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    內蒙古地區(qū)辣椒種質資源抗病性鑒定與評價

    2023-11-28 06:53:00于海龍周黛媛張正海曹亞從吳華茂馮錫剛張寶璽王秀芝崔聰聰王立浩
    中國蔬菜 2023年11期

    于海龍 靳 遠 周黛媛 張正海 曹亞從 吳華茂 馮錫剛 張寶璽 王秀芝 崔聰聰* 王立浩*

    (1 中國農業(yè)科學院蔬菜花卉研究所,蔬菜生物育種全國重點實驗室,北京 100081;2 赤峰市農牧科學研究所,內蒙古赤峰 024031)

    中國是世界上辣椒栽培面積最大和產量最高的國家,辣椒已成為中國最大的蔬菜產業(yè)(王立浩 等,2019;鄒學校 等,2022;鄒學校和朱凡,2022)。隨著辣椒種植規(guī)模的逐步擴大,種植區(qū)域逐年固定化,辣椒病害已成為制約辣椒產業(yè)持續(xù)發(fā)展的首要因素,給農民造成了巨大的經濟損失,特別是辣椒病毒病、辣椒細菌性瘡痂病、辣椒炭疽病、辣椒疫病等(王立浩 等,2016)。

    病毒病是辣椒生產中發(fā)生最為普遍、種類最為繁多的病害,我國報道的辣椒病毒種類達30 種以上(劉勇 等,2019)。其中以辣椒輕斑駁病毒(pepper mild mottle virus,PMMoV)和番茄斑點萎蔫病毒(tomato spotted wilt virus,TSWV)為代表的新型病毒病近年來在中國多地均有發(fā)現,檢出比例不斷增高,危害日趨嚴重(高葦 等,2016;Li et al.,2016;李廷芳 等,2017;劉湘寧 等,2017;孫淼 等,2017;王少立 等,2017;湯亞飛 等,2018;嚴丹侃 等,2018;劉勇 等,2019;王昆 等,2019;于海龍 等,2020)。

    PMMoV 屬于煙草花葉病毒屬(Tobamovirus),L系列等位基因是煙草花葉病毒屬的主要抗性基因(Boukema,1980;Genda et al.,2007;Tomita et al.,2011),L3和L4基因是目前辣椒中已發(fā)現的2 個主要的PMMoV 抗性基因,利用AFLP、遺傳連鎖分析及BAC 文庫測序等技術已開發(fā)出與抗病位點L3和L4連鎖的各類型分子標記(Sugita et al.,2004;Kim et al.,2008;Tomita et al.,2008;Yang et al.,2009),并應用于抗病材料篩選和轉育(Yang et al.,2012;李寧 等,2020;張寶璽 等,2020)。

    TSWV 是布尼亞病毒科(Bunyaviridae)番茄斑萎病毒屬(Tospovirus)典型成員(http://www.ictv.global/),目前報道的辣椒TSWV 抗病材料都來自中國辣椒種(Capsicumchinense),如PI152225、PI159234 和PI159236 等(Black et al.,1991;Boiteux,1995)。研究表明TSWV 抗性位點Tsw已成功克隆,該基因為顯性單基因,編碼CC-NB-LRR 蛋白,被TSWV 的Nss RNA 沉默抑制子誘導,出現過敏性反應,導致植物抗性(Kim et al.,2017),其連鎖CAPS 標記SCAC568也被開發(fā)并得到廣泛應用(Moury et al.,2000;Hoang et al.,2013;李寧 等,2020)。

    辣椒炭疽病是由半知菌亞門炭疽菌屬(Colletotrichum)的幾個種引起的全球范圍內的真菌類病害(Than et al.,2008),主要危害辣椒果實,出現凹狀壞死病斑。在中國,辣椒炭疽病在多省發(fā)生且危害嚴重,特別在高濕地區(qū),發(fā)病較重的地塊甚至會造成絕收(王瑩瑩 等,2014;周黛媛 等,2022)。針對炭疽菌不同致病菌株,國內外學者在辣椒不同連鎖群或染色體上都鑒定到多個QTL 位點(Mahasuk et al.,2009;Lee et al.,2010;Sun et al.,2015),但迄今為止尚未克隆到目標基因。

