徐啟英 王卓亞 冶 怡 烏仁塔娜
(青海大學(xué)高原醫(yī)學(xué)研究中心,高原醫(yī)學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海省高原醫(yī)學(xué)應(yīng)用基礎(chǔ)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海-猶他高原醫(yī)學(xué)聯(lián)合重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,西寧 810001)
小鼠是生命科學(xué)研究最常用的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,它們被廣泛應(yīng)用于發(fā)病機(jī)制研究、藥物篩選。長(zhǎng)骨和骨髓細(xì)胞研究是無(wú)數(shù)研究學(xué)科的中心,包括但不限于骨生物學(xué)、癌癥生物學(xué)、免疫學(xué)、血液學(xué)和生物力學(xué),其中,小鼠骨髓細(xì)胞在免疫、造血系統(tǒng)相關(guān)實(shí)驗(yàn)中至關(guān)重要[1-2]。尋求一種高骨髓細(xì)胞回收率的標(biāo)準(zhǔn)化骨髓分離方法對(duì)于流式活細(xì)胞分選、定量PCR及骨髓細(xì)胞的原代細(xì)胞培養(yǎng)是非常重要的。目前,原代小鼠骨髓細(xì)胞提取主要是在取出小鼠股骨、脛骨后,利用1 ml 注射器或26G 針頭吸取相關(guān)培養(yǎng)基再將骨髓細(xì)胞沖洗到15 ml 無(wú)菌離心管中,本研究所用的嵌套EP管法,能更快速地獲取更多的小鼠骨髓細(xì)胞[3-4]。
1.1 材料
1.1.1 實(shí) 驗(yàn) 動(dòng) 物 雄 性SPF 級(jí)C57/BL6 小 鼠,6~8周齡,18~20 g,購(gòu)自北京華阜康生物科技股份有限公司,生產(chǎn)許可證:SCKK(京)2020-0004,質(zhì)量合格證:110322200101810883。飼養(yǎng)于青海大學(xué)高原醫(yī)學(xué)研究中心動(dòng)物房屏障環(huán)境中。飼養(yǎng)環(huán)境恒溫恒濕,光照黑暗交替12 h,適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周后用于實(shí)驗(yàn)。所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)經(jīng)青海大學(xué)附屬醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)審批(SL-2020091)。
1.1.2 主要試劑 細(xì)胞活性檢測(cè)Zombie AquaTMFixable Viability Kit 及紅細(xì)胞裂解液購(gòu)自Biolegend公司,RPMI1640 及胎牛血清購(gòu)自Gibco 公司;CCK-8購(gòu)自ELabscicence公司。
1.2 方法
1.2.1 嵌套EP管法獲取小鼠骨髓細(xì)胞 使用50 ml注射器針頭于500 μl EP管底部戳一圓形小孔,消毒后備用(圖1A)。麻醉后將小鼠仰面固定于一個(gè)消毒托盤上,心包取血/腹主動(dòng)脈放血處死小鼠。游離出小鼠雙下肢,剔盡小鼠雙下肢肌肉。分離雙側(cè)股骨、脛骨,將其浸入含75%乙醇的5 ml離心管中45 s,轉(zhuǎn)入超凈臺(tái)中,將股骨、脛骨移至含無(wú)菌PBS的5 ml離心管中。使用手術(shù)刀刮凈小鼠股骨、脛骨肌肉及結(jié)締組織,于股骨、脛骨一端切斷骨組織,暴露骨髓腔,將裸露骨髓腔部分向下置于準(zhǔn)備好的無(wú)菌帶洞500 μl EP 管中,蓋上管蓋,將其嵌套入含有100 μl培養(yǎng)基的1.5 ml EP 管中(圖1B),使用離心機(jī)高速離心10 s,獲得小鼠骨髓細(xì)胞(圖1C)。
圖1 嵌套EP管法獲取小鼠骨髓細(xì)胞Fig.1 Mouse bone marrow cells were obtained by nested EP tube
1.2.2 注射器沖洗法獲取小鼠骨髓細(xì)胞 同
1.2.1 方法獲得小鼠雙下肢后,剝離肌肉及結(jié)締組織,分離股骨、脛骨,分別剪去兩端軟骨,露出紅色的骨髓腔,取內(nèi)含PBS或培養(yǎng)基的1 ml注射器,將針頭輕輕插入骨髓腔,對(duì)準(zhǔn)一個(gè)無(wú)菌15 ml 離心管,反復(fù)沖洗將細(xì)胞沖出,1 500 r/min 離心5 min,即可獲取骨髓細(xì)胞[3-6]。
