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    產(chǎn)幾丁質(zhì)酶高原菌的分離鑒定及酶學(xué)性質(zhì)初步研究

    2023-12-09 08:16:16權(quán)淑靜楊文玲王佰濤刁文濤劉德海
    中國(guó)釀造 2023年11期

    權(quán)淑靜,楊文玲,雷 高,王佰濤,刁文濤,梁 博,劉德海*

    (1.河南省科學(xué)院生物研究所有限責(zé)任公司,河南 鄭州 450008;2.河南省微生物工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 鄭州 450008;3.河南省高新技術(shù)實(shí)業(yè)有限公司,河南 鄭州 450008)

    幾丁質(zhì)(聚β-1,4-N-乙酰-D-葡糖胺)是一種β-1,4-N-乙酰氨基葡萄糖的聚合物,也稱(chēng)甲殼素,是自然界中僅次于纖維素存在的第二大多糖[1],其主要來(lái)源于真菌細(xì)胞壁、昆蟲(chóng)外骨骼和甲殼類(lèi)動(dòng)物[2]。據(jù)估計(jì),在自然界幾丁質(zhì)每年產(chǎn)量約為1 010~1 011 t,是地球上最豐富的未被充分開(kāi)發(fā)的生物質(zhì)資源之一[3]。在原生狀態(tài)下,幾丁質(zhì)以有序的晶體微纖維形式存在,不溶于水、稀酸、堿和其他有機(jī)溶劑,在濃酸中不穩(wěn)定,易發(fā)生糖苷鍵的斷裂[4]。采用適當(dāng)?shù)姆椒ń到鈳锥≠|(zhì),可得到不同聚合度的水溶性幾丁寡糖(chitin oligosaccharides,NACOS)或殼寡糖(chitosan oligosaccharide,COS)及其衍生物。作為一種功能性生物聚合物,幾丁質(zhì)降解產(chǎn)物具有抗氧化、抗菌、抗腫瘤、保濕補(bǔ)水及增強(qiáng)機(jī)體免疫功能等多種生物活性,因其生物相容性、細(xì)胞膜滲透性和可生物降解等獨(dú)特特性,受到了廣泛的關(guān)注[5],被應(yīng)用于醫(yī)藥、化妝品、食品和農(nóng)業(yè)等多個(gè)行業(yè)[6-9]。

    目前,制備幾丁寡糖的方法主要有化學(xué)法、物理法和生物法[10],這些方法各有優(yōu)點(diǎn)和局限性。不同水解方法提供了不同分子質(zhì)量和脫乙酰程度的殼聚糖,影響其組成、收率和功能[11]?;瘜W(xué)法以酸水解為主,簡(jiǎn)單、高效,但是殼聚糖顆粒中的剛性結(jié)晶區(qū)域會(huì)抑制酸的滲透。因此,在大多數(shù)研究中使用的是5~12 mol/L的高濃度酸。過(guò)多的酸負(fù)荷會(huì)導(dǎo)致葡萄糖胺降解,從而顯著降低產(chǎn)量,導(dǎo)致產(chǎn)品品質(zhì)不均、副產(chǎn)物多,另外還會(huì)造成嚴(yán)重的設(shè)備腐蝕和環(huán)境污染問(wèn)題[12]。物理法有超聲、微波[13]、伽馬輻射[14]等方式,缺點(diǎn)是能耗高。生物法主要是生物酶法,利用專(zhuān)一性幾丁質(zhì)酶或非專(zhuān)一性酶對(duì)幾丁質(zhì)進(jìn)行水解,其具有聚合程度可控、副產(chǎn)物少、反應(yīng)條件溫和、綠色環(huán)保等優(yōu)點(diǎn)[10]。