    辣椒細菌性瘡痂病(bacterial spot disease)由黃單胞桿菌屬細菌(Xanthomonascampestrispv.vesicatori,Xcv)引起,是辣椒生產中常見的病害之一。我國20 世紀80 年代開始發(fā)現,孫福在等(1999)報道了該病在東北三省、內蒙古、山西和北京等地區(qū)不斷發(fā)生和蔓延,造成了很大的損失。辣椒細菌性瘡痂病發(fā)生在幼苗、葉片、葉柄、莖、果實和果柄等部位,尤其在葉片上發(fā)生普遍(姚明華 等,2013)。目前已報道的辣椒瘡痂病抗性位點主要有6 個,即Bs1~Bs6,分別對瘡痂病原菌P0~P10 生理小種具有不同抗性(Sahin & Miller,1998;Jones et al.,2002),其中Bs2位點研究較為深入,應用最為廣泛。Tai 等(1999a)利用遺傳連鎖分析將Bs2位點定位在標記S45 和S2 之間,其中S45 與Bs2位點緊密連鎖,遺傳距離為0.6 cM,在此基礎上Tai 等(1999b)利用酵母文庫和圖位克隆法將Bs2基因克隆,并在番茄上進行了異源轉基因驗證?;诳垢胁牧螧s2基因3’-UTR 端差異,Truong 等(2011)開發(fā)了Bs2位點連鎖標記14F/14R,并利用該標記在80 份不同背景的辣椒種質中進行驗證,發(fā)現與瘡痂病抗性表現完全吻合。

    近年來,內蒙古自治區(qū)由于其得天獨厚的氣候環(huán)境,設施蔬菜產業(yè)發(fā)展迅猛。隨著辣椒產業(yè)在內蒙古地區(qū)的不斷發(fā)展,辣椒病害發(fā)生呈逐年上升趨勢(席先梅 等,2012;張曉梅 等,2019),選育和利用抗病品種是防治病害最經濟有效的措施。因此,開展辣椒抗病種質鑒定,培育抗病品種是當前辣椒育種面臨的緊迫任務。本試驗利用分子標記結合人工接種鑒定對內蒙古地區(qū)98 份辣椒種質資源進行PMMoV、TSWV、瘡痂病和炭疽病鑒定,以期發(fā)掘抗性較好的優(yōu)異種質資源,為今后抗病新品種選育和辣椒多抗聚合育種奠定材料基礎。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    供試辣椒材料共98 份,編號CF1~CF98(表1),為赤峰市農牧科學研究所辣椒課題組提供的高代自交系材料,多為前期從地方品種、國內外引進的自交系及F1品種經過多代分離、純化獲得,經田間試驗鑒定,其配合力和農藝表型均較好。

    表1 供試辣椒材料的編號、名稱及類型

    1.2 試驗方法

    1.2.1 抗性基因的分子標記檢測 2021 年春季將辣椒播種于內蒙古赤峰市農牧科學研究所農場,苗期取幼嫩葉片,采用改良CTAB 方法提取DNA,利用1%瓊脂糖凝膠檢測DNA 的質量,Nanodrop ND-100 分光光度計(Thermo Fisher Scientific,Wilmington,DE,USA) 統(tǒng)一調整DNA 濃度為50~100 ng · μL-1,保存于-20 ℃?zhèn)溆?。利用PMMoV 抗病基因L3位點連鎖SCAR 標記IH1-04(Tomita et al.,2008)、CAPS 標記087H3T7(Yang et al.,2009)、TSWV 抗病基因Tsw連鎖CAPS 標記SCAC568(Moury et al.,2000)、瘡痂病抗病基因Bs2位點連鎖SCAR 標記Bs2-L1/R1(Tai et al.,1999a)、Bs2-S45(Tai et al.,1999b)和Bs2-14F/R(Truong et al.,2011)對98 份辣椒資源進行檢測。引物序列見表2。PCR 反應體系總體積為20 μL:2 ×TaqMaster Mix 10 μL(P111-01),購于南京諾唯贊生物科技股份有限公司,上下游引物(10 μmol ·L-1)各1 μL,模板DNA 2 μL,其余用ddH2O 補齊,擴增程序參考PCR Mix 說明書,退火溫度和延伸時間根據引物及片段大小略有調整。PCR 產物利用1.5%瓊脂糖凝膠電泳分離,恒壓180 V、30 min。其中標記087H3T7 和SCAC568 均為CAPS 類型標記,擴增后PCR 產物分別利用SspⅠ和XbaⅠ內切酶進行酶切,酶切體系和時間參考所購內切酶說明書。PCR 產物酶切后利用2%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測,恒壓160 V,50 min。依據PCR 產物片段有無和大小來鑒定植株是否含抗病基因。PI152225 為L3和Tsw位點陽性對照,ECW20R 為Bs2位點陽性對照,茄門為陰性對照。

