān)基因可能調(diào)控茶樹休眠和萌發(fā)。近期,Liu等[7] 鑒定到了9 個與茶樹萌芽有關(guān)的CsAP2/ERF 基因,同時發(fā)現(xiàn)D-type 周期蛋白可能與茶芽萌發(fā)有關(guān)。然而,這些重要的候選基因仍需要進一步的功能驗證。
數(shù)量性狀基因座(Quantitative trait locus,QTL)定位研究需要構(gòu)建龐大的作圖群體,并對作圖群體進行基因組水平的測序,以構(gòu)建高密度遺傳圖譜,結(jié)合表型觀測結(jié)果,進行QTL定位分析。但是茶樹育種周期長、自交不親和,難以像水稻、小麥等一年生大田作物一樣構(gòu)建永久作圖群體,這使得利用正向遺傳學(xué)方法解析茶樹重要農(nóng)藝性狀進展緩慢。近年來,隨著茶樹高質(zhì)量參考基因組的發(fā)布,結(jié)合茶樹基因組具有高雜合度的特性,使得采用F1 代擬測交作圖策略[8]研究茶樹QTL 定位取得一定進展。前期課題組以龍井43 和白毫早為親本構(gòu)建了F1 代雜交群體,并構(gòu)建了高密度茶樹遺傳圖譜[9]。龍井43 和白毫早都屬于國家級特早生茶樹品種,觀測發(fā)現(xiàn)TBF 性狀在子代群體中發(fā)生了明顯的性狀分離,有利于QTL 定位分析。本研究以此為基礎(chǔ),對茶樹TBF 進行了連續(xù)兩年的QTL 定位研究,并分析了置信區(qū)間內(nèi)的候選基因,以期為茶樹分子標記輔助育種提供理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料
龍井43(C. sinensis var. sinensis ‘Longjing43’ ) 和白毫早( C. sinensis var. sinensis‘Baihaozao’)及其327 個F1 雜交子代均種植在中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院茶葉研究所嵊州綜合試驗基地(29°44′N,120°49′E),正常水肥管理。
1.2 TBF 表型觀測
茶樹TBF 表型觀測參考文獻[10],使用發(fā)芽指數(shù)(Sprouting indexs,SPI)來代表茶樹春季發(fā)芽狀態(tài)。通過春季在田間觀測,待群體大多數(shù)子代已經(jīng)萌發(fā)時(2022 年3 月16 日和2023 年3 月24 日)觀測親本及其F1 群體子代發(fā)芽指數(shù),每根粗壯枝上選擇5 個腋芽進行發(fā)芽指數(shù)評分,取平均值代表子代的發(fā)芽狀態(tài)。
而MapQTL 6.0 在2022 年和2023 年的春季SPI數(shù)據(jù)中僅僅定位到1 個穩(wěn)定的QTL(qSPI-5-2,圖2B),該位點同樣位于5 號連鎖群上,且該位點與GACD1.2 在5 號連鎖群上定位到的QTL幾乎重合,該位點在連續(xù)兩年觀測的表型數(shù)據(jù)QTL 定位結(jié)果中相同峰值標記距離極近,但不相同,分別為AX-414610507(2022 年)和AX-416494071 ( 2023 年), LOD 范圍為5.54~14.02,隨后在兩年的表型觀測中以峰值標記閾值LOD-1 所覆蓋到的分子標記的共同置信區(qū)間作為該QTL 位點置信區(qū)間,大小為6.65 cM。qSPI-5-2 的PVE 分別為18.30%和7.60%,由此可知,該位點是調(diào)控茶樹春季SPI性狀效應(yīng)最強的QTL。
2.3 QTL 內(nèi)重要候選基因的分析
在以往的工作中,已經(jīng)建立了該遺傳群體的連鎖群與茶樹基因組染色體對應(yīng)的關(guān)系[12],并且它們之間具有良好的共線性,這為尋找QTL 置信區(qū)間內(nèi)參考基因提供了便利[9,11-12]。利用QTL 兩端的標記序列與舒茶早茶樹參考基因組進行比對,將QTL 區(qū)間比對到茶樹參考基因組上。結(jié)果如圖3A 所示,LG1 對應(yīng)1號染色體,該置信區(qū)間在染色體上的大小為9.24 Mb,包含199 個基因;而LG5 上的qSPI-5-1 和qSPI-5-2 對應(yīng)到4 號染色體上,為了盡可能不遺漏調(diào)控茶樹TBF 的候選基因,qSPI-5-1 和qSPI-5-2 位點包含的全部置信區(qū)間比對到序列長度為20.76 Mb 的茶樹染色體上,該區(qū)間內(nèi)含有505 個基因。