    幾丁質(zhì)酶來(lái)源十分廣泛,多種產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的菌株已被報(bào)道,主要包括曲霉屬(Aspergillus)[15]、鏈霉菌屬(Streptomyces)、沙雷菌屬(Serratia)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、弧菌屬(Vibrio)、芽孢桿菌屬(Bacillus)和類(lèi)芽孢桿菌屬(Paenibacillus)[16-17],還包括粘球菌屬(Mucococcus)[18]、發(fā)光桿菌屬(Photobacterium)和希瓦氏菌屬(Shewanella)[19]等,但這些菌株所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶存在酶活力不高、生產(chǎn)周期長(zhǎng)、成本高等問(wèn)題。近年來(lái),國(guó)內(nèi)產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株的研究多集中在海洋微生物資源的發(fā)掘[20-23],對(duì)于內(nèi)陸土壤尤其是高原菌開(kāi)展的研究較少。“世界屋脊”青藏高原地形及環(huán)境特殊,有大量特色微生物資源亟待挖掘。因此,本研究采用透明圈法及酶活力測(cè)定從日喀則地區(qū)采集的土壤樣品中分離、篩選高產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的菌株,并對(duì)所獲得的菌株進(jìn)行鑒定及酶學(xué)性質(zhì)研究,以期發(fā)現(xiàn)所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的特性,為后期利用其幾丁質(zhì)酶基因構(gòu)建工程菌并在生產(chǎn)上應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 樣品

    土壤樣品:采自西藏日喀則地區(qū)(北緯29°14′11″,東經(jīng)88°53′59″,海拔3 685 m)。

    1.1.2 溶液及培養(yǎng)基

    5%的膠體幾丁質(zhì)溶液:稱(chēng)取10 g粉末幾丁質(zhì)加入到200 mL濃鹽酸中,蓋保鮮膜,于磁力攪拌器攪拌過(guò)夜;將酸解后的液體倒入預(yù)冷的2.5 L蒸餾水中,攪拌均勻,4 ℃靜置過(guò)夜;8 000 r/min離心10 min,將上清液倒出,加入預(yù)冷的蒸餾水重懸,再靜置,多次反復(fù),直到懸濁液pH為5.0;最后將離心后的膠體加入200 mL去離子水。

    初篩培養(yǎng)基[22]:膠體幾丁質(zhì)1%,K2HPO40.07%,KH2PO40.03%,MgSO4·7H2O 0.05%,ZnSO40.001%,瓊脂2%,pH自然。121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。

    復(fù)篩培養(yǎng)基(發(fā)酵培養(yǎng)基)[22]:膠體幾丁質(zhì)1%,K2HPO40.07%,KH2PO40.03%,MgSO4·7H2O 0.05%,ZnSO40.001%,pH自然。121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。

    營(yíng)養(yǎng)瓊脂(nutrient agar,NA)培養(yǎng)基:青島海博生物技術(shù)有限公司。

    1.1.3 試劑

    革蘭氏染色試劑盒、幾丁質(zhì)、幾丁質(zhì)酶活檢測(cè)試劑盒(微量法):北京索萊寶科技有限公司;細(xì)菌基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)提取試劑盒:美國(guó)Omega Bio-Tek公司;2×Taq聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)StarMix:北京康潤(rùn)誠(chéng)業(yè)生物科技有限公司;菌株16S rDNA基因PCR擴(kuò)增通用引物27F、1492R、D2000 Plus DNALadder:北京六合華大基因科技有限公司;GF254薄層層析(thin layer chromatography,TLC)板:德國(guó)Merck公司;幾丁寡糖(≥98%):青島和海生物科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    DRP-9052型電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海森信實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;QYC-2012C恒溫?fù)u床:上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;Multifuge X1R離心機(jī):德國(guó)Thermo公司;Thermoblock PCR擴(kuò)增儀:德國(guó)Biometra公司;System蛋白質(zhì)雙向電泳系統(tǒng)、ChemiDoc XRS+化學(xué)發(fā)光成像分析系統(tǒng):美國(guó)Bio-Rad公司;Axio Image M2全電動(dòng)正置熒光顯微鏡:德國(guó)Zeiss公司。

    1.3 方法

    1.3.1 產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株的篩選

    初篩:采用梯度稀釋法分離菌株。稱(chēng)取10 g土樣加入90 mL放有玻璃珠的蒸餾水中,打散后涂布于初篩培養(yǎng)基平板,28 ℃培養(yǎng)至透明圈產(chǎn)生,挑選透明圈直徑(D)與菌落直徑(d)比值大的菌株作為初篩菌株。

    復(fù)篩:將初篩獲得的菌株接種于復(fù)篩培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min搖床培養(yǎng)36~48 h,8 000 r/min離心10 min后取上清獲得粗酶液,37 ℃測(cè)定粗酶液中幾丁質(zhì)酶活性,比較酶活力大小,選取酶活最高的菌株。