    表2 用于抗病基因檢測的引物信息

    1.2.2 PMMoV 苗期人工接種鑒定 根據分子鑒定結果,將鑒定含有L3位點陽性材料、4 份不含有L3位點的材料、抗病對照材料PI152225(CK 抗)、感病對照材料茄門(CK 感)進行播種,用于苗期人工接種鑒定,每個處理接種8 株,3 次重復。

    PMMoV 苗期人工接種參考?a?lar 等(2013)的方法。接種前將自主分離的PMMoV 毒原PMMoV-caas(P1,2)在本氏煙上進行繁殖,取1 g 新鮮病葉加10 mL 的0.01 mol · L-1磷酸緩沖液(pH7.0),在冰浴條件下充分研磨,其勻漿作為接種液。辣椒幼苗3~4 片真葉時采用人工摩擦的方法對第1~2 片真葉進行接種。接種前在葉面上噴灑400 目金剛砂,接種后15~30 min 用自來水沖凈葉面多余接種液。以磷酸緩沖液磨擦接種健康辣椒幼苗為無病對照。5~7 d后在第3~4片真葉處復接。

    接種完成后將辣椒幼苗放置于人工氣候室,溫度控制在25~30 ℃,2 d 后觀察有無過敏反應出現,14、21 d 后調查整體植株發(fā)病情況。結合有無過敏反應及植株整體發(fā)病情況確定材料抗感表型,具體標準為:若該材料超過80%的植株接種后出現過敏反應,且接種14 d 后植株整體健康,無花葉、黃化、畸形等PMMoV 典型發(fā)病癥狀,則該材料表型為抗病;若該材料超過80%的植株接種后無過敏反應出現,且接種14 d 后植株整體出現PMMoV典型發(fā)病癥狀,則該材料表型為感?。蝗粼摬牧铣霈FPMMoV 典型發(fā)病癥狀的植株比例低于80%,則認為該材料表型為抗感分離。

    1.2.3 TSWV 苗期人工接種鑒定 根據前期分子鑒定結果,將含有Tsw位點陽性材料、2 份不含有Tsw位點材料及抗病對照材料PI152225(CK 抗)、感病對照材料茄門(CK 感)進行播種,用于苗期人工接種鑒定,每個處理接種8 株,3 次重復。

    TSWV 苗期人工接種參考Hoang 等(2013)的方法。接種前將自主分離的TSWV 毒原TSWVcaas(61)在黃花煙(Nicotianarustica)上進行繁殖,取1 g 新鮮病葉加5 mL 的0.01 mol · L-1磷酸緩沖液(pH 7.0),在冰浴條件下充分研磨,其勻漿作為接種液。辣椒子葉期采用人工摩擦的方法進行接種。接種前在葉面噴灑400 目金剛砂,接種后15~20 min 用自來水沖凈葉面多余接種液。以磷酸緩沖液磨擦接種健康辣椒幼苗為無病對照,5~7 d后(辣椒幼苗兩葉一心至四葉一心時)進行復接。接種完成后將辣椒幼苗放置于人工氣候室,溫度控制在22~26 ℃。3~5 d 后觀察有無過敏反應出現,10 d 后開始統(tǒng)計發(fā)病情況。根據植株是否出現TSWV 發(fā)病癥狀來確定材料抗感表型。