為了進一步明確候選基因的功能,尋找到可能調(diào)控茶樹TBF 的重要候選基因,對兩個QTLs 內(nèi)704 個候選基因進行GO、KEGG、pfam注釋(表3),分別獲得377、235、520 個候選基因。646 個基因具有非冗余蛋白功能注釋(Non-redundant protein sequence database,NR)信息。參考基因富集通路、功能注釋信息以及查閱文獻,找到23 個與茶樹TBF 可能相關(guān)的重要候選基因,包括幾類轉(zhuǎn)錄因子如AP2/ERF(CSS0034219,CSS0001166)、WRKY(CSS0023134,CSS0005560)、MYB(CSS0013678,CSS0011420)、Dof(CSS0039246,CSS0048433);還包括部分植物激素調(diào)控基因,如調(diào)控脫落酸(Abscisic acid,ABA)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的蛋白激酶( Serine/threonine-protein kinase , SRK2E )(CSS0020459,CSS0033957),ABA 受體蛋白Pyrabatin riesistance1-like ( PYL )( CSS0027957 , CSS0015228 )、RABE1a(CSS0000976,CSS0006593),以及生長素調(diào)控基因AUX1(CSS0046696),參與油菜素內(nèi)酯信號的BSK 基因(CSS0028616),GA 信號相關(guān)的Ataxin-3(CSS0046643)。另外發(fā)現(xiàn)4個F-box 蛋白(CSS0029544、CSS0036037、CSS0044623、CSS0018234)。
這23 個重要候選基因在茶樹頂芽、嫩莖、根等8 個不同器官的基因表達量如圖3B 所示,AP2/ERF(CSS0034219,CSS0001166)和MYB(CSS0013678)在茶樹不同器官的表達模式相同,在芽和嫩莖中表達量明顯低于在其他器官中的表達量; 而Expansin-A8-like( CSS0008650 , CSS0010195 ) 、Dof(CSS0039246,CSS0048433)與上述表達模式相反,在頂芽和嫩莖中的基因表達量較高。
3 討論
3.1 茶樹TBF 的QTL 定位分析
為尋找調(diào)控茶樹TBF 的主效QTL,應(yīng)用于分子標記輔助育種,加快茶樹育種效率[18],已有學(xué)者針對茶樹TBF 進行了相關(guān)研究,如Tan 等[9]使用SSR 分子標記對龍井43×白毫早構(gòu)建遺傳連鎖圖譜,并對TBF 進行QTL 定位,在5 號連鎖群上獲得QTL 位點,與本研究結(jié)果一致。此外,Wang 等[19]對151 份茶樹種質(zhì)資源使用全基因組關(guān)聯(lián)分析(Genome-wideassociation study, GWAS)確定了1 個與TBF顯著相關(guān)的SNP 位點(Sc0002405-269473),該位點位于茶樹第13 號染色體上,并開發(fā)了與TBF 相關(guān)的dCAPs 標記。Tan 等[10]以峨眉問春×川沐217 為親本構(gòu)建F1 雜交群體,并對TBF 進行QTL 定位,找到2 個穩(wěn)定的QTLs,其中1 個穩(wěn)定且主效的QTL(qSPI-4)與本研究的qSPI-5 位點相重合,推測在該置信區(qū)間內(nèi)存在調(diào)控茶樹TBF 性狀的重要候選基因。