    1.3.2 幾丁質(zhì)酶活力的測(cè)定

    參照幾丁質(zhì)酶活檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)測(cè)定幾丁質(zhì)酶活性。幾丁質(zhì)酶活力定義為:在一定的反應(yīng)條件下,每毫升液體每小時(shí)分解幾丁質(zhì)產(chǎn)生1 μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量為1個(gè)酶活性單位(U/mL)。

    1.3.3 高產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株的鑒定

    形態(tài)學(xué)觀察:將分離純化的單菌落接種到NA培養(yǎng)基平板上,28 ℃倒置培養(yǎng)24~48 h,觀察菌落特征;對(duì)細(xì)菌進(jìn)行染色,通過(guò)光學(xué)顯微鏡觀察形態(tài)。

    生理生化鑒定:參照《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[24]對(duì)菌株進(jìn)行生理生化鑒定。

    分子生物學(xué)鑒定:使用Omega細(xì)菌基因組提取試劑盒獲得篩選菌株的基因組DNA,以其為模板,采取通用引物27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')、1492R(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')PCR擴(kuò)增16S rDNA基因序列片段。PCR擴(kuò)增體系:2×TaqPCR StarMix 12.5 μL,模板DNA 1 μL,上、下游引物各1 μL,超純水9.5 μL。PCR擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸60 s,30個(gè)循環(huán);72 ℃再延伸10 min。將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后送北京六合華大基因科技有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果在ezbiocloud網(wǎng)站中進(jìn)行比對(duì)分析,利用MEGA6.0軟件中的鄰接(neighbor-joining,NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。

    1.3.4 粗酶液酶學(xué)性質(zhì)初步研究

    最適溫度以及溫度穩(wěn)定性:在不同溫度(30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃)下測(cè)定粗酶液的酶活力,確定最適反應(yīng)溫度。將粗酶液在不同溫度(30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃)下保溫2 h后測(cè)定剩余酶活。以最大酶活力值計(jì)為100%,計(jì)算出其余處理的相對(duì)酶活。

    最適pH以及pH穩(wěn)定性:在不同pH值(4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0)條件,最適反應(yīng)溫度下測(cè)定酶活力,確定最適反應(yīng)pH。將粗酶液在不同pH(4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0)緩沖液體系中4 ℃放置2 h,最適反應(yīng)溫度條件下測(cè)定剩余酶活。以最大酶活力值計(jì)為100%,計(jì)算出其余處理的相對(duì)酶活。

    不同金屬離子及化合物對(duì)酶活力的影響:在不同處理中加入Mg2+、Ba2、Zn2+、Mn2+、Fe2+、K+、Ca2+、Cr2+、Ag+、Co2+、Na+、Tween-80、乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)、苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride,PMSF),使其在反應(yīng)體系中終濃度為2 mmol/mL,在最適反應(yīng)溫度、pH條件下測(cè)定酶活力。以未加金屬離子及化合物的酶活力為100%,計(jì)算出其余處理的相對(duì)酶活。

    1.3.5 粗酶液對(duì)幾丁質(zhì)的降解產(chǎn)物分析

    將粗酶液與底物膠體幾丁質(zhì)以1∶1比例混合,分別在30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃條件下反應(yīng)12 h,沸水浴5 min終止反應(yīng),離心,取上清液進(jìn)行薄層層析[25],上樣量5 μL,以幾丁單糖和幾丁寡糖(N-乙酰氨基葡萄糖、幾丁二糖、幾丁三糖、幾丁四糖)含量分別為10 mg/mL的混合溶液為標(biāo)樣,陰性對(duì)照為緩沖液代替底物反應(yīng)的上清液。展層劑為正丁醇-乙酸-水(2∶1∶1,V/V),展層結(jié)束后吹干,均勻噴灑顯色劑(二苯胺1 g、苯胺1 mL、丙酮50 mL、磷酸5 mL),85 ℃條件下顯色10 min。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 高產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株的篩選

    采用透明圈法從日喀則地區(qū)土壤中分離篩選到16株產(chǎn)透明圈的菌株,進(jìn)一步經(jīng)酶活測(cè)定復(fù)篩,最終獲得5株產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株,其幾丁質(zhì)酶活力見(jiàn)圖1。由圖1可知,5株菌株的幾丁質(zhì)酶活力為49.77~242.36 U/mL,其中菌株RGZ2-4-5的幾丁質(zhì)酶活力最高,為242.36 U/mL。因此,選擇菌株RGZ2-4-5為高產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的菌株。