    1.2.4 辣椒炭疽病人工接種鑒定 在98 份辣椒材料中,根據資源類型選取45 份露地類型的辣椒資源進行炭疽病接種鑒定,接種方法為針刺法(Yoon &Park,2001)。接種菌株為Colletotrichumscovillei(編號Coll-153,序列信息已提交GeneBank,登錄號為 KC936995),將前期保存的菌株在固體PDA 培養(yǎng)基上28 ℃避光培養(yǎng)7~10 d,將炭疽菌轉接到液體PDA 培養(yǎng)基中,在28 ℃、200 r · min-1的避光搖床上振蕩3~5 d,使其產生大量的孢子。然后把液體PDA 用4 層無菌紗布過濾,除去菌絲以獲取孢子懸浮液,在顯微鏡下用血球計數板將孢子懸浮液的濃度調整為5×105個 · mL-1,用于接種鑒定。

    在辣椒結果期采摘轉色期果實,先用自來水沖洗以去除果實表面的灰塵等雜物,再用75%的酒精浸泡果實1 min,晾干后用微注射器在果實表面刺出一個深1 mm、直徑0.4 mm 的傷口并注射1 μL的孢子懸浮液。每個材料接種8~10 個果實,每個果實根據果實的大小接種2~3 個點。

    接種后,在透明的塑料整理箱底部平鋪4 層充分濕潤的滅菌濾紙,將接種后的果實接種點朝上置于其中,整理箱放在26 ℃的培養(yǎng)箱中,蓋上整理箱的蓋子,7 d 后調查發(fā)病情況,根據病斑直徑確定抗性水平。抗性評價標準(Ro et al.,2021):抗?。≧),平均病斑直徑 ≤ 2 mm;中抗(MR),2 mm <平均病斑直徑 ≤ 4 mm;感?。⊿),4 mm <平均病斑直徑 ≤ 10 mm;高感(HS),平均病斑直徑 > 10 mm。

    2 結果與分析

    2.1 抗病基因連鎖分子標記檢測結果

    利用與PMMoV 抗病基因位點緊密連鎖的SCAR 標記IH1-04 和CAPS 標記087H3T7 對98 份材料進行檢測,其中標記IH1-04 為顯性標記,可在含有L3位點的材料中擴增出大小約150 bp 的片段,CAPS 標記087H3T7 在含有PMMoV 抗病基因L3和L4的材料中可擴增出440 bp 的條帶且無法被SspⅠ內切酶切開,不含L3和L4的材料也可擴增出440 bp 的條帶,但可以被SspⅠ內切酶切為300 bp 和140 bp 兩條片段。

    檢測結果表明:98 份材料中,標記IH1-04 檢測出6 份材料,即CF26(1109-1)、CF28(11-135)、CF49(18-1607A)、CF53(25-1614A)、CF69(406C)和CF72(484-12C)可擴增出相應的目的條帶(表3,圖1-A);而標記087H3T7 檢測發(fā)現,除上述6份材料為陽性外,CF1(02-41)和CF48(16-50A)2 份材料也為陽性(表3,圖1-B),均可擴增出440 bp 的條帶且無法被SspⅠ內切酶切開,表明這8 份材料在該抗性位點上均為純合基因型。

    圖1 PMMoV 抗病位點連鎖標記IH1-04(A)和087H3T7(B)在部分辣椒種質中的檢測結果

    表3 98 份辣椒種質的分子標記鑒定結果

    TSWV 抗病位點Tsw連鎖標記SCAC568為酶切標記,抗感材料均可擴增出568 bp 的PCR 產物,抗病材料能被XbaⅠ內切酶酶切為494 bp 和74 bp兩條片段,而感病材料不能被酶切開,檢測結果表明:98 份辣椒材料中4 份材料CF6(03-152)、CF43(16029-1)、CF44(16029-2)和CF96(C1304)為陽性,且均為純合基因型(表3、圖2)。