本研究在本課題組前期開發(fā)的茶樹高密度遺傳圖譜基礎(chǔ)上, 使用GACD 1.2 與MapQTL 6.0 軟件進行茶樹TBF 的QTL 定位研究,發(fā)現(xiàn)兩者都能穩(wěn)定定位到調(diào)控TBF 最主效的QTL 位點(qSPI-5),同時發(fā)現(xiàn)GACD1.2 軟件較MapQTL 6.0 軟件能夠定位到多1個但效應(yīng)較小的QTL(qSPI-1),前人的研究結(jié)果也同樣證明了該結(jié)論[20-21]。但是,在主效QTL 位點上(qSPI-5),兩個軟件定位的置信區(qū)間卻不完全相同,qSPI-5-2(GACD 1.2)的置信區(qū)間在連鎖群末端偏上位置(131.74~143.48 cM),而qSPI-5-1(MapQTL6.0)更靠近連鎖群的末端(140.38~147.03 cM)。
在MapQTL 6.0 軟件定位的QTL(qSPI-5-1)內(nèi),多個位置出現(xiàn)LOD>3 但是不連續(xù)的峰型,推測在該主效QTL 位點上可能存在多個調(diào)控TBF 的基因。
3.2 茶樹TBF 的候選基因分析
隨著茶樹高質(zhì)量參考基因組的發(fā)布[17,22-23],加速了茶樹遺傳育種的研究,也使通過QTL定位尋找候選基因成為可能。本研究將TBF相關(guān)QTL 兩端的序列與茶樹參考基因組進行比對,并在置信區(qū)間內(nèi)尋找候選基因。本研究發(fā)現(xiàn)的2 個穩(wěn)定QTL(qSPI-1,qSPI-5)的置信區(qū)間大小分別為9.24 Mb 和20.76 Mb。通過分析基因注釋和查閱參考文獻,在置信區(qū)間內(nèi)找到23 個重要的候選基因,期望對將來的基因功能驗證提供線索。
在這些候選基因中,發(fā)現(xiàn)幾類重要的轉(zhuǎn)錄因子,如AP2/ERF、WRKY 和MYB。AP2/ERF 基因家族在茶樹春季發(fā)芽中發(fā)揮著重要作用[7],AP2/ERF ( CSS0001166 ) 與擬南芥中的AtDREB-2C 為同源基因,該基因過表達會使擬南芥種子萌發(fā)延遲和ABA 含量增加[24]。
WRKY(CSS0023134,CSS0005560)和MYB(CSS0013678,CSS0011420)是調(diào)節(jié)ABA 信號的重要轉(zhuǎn)錄因子,可能調(diào)控植物的休眠和萌發(fā)[25]。此外,還發(fā)現(xiàn)了許多與植物激素相關(guān)的基因, 如2 個SRK2E ( CSS002045 ,CSS0033957)基因,它們調(diào)控ABA 信號轉(zhuǎn)導(dǎo)從而影響植物的休眠和萌發(fā)。研究發(fā)現(xiàn),在擬南芥SRK2E 缺失突變體中,擬南芥的種子無法休眠,且ABA 含量出現(xiàn)顯著升高[26]。在水稻中過表達SRK2E 同源基因(SAPK10)會使種子萌發(fā)延遲[27]。此外,還發(fā)現(xiàn)2 個RABE1a(CSS0000976,CSS0006593)基因,在擬南芥中RABE1a 能夠與質(zhì)膜上的ABA 受體結(jié)合,從而正向調(diào)節(jié)ABA 信號傳導(dǎo),且能抑制ABA受體PYL(CSS0027597,CSS0015228)的積累[28]。同時發(fā)現(xiàn)了參與調(diào)控油菜素內(nèi)酯(BR)的BR-signaling kinase(BSK,CSS0028616),以及生長素調(diào)控基因AUX1(CSS0046696)。在該區(qū)間還存在多個F-box 蛋白,有研究報道[29]它們可以調(diào)控乙烯、赤霉素(GA)、IAA 等植物激素,從而影響植物的休眠與萌發(fā)。另外,在這些候選基因中發(fā)現(xiàn)2 個膨脹素基因Expansin-A8-like(CSS0008650,CSS0010195),二者在茶樹不同器官的基因表達模式相同,但是在頂芽和嫩莖中表達量明顯高于在其他器官中的表達量。有研究報道Expansin-A8-like僅在萌發(fā)的種子中表達,而且在種子萌發(fā)后嫩莖的初期生長階段該基因也參與其中[30-31];同時,它們的同源基因AtEXP2 在擬南芥中過表達能使種子提前萌發(fā)[32]。上述基因在其他植物中的相關(guān)功能已經(jīng)有所報道,所以推測它們在茶樹的休眠和萌發(fā)中也發(fā)揮一定的作用。
3.3 基于遺傳圖譜精細化定位的分析與展望