1.2.3 紅細(xì)胞裂解 兩種方法獲取骨髓細(xì)胞后,吸凈上清后加入2 ml 紅細(xì)胞裂解液,吹打混勻,室溫2 min,PBS洗2遍,該骨髓細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.4 細(xì)胞活性測(cè)定 按上述方法得到小鼠骨髓細(xì)胞后,PBS洗2遍,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×107個(gè)/ml,取100 μl 細(xì)胞懸液,加入0.5 μl Zombie AquaTMFixable Viability Kit,室溫避光染色20 min,后使用含有5%FBS的PBS洗1遍,重懸于500 μl PBS中,BD AriaⅢ流式檢測(cè)活細(xì)胞比例。
1.2.5 CCK-8 檢測(cè)細(xì)胞增殖 按1.2.3 得到小鼠骨髓細(xì)胞后,調(diào)整細(xì)胞濃度為4×104個(gè)/ml,取100 μl細(xì)胞懸液接種于96 孔板,每組3 個(gè)復(fù)孔,分別于接種細(xì)胞后12 h、24 h、48 h、72 h、96 h 各孔加入10 μl CCK-8溶液,置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中2 h,應(yīng)用酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm波長(zhǎng)處吸光度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用Graphpad 9.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)均采用±s表示,兩組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),P<0.05表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 兩種方法獲取小鼠骨髓細(xì)胞的時(shí)間 取同一只小鼠,隨機(jī)選擇左右下肢分別用兩種方法處理。自小鼠麻醉開始至分離獲得小鼠雙下肢,嵌套EP 管法與注射器沖洗法步驟一致,所用時(shí)間一致。但自雙下肢離體后至最終獲得紅細(xì)胞裂解前的小鼠骨髓細(xì)胞兩種方法時(shí)間不同,嵌套EP管法所需時(shí)間更短(P<0.000 1),見(jiàn)表1。
表1 分離骨組織后至獲得含紅細(xì)胞骨髓細(xì)胞的時(shí)間Tab.1 Time between separation of bone tissue and acquisition of red blood cell-containing bone marrow cells
2.2 兩種方法獲取小鼠骨髓細(xì)胞的數(shù)量 EP管嵌套法暴露斷端后所留骨組織長(zhǎng)于注射器沖洗法,取得骨髓細(xì)胞后骨組織更為清亮(圖2)。獲取骨髓細(xì)胞紅細(xì)胞裂解后進(jìn)行計(jì)數(shù),嵌套EP管法能獲得更多骨髓細(xì)胞(P=0.003),見(jiàn)表2。
表2 獲得的骨髓細(xì)胞數(shù)量(單側(cè)下肢,1×107個(gè)/ml)Tab.2 Number of bone marrow cells(unilateral lower limb,1×107/ml)
圖2 離心前后的骨組織Fig.2 Bone tissue before and after centrifugation
2.3 兩種方法獲取小鼠骨髓細(xì)胞的活細(xì)胞數(shù)量骨髓細(xì)胞進(jìn)行紅細(xì)胞裂解后使用流式方法檢測(cè)活細(xì)胞比例,二者細(xì)胞分群一致,活細(xì)胞比例差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.619 5),見(jiàn)表3。
表3 獲得的骨髓細(xì)胞的活細(xì)胞百分比(±s)Tab.3 Percentage of live cells in bone marrow cells (±s)
表3 獲得的骨髓細(xì)胞的活細(xì)胞百分比(±s)Tab.3 Percentage of live cells in bone marrow cells (±s)
Note:Compared with tube-nesting EP method group,1)P=0.619 5.