    圖2 TSWV 抗病位點連鎖標記SCAC568 在部分辣椒種質中的檢測結果

    辣椒細菌性瘡痂病抗病位點Bs2連鎖標記Bs2-L1/R1 和Bs2-S45 為SCAR 類型特異標記,在含有Bs2位點的抗性材料中可分別擴增出約為500 bp 和900 bp 的條帶;Bs2-14F/R 為共顯性標記,抗病材料可擴增出約為500 bp 的條帶,感病材料可擴增出600 bp 的條帶。3 對標記檢測結果均表明:98 份辣椒材料中有10 份材料為陽性,分別為CF13(08-16A)、CF39(15-1604A)、CF46(16-40A)、CF59(32-1549C)、CF62(34-1547A)、CF64(34-90 黃 )、CF70(422-6)、CF79(762-6)、CF84(9204-8)和CF95(C112),可能含有Bs2位點(表3、圖3)。

    圖3 瘡痂病抗病位點連鎖標記Bs2 -L1/R1(A)、Bs2 -14F/R(B)和Bs2 -S45(C)在部分辣椒種質中的檢測結果

    2.2 PMMoV 人工接種鑒定結果

    根據前期分子鑒定結果,對2 個標記鑒定出的8 份PMMoV 陽性材料及4 份不含抗病標記目的條帶的材料CF57(306-2A)、CF64(34-90 黃)、CF97(W-01-07)和CF98(保2)接種PMMoV(P1,2)病原,以含有L3基因的抗性資源PI152225為抗病對照,茄門為感病對照。接種3~6 d 后觀察發(fā)現,抗病對照PI152225 和8 份陽性材料均出現明顯的過敏反應(HR),接種葉片上產生枯斑。接種21 d 后,8 份陽性材料和抗病對照植株均較健康,無發(fā)病癥狀(圖4-A、C),4 份不含L3位點的材料和感病對照均在接種10~15 d 后開始出現系統(tǒng)性花葉、畸形、卷葉和黃化等PMMoV 典型癥狀(圖4-B、D)。

    圖4 辣椒苗期接種PMMoV 后發(fā)病情況

    2.3 TSWV 人工接種鑒定結果

    根據前期分子鑒定結果,對 4 份含有Tsw基因的材料CF6(03-152)、CF43(16029-1)、CF44(16029-2)、CF96(C1304),2 份不含Tsw抗性基因的材料CF57(306-2A)和CF64(34-90 黃)及抗病對照PI152225、感病對照茄門接種TSWV病原。

    接種5 d 后觀察發(fā)現,Tsw分子標記檢測陰性的材料和感病對照均出現TSWV 發(fā)病癥狀,如黃化、斑駁、畸形;對照PI152225 和4 份陽性材料均出現明顯的過敏反應(HR),在接種葉上產生枯斑。接種10~15 d 后,4 份陽性材料植株生長發(fā)育均正常,接種葉上部的葉片也出現HR 反應,Tsw分子標記檢測陰性的材料和感病對照植株多數出現矮化,生長發(fā)育停止,葉片出現壞死斑點(圖5)。

    圖5 辣椒苗期接種TSWV 14 d 后發(fā)病情況

    2.4 炭疽病人工接種鑒定結果

    采用離體果實接種法對45 份辣椒種質資源進行抗病性鑒定,結果表明(表4),辣椒果實炭疽病病斑直徑介于7.33~14.94 mm 之間,45 份材料均為感病或高感,未發(fā)現炭疽病抗病種質資源。其中感病材料12 份,占26.67%;其余表型均為高感。抗病對照PBC932 平均病斑直徑為1.95 mm,CF39、CF78、CF18 和CF62 病斑直徑較小,小于8 mm(圖6)。

    圖6 不同辣椒種質接種炭疽病病原菌7 d 后果實發(fā)病情況

    表4 45 份辣椒種質資源接種炭疽菌后病斑直徑

    3 討論

    PMMoV 最早在美國發(fā)現,我國于1994 年首次在新疆地區(qū)發(fā)現(向本春 等,1994),其傳播途徑多樣,帶毒種子、感病植株和土壤均可傳播,防治極為困難。隨著溫室、大棚等設施在我國的普及和規(guī)?;l(fā)展,由于設施內蔬菜種類相對單一,又不易輪作,PMMoV 在我國辣椒主產區(qū)檢出比例持續(xù)上升,部分地區(qū)檢出率超過60%,已逐漸成為危害我國設施辣椒生產的第一大優(yōu)勢病毒(王少立等,2017;劉勇 等,2019;王立浩 等,2021)。