基于遺傳連鎖圖譜進行QTL 定位是研究數(shù)量性狀經(jīng)典的遺傳學(xué)方法[33]。影響遺傳圖譜質(zhì)量的重要因素是群體單株數(shù)量以及分子標記數(shù)量[34]。由于茶樹自交不育的特性,以及幼年期往往超過3 年,采用人工雜交方式繁育單株費時費力,所以培育合適數(shù)量的茶樹群體較為困難,導(dǎo)致茶樹正向遺傳學(xué)的研究進展緩慢。在茶樹上,遺傳圖譜作圖群體數(shù)量≥200,平均分子標記<0.5 cM 的茶樹遺傳圖譜至今僅有2 張[10,12]。本研究使用的遺傳圖譜(n=327)和平均分子標記間距排名都居于前列,但是定位的TBF 的置信區(qū)間仍較大,難以精細定位到候選基因,僅僅依靠增加群體數(shù)量來進一步精細定位置信區(qū)間難以實現(xiàn)。將來可以在置信區(qū)間內(nèi)開發(fā)更多數(shù)量的分子標記,從而進一步縮小候選區(qū)間來鎖定重要基因;或通過QTL 定位與RNA-seq 相結(jié)合的方式提供更多的信息從而確定候選基因;以及利用分離群體分組分析法(Bulked segregation analysis)[35]篩選差異基因片段。這些都是基于遺傳群體用來快速精細定位候選基因的有效方法。
參考文獻
[1] Hartley L, Flowers N, Holmes J, et al. Green and black tea for the primary prevention of cardiovascular disease [J].Cochrane Database of Systematic Reviews, 2013, 2013(6):Cd009934. doi: 10.1002/14651858.CD009934.pub2.
[2] Boyle N B, Billington J, Lawton C, et al. A combination ofgreen tea, rhodiola, magnesium and B vitamins modulatesbrain activity and protects against the effects of inducedsocial stress in healthy volunteers [J]. NutritionalNeuroscience, 2022, 25(9): 1845-1859.
[3] Keller A, Wallace T C. Tea intake and cardiovasculardisease: an umbrella review [J]. Annals of Medicine, 2021,53(1): 929-944.
[4] Wang X C, Hao X Y, Ma C L, et al. Identification ofdifferential gene expression profiles between winterdormant and sprouting axillary buds in tea plant (Camelliasinensis) by suppression subtractive hybridization [J]. TreeGenetics amp; Genomes, 2014, 10(5): 1149-1159.
[5] Hao X Y, Yang Y J, Yue C, et al. Comprehensivetranscriptome analyses reveal differential gene expressionprofiles of Camellia sinensis axillary buds at para-, endo-,ecodormancy, and bud flush stages [J]. Frontiers in PlantScience, 2017, 8: 553. doi: 10.3389/fpls.2017.00553.
[6] Tan L Q, Wang L B, Zhou B, et al. Comparativetranscriptional analysis reveled genes related to shortwinter-dormancy regulation in Camellia sinensis [J]. PlantGrowth Regulation, 2020, 92: 401-415.