    圖1 產(chǎn)幾丁質(zhì)酶菌株篩選結(jié)果Fig.1 Screening results of chitinase-producing strains

    2.2 菌株RGZ2-4-5的鑒定

    2.2.1 形態(tài)學(xué)觀察

    菌株RGZ2-4-5的菌落及細(xì)胞形態(tài)見(jiàn)圖2。由圖2可知,菌株RGZ2-4-5的菌落呈乳白色,半透明狀,為邊緣規(guī)則的圓形,表面光滑、濕潤(rùn),革蘭氏染色為陰性,細(xì)胞呈棒狀。

    圖2 菌株RGZ2-4-5的菌落(a)及細(xì)胞(b)形態(tài)特征Fig.2 Colony (a) and cell (b) morphological characteristics of strain RGZ2-4-5

    2.2.2 生理生化試驗(yàn)

    菌株RGZ2-4-5的生理生化鑒定結(jié)果見(jiàn)表1。由表1可知,菌株RGZ2-4-5的氧化酶、接觸酶試驗(yàn)結(jié)果呈陽(yáng)性,能使明膠液化、Tween-80水解。結(jié)合形態(tài)觀察,參照《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》初步鑒定菌株RGZ2-4-5為馬賽菌屬(Massiliasp.)。

    表1 菌株RGZ2-4-5的生理生化試驗(yàn)結(jié)果Table 1 Physiological and biochemical test results of strain RGZ2-4-5

    2.2.3 分子生物學(xué)鑒定

    基于16S rDNA基因序列構(gòu)建菌株RGZ2-4-5的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),結(jié)果見(jiàn)圖3。

    圖3 基于16S rDNA基因序列菌株RGZ2-4-5的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.3 Phylogenetic tree of strain RGZ2-4-5 based on 16S rDNA gene sequences

    由圖3可知,菌株RGZ2-4-5的16S rDNA基因序列與Massilia aquaticaFT 127WT聚于同一分支,親緣關(guān)系最近?;谛螒B(tài)學(xué)觀察、生理生化試驗(yàn)和分子生物學(xué)技術(shù),最終鑒定菌株RGZ2-4-5為Massilia aquatica。

    2.3 菌株RGZ2-4-5產(chǎn)幾丁質(zhì)酶酶學(xué)性質(zhì)初步研究

    2.3.1 溫度對(duì)幾丁質(zhì)酶活力的影響及溫度穩(wěn)定性

    由圖4可知,在30~60 ℃之間,幾丁質(zhì)酶活力隨反應(yīng)溫度的升高呈先升高后下降的趨勢(shì),當(dāng)反應(yīng)溫度為50 ℃時(shí),酶活力最高,為223.06 U/mL。因此,確定最適反應(yīng)溫度為50 ℃。由圖4亦可知,溫度越低,幾丁質(zhì)酶越穩(wěn)定,40 ℃以下保溫處理2 h,酶活力能保持在60%以上,高于40 ℃后迅速失活,50 ℃保溫2 h后相對(duì)酶活力僅為24.21%。結(jié)果表明,菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)的幾丁質(zhì)酶不耐高溫,屬于中低溫幾丁質(zhì)酶。

    圖4 溫度對(duì)菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶活力和穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effect of temperature on the activity and stability of chitinase produced by strain RGZ2-4-5

    2.3.2 pH對(duì)幾丁質(zhì)酶活力的影響及pH穩(wěn)定性

    由圖5可知,菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)的幾丁質(zhì)酶粗酶液在pH為4.0~10.0范圍內(nèi)酶活力較高,且隨著pH的升高,酶活力呈先升高后下降的趨勢(shì),當(dāng)pH為5.0時(shí),酶活達(dá)到最高,為259.69 U/mL,說(shuō)明該酶的最適反應(yīng)pH為5.0。由圖5亦可知,粗酶液在pH5.0~7.0條件下處理后仍保持70%以上酶活;pH>7.0以后酶活下降迅速,pH為8.0時(shí)相對(duì)酶活為36.41%,pH為10.0時(shí)相對(duì)酶活僅為5.15%。結(jié)果表明,該酶pH適應(yīng)范圍廣,在酸性條件下比較穩(wěn)定。

    圖5 pH對(duì)菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶活力及穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of pH on the activity and stability of chitinase produced by strain RGZ2-4-5