Percentage of live cells/(%)97.80±0.57 97.60±0.651)Groups Tube-nesting EP method Traditional syringe irrigation method
2.4 兩種方法獲取小鼠骨髓細(xì)胞的細(xì)胞增殖能力 骨髓細(xì)胞進(jìn)行紅細(xì)胞裂解后培養(yǎng),二者細(xì)胞增殖趨勢(shì)相當(dāng)(圖3)。
為了研究骨骼和骨髓在生理和病理?xiàng)l件下的多種作用,研究人員必須采用一種簡(jiǎn)單有效的標(biāo)準(zhǔn)化方法來(lái)解剖小鼠長(zhǎng)骨,以便進(jìn)行大量的體內(nèi)實(shí)驗(yàn)[1]。其中,小鼠骨髓細(xì)胞的提取是諸多科研實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵步驟。目前,國(guó)內(nèi)外有關(guān)小鼠骨髓細(xì)胞的提取多為離心管沖洗法,PINEDA 等[8]利用兩個(gè)不同大小的移液器槍頭,去除尖端,嵌套后再次嵌套于1.5 ml EP 管中,利用離心的方法更快速獲取更多的骨髓細(xì)胞。本研究的嵌套EP管法,在現(xiàn)有實(shí)驗(yàn)方法的基礎(chǔ)上,改良了獲取小鼠骨髓細(xì)胞的關(guān)鍵步驟,明顯縮短了實(shí)驗(yàn)時(shí)間,并能夠獲得更多的有活性的小鼠骨髓細(xì)胞。
注射器沖洗法更依賴操作者的雙手,如使用操作者的雙手來(lái)固定骨組織及注射器,不僅操作時(shí)間更長(zhǎng),而且存在更多針刺傷的隱患,在增加醫(yī)療經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)的同時(shí),更易造成細(xì)胞的污染,而嵌套EP 管法獲取小鼠骨髓細(xì)胞時(shí),在分離小鼠獲得雙下肢后完全使用鑷子等器械,更不易污染細(xì)胞且減少了針刺傷的風(fēng)險(xiǎn),利于后續(xù)實(shí)驗(yàn)進(jìn)行[7]。嵌套EP 管法中所使用的兩種規(guī)格的EP 管均為一般實(shí)驗(yàn)室的常用設(shè)備,前期準(zhǔn)備足夠多的帶洞的EP 管后可長(zhǎng)期使用,簡(jiǎn)單易行。
重要的是,與離心管沖洗法相比,嵌套EP 管法顯著提高了骨髓細(xì)胞獲得率,而不影響細(xì)胞活力,非常適合骨髓細(xì)胞的原代和體外培養(yǎng)的研究,特別是那些需要高細(xì)胞數(shù)量的實(shí)驗(yàn)。HEIB 等[9]研究也使用類似的方法,但所用的離心機(jī)更大,離心時(shí)間為1 min,而本研究使用的桌面離心機(jī)更為便捷且所占空間更小,同時(shí)離心時(shí)間更短,進(jìn)一步縮短了實(shí)驗(yàn)時(shí)間。
目前該嵌套EP管法適用于小鼠,因其體型的特點(diǎn),其下肢骨可以置于500 μl EP 管內(nèi),暫不適用大鼠實(shí)驗(yàn),大鼠的下肢骨較小鼠的長(zhǎng)且更為堅(jiān)實(shí),且骨髓細(xì)胞含量豐富,使用傳統(tǒng)注射器沖洗法亦簡(jiǎn)便可行。
綜上所述,本研究的嵌套EP 管法,使用材料易于獲取,操作簡(jiǎn)單可行,能夠更快速獲得更多的小鼠骨髓細(xì)胞,減少了實(shí)驗(yàn)成本與動(dòng)物消耗,且減少了細(xì)胞污染及針刺傷的風(fēng)險(xiǎn),適合推廣使用。