[7] Liu Y J, Chen S, Chen J D, et al. Comprehensive analysisand expression profiles of the AP2/ERF gene family duringspring bud break in tea plant (Camellia sinensis) [J]. BMCPlant Biology, 2023, 23(1): 206. doi: 10.1186/s12870-023-04221-y.
[8] 劉賢德, 張國范. 運用擬測交策略構(gòu)建遺傳圖譜的理論依據(jù)及研究進展[J]. 海洋科學(xué), 2008, 32(10): 81-85.
Liu X D, Zhang G F. The theory base of constructing geneticmap using “pseudo-testcross” mapping strategy and itsdevelopment [J]. Marine Sciences, 2008, 32(10): 81-85.
[9] Tan L Q, Wang L Y, Xu L Y, et al. SSR-based geneticmapping and QTL analysis for timing of spring bud flush,young shoot color, and mature leaf size in tea plant(Camellia sinensis) [J]. Tree Genetics amp; Genomes, 2016,12(3): 52. doi: 10.1007/s11295-016-1008-9.
[10] Tan L Q, Cui D, Wang L B, et al. Genetic analysis of theearly bud flush trait of tea plants (Camellia sinensis) in thecultivar ‘Emei Wenchun’ and its open-pollinated offspring[J]. Horticulture Research, 2022, 21(9): uhac086. doi:10.1093/hr/uhac086.
[11] Xu L Y, Wang L Y, Wei K, et al. High-density SNP linkagemap construction and QTL mapping for flavonoid-relatedtraits in a tea plant (Camellia sinensis) using 2b-RADsequencing [J]. BMC Genomics, 2018, 19(1): 955. doi:10.1186/s12864-018-5291-8.
[12] Wei K, Wang X C, Hao X Y, et al. Development of agenome-wide 200K SNP array and its application forhigh-density genetic mapping and origin analysis ofCamellia sinensis [J]. Plant Biotechnology Journal, 2022,20(3): 414-416.
[13] Ooijen J W. MapQTL?6. Software for the mapping ofquantitative trait loci in experimental populations [M].Wagenigen: Kyazma BV, 2009.
[14] Zhang L Y, Meng L, Wu W C, et al. GACD: integratedsoftware for genetic analysis in clonal F1 and double crosspopulations [J]. Journal of Heredity, 2015, 106(6): 741-744.
[15] Voorrips R E. MapChart: software for the graphicalpresentation of linkage maps and QTLs [J]. JournalHeredity, 2002, 93(1): 77-78.
[16] Chen J D, He W Z, Chen S, et al. TeaGVD: a comprehensivedatabase of genomic variations for uncovering the geneticarchitecture of metabolic traits in tea plants [J]. Frontiers inPlant Science, 2022, 13: 1056891. doi: 10.3389/fpls.2022.1056891.
[17] Xia E H, Tong W, Hou Y, et al. The reference genome of teaplant and resequencing of 81 diverse accessions provideinsights into its genome evolution and adaptation [J].Molecular Plant, 2020, 13(7): 1013-1026.
[18] 王新超, 王璐, 郝心愿, 等. 茶樹遺傳育種研究“十三五”進展及“十四五”發(fā)展方向[J]. 中國茶葉, 2021, 43(9):50-57.
Wang X C, Wang L, Hao X Y, et al. Tea genetics andbreeding progress during the 13th five-year plan period anddevelopment direction in the 14th five-year plan period [J].China Tea, 2021, 43(9): 50-57.
[19] Wang R J, Gao X F, Yang J, et al. Genome-wide associationstudy to identify favorable SNP allelic variations andcandidate genes that control the timing of spring bud flushof tea (Camellia sinensis) using SLAF-seq [J]. Journal ofAgricultural and Food Chemistry, 2019, 67(37):10380-10391.
[20] You Q, Sood S, Luo Z L, et al. Identifying genomic regionscontrolling ratoon stunting disease resistance in sugarcane (Saccharum spp.) clonal F1 population [J]. The CropJournal, 2021, 9(5): 1070-1078.