    2.3.3 金屬離子及化合物對(duì)幾丁質(zhì)酶活力的影響

    由圖6可知,與CK相比,Zn2+、Mn2+、Fe2+、Cr2+、Ag+、Co2+及PMSF處理的相對(duì)酶活顯著降低(P<0.05),說(shuō)明這幾種金屬離子對(duì)該酶有顯著的抑制作用,其中,Zn2+、Mn2+、Fe2+、Ag+處理的相對(duì)酶活<80%,而其他金屬離子對(duì)酶活無(wú)顯著的促進(jìn)或抑制作用(P>0.05)。

    圖6 金屬離子及化合物對(duì)菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶活力的影響Fig.6 Effect of metal ions on the activity and stability of chitinase produced by strain RGZ2-4-5

    本研究菌株RGZ2-4-5產(chǎn)生的幾丁質(zhì)酶最適反應(yīng)溫度為50 ℃,低于RAY L等[3,15]報(bào)道的耐熱幾丁質(zhì)酶,高于國(guó)內(nèi)報(bào)道的海洋菌產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的結(jié)果[21-22]。幾丁質(zhì)酶的最適反應(yīng)pH多為7.0左右[3,10,22],菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的最適pH為5.0,在pH5.0~7.0的范圍內(nèi)穩(wěn)定性均在70%以上,寬泛的反應(yīng)溫度范圍和酸堿適應(yīng)范圍使其有利于在工業(yè)發(fā)酵中應(yīng)用。

    2.4 菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶對(duì)幾丁質(zhì)降解產(chǎn)物分析

    采用TLC分析菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶對(duì)幾丁質(zhì)的降解產(chǎn)物,結(jié)果見(jiàn)圖7。

    圖7 菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶對(duì)幾丁質(zhì)的降解產(chǎn)物的分析結(jié)果Fig.7 Analysis results of chitin degradation products by chitinase produced by strain RGZ2-4-5

    由圖7可知,該菌株所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶可水解幾丁質(zhì),主要產(chǎn)物為幾丁二糖[(GlcNAc)2],還有少量的幾丁單糖(GlcNAc)和幾丁三糖。不同溫度處理的產(chǎn)物量有所不同,在30~50 ℃范圍內(nèi),隨著溫度的增加,幾丁三糖含量從少量到幾乎不產(chǎn),然而幾丁單糖和幾丁二糖含量有所增加,在50 ℃時(shí)達(dá)到最高。分析原因可能是在最適反應(yīng)溫度下,底物充分水解,因此單糖和二糖產(chǎn)量高,60 ℃酶活力迅速減弱,反應(yīng)最終產(chǎn)物只有少量的幾丁二糖。

    內(nèi)切幾丁質(zhì)酶(EC 3.2.1.14)從幾丁質(zhì)多糖鏈的內(nèi)部隨機(jī)水解幾丁質(zhì),生成幾丁寡糖((GlcNAc)n,n>2),幾丁質(zhì)先是被降解成分子質(zhì)量不一的寡糖,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),最終被水解成(G1cNAc)2及少量的GlcNAc[12,26]。根據(jù)水解產(chǎn)物判斷菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶為內(nèi)切幾丁質(zhì)酶。在最適反應(yīng)溫度下,酶能更充分的分解底物,最終產(chǎn)物為(GlcNAc)2和少量的GlcNAc。

    3 結(jié)論

    本研究采用透明圈法和酶活力測(cè)定從西藏日喀則土壤樣品中篩選獲得的一株高產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的菌株RGZ2-4-5,其在以1%膠體幾丁質(zhì)作為唯一碳、氮源條件下發(fā)酵,幾丁質(zhì)酶活力達(dá)到242.36 U/mL。通過(guò)形態(tài)觀察、生理生化特征及16S rDNA序列分析鑒定該菌株為Massilia aquatica。菌株RGZ2-4-5所產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的最適反應(yīng)溫度為50 ℃,最適反應(yīng)pH為5.0,在溫度30~40 ℃,pH 5.0~7.0的條件下粗酶液具有較好的穩(wěn)定性,金屬離子Zn2+、Mn2+、Fe2+、Cr2+、Ag+、Co2+、PMSF對(duì)幾丁質(zhì)酶活具有顯著的抑制作用(P<0.05)。TLC結(jié)果顯示,該酶水解幾丁質(zhì)的最終產(chǎn)物為(GlcNAc)2和GlcNAc。

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