[21] 陳艷梅. 紅掌高密度SNP 遺傳連鎖圖譜構(gòu)建及疫病抗性佛焰苞花色性狀QTL 定位[D]. 海口: 海南大學(xué), 2020.
Chen Y M. High SNP density genetic map construction andQTLs mapping for identification for blight resistant andspathe colour in anthurium [D]. Haikou: Hainan University,2020.
[22] Wang X C, Feng H, Chang Y X, et al. Population sequencingenhances understanding of tea plant evolution [J]. NatureCommunications, 2020, 11(1): 4447. doi: 10.1038/s41467-020-18228-8.
[23] Zhang X T, Chen S, Shi L Q, et al. Haplotype-resolvedgenome assembly provides insights into evolutionary historyof the tea plant Camellia sinensis [J]. Nature Genetics, 2021,53(8): 1250-1259.
[24] Je J Y, Chen H, Song C, et al. Arabidopsis DREB2Cmodulates ABA biosynthesis during germination [J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2014, 452(1): 91-98.
[25] Rushton D L, Tripathi P, Rabara R C, et al. WRKYtranscription factors: key components in abscisic acidsignalling [J]. Plant Biotechnology Journal, 2012, 10(1):2-11.
[26] Nakashima K, Fujita Y, Kanamori N, et al. ThreeArabidopsis SnRK2 protein kinases, SRK2D/SnRK2.2,SRK2E/SnRK2.6/OST1 and SRK2I/SnRK2.3, involved inABA signaling are essential for the control of seeddevelopment and dormancy [J]. Plant Cell Physiology, 2009,50(7): 1345-1363.
[27] Wang Y F, Hou Y X, Qiu J H, et al. Abscisic acid promotesjasmonic acid biosynthesis via a 'SAPK10-bZIP72-AOC'pathway to synergistically inhibit seed germination in rice(Oryza sativa) [J]. New Phytologist, 2020, 228(4):1336-1353.
[28] Chen D H, He L L, Lin M Y, et al. A ras-related smallGTP-binding protein, RabE1c, regulates stomatalmovements and drought stress responses by mediating theinteraction with ABA receptors [J]. Plant Science, 2021,306: 110858. doi: 10.1016/j.plantsci.2021.110858.
[29] 吳丹, 唐冬英, 李新梅, 等. F-box 蛋白在植物生長發(fā)育中的功能研究進展[J]. 生命科學(xué)研究, 2015, 19(4): 362-367.
Wu D, Tang D Y, Li X M, et al. Progresses on F-box proteinfunction in plant growth and development [J]. Life ScienceResearch, 2015, 19(4): 362-367.
[30] Chen F, Dahal P, Bradfora K J. Two tomato expansin genesshow divergent expression and localization in embryosduring seed development and germination [J]. PlantPhysiology, 2001, 127(3): 928-936.
[31] Marowa P, Ding A M, Kong Y Z. Expansins: roles in plantgrowth and potential applications in crop improvement [J].Plant Cell Reports, 2016, 35(5): 949-965.
[32] Yan A, Wu M J, Yan L M, et al. AtEXP2 is involved in seedgermination and abiotic stress response in Arabidopsis [J].Plos One, 2014, 9(1): e85208. doi: 10.1371/journal.pone.0085208.
[33] Doerge R W. Mapping and analysis of quantitative trait lociin experimental populations [J]. Nature Reviews Genetics,2002, 3(1): 43-52.
[34] Ferreira A, Silva M C D, Silva L D C E, et al. Estimating theeffects of population size and type on the accuracy ofgenetic maps [J]. Genetics and Molecular Biology, 2006,29(1): 187-192.
[35] Zhong H, Wang Y, Qu F R, et al. A novel TcS alleleconferring the high-theacrine and low-caffeine traits andhaving potential use in tea plant breeding [J]. HorticultureResearch, 2022, 9: uhac191. doi: 10.1093/hr/uhac191.