    利用抗病基因培育抗病品種是防治病害最經濟且有效的方法之一。目前,國外育種公司在我國推廣的主栽甜、辣椒新品種基本都含有PMMoV 抗病基因,導致國外品種在我國市場中長期占有主導地位(王立浩 等,2021)。因此,亟須培育具有自主知識產權的抗PMMoV 的國產辣椒品種。

    本試驗利用分子標記篩選結合PMMoV 人工苗期接種鑒定,最終獲得了8 份PMMoV 抗病材料。此外,還篩選出4 份抗TSWV 和10 份攜帶瘡痂病抗病位點Bs2的辣椒種質。通過對材料來源進行追溯發(fā)現,試驗所用材料多為前期育種工作中從國內各地區(qū)搜集到的地方種、農家種和商業(yè)F1品種經過自主分離純化,或是與課題早期親本雜交后分離純化而篩選出的農藝性狀優(yōu)良、配合力高的核心自交系,部分材料則采集自農家生產田或從國內其他育種單位引進,并沒有記載詳細原始材料名稱。

    調查發(fā)現,本試驗篩選出的抗病種質資源全部由商業(yè)F1品種分離純化,或與課題早期親本材料雜交后分離純化獲得。其中4 份TSWV 抗病資源中,CF6(03-152)和CF96(C1304)分別為采集于山東和遼寧地區(qū)的瑞克斯旺公司方燈籠甜椒品種(品種名稱未記載)與課題早期親本雜交后分離獲得;CF43(16029-1)和CF44(16029-2)為先正達甜椒品種紅羅丹與課題早期親本雜交后,經過6 代自交分離,根據田間表現,篩選出的農藝性狀較好的2 個自交系。這也反映出國外育種企業(yè)在辣椒抗病育種方面的相關研究開展較早,因此,國內辣椒育種科研單位和企業(yè)應加快辣椒抗病自交系的轉育和相應辣椒抗病品種的培育。本試驗中辣椒抗病種質的挖掘,為今后新品種的培育奠定了材料基礎,有助于提高國內辣椒品種競爭力。

    抗病基因連鎖分子標記的開發(fā)可以加速抗病資源的鑒定過程,提高抗病基因轉育的效率。前人針對辣椒PMMoV 抗病位點L3和L4開發(fā)了各類型分子標記,如RAPD 標記E18272和E18286,與L3位點遺傳距離4.0 cM(Sugita et al.,2004);SCAR 標記IH1-04 和189D23M,與L3位點遺傳距離小于0.1 cM(Tomita et al.,2008);SCAR 標記L4SC340,與L4位點遺傳距離小于1.8 cM(Kim et al.,2008);CAPS 標記087H03T7,與L4位點遺傳距離1.2 cM(Yang et al.,2009);SNP 標記L4 segF & R,與L4位點遺傳距離0.3 cM(Yang et al.,2012)。Yang 等(2009)研究發(fā)現基于L4位點的連鎖標記087H03T7 也與L3位點緊密連鎖,可用于L3位點的輔助篩選,而基于L3位點開發(fā)的標記189D23M與L4位點也緊密連鎖,遺傳距離僅為0.8 cM,推測L3和L4位點可能是分別位于C.chinense和C.chacoense2 個辣椒種上同一位點的不同等位基因或是2 個緊密連鎖的不同抗病位點。

    前期工作中,中國農業(yè)科學院蔬菜花卉研究所辣椒育種團隊對上述PMMoV 連鎖分子標記的適用性在不同基因型辣椒自交系中進行了驗證,發(fā)現標記IH1-04 和087H3T7 較其他標記更為準確,但標記087H3T7 無法區(qū)分L3和L4基因型,這與Yang等(2009)研究結果一致。目前,我國辣椒生產區(qū)域中PMMoV 致病型多以P1,2株系為主(張強 等,2014),L3和L4位點都對PMMoV 致病型P1,2具備抗性。本試驗利用分子標記IH1-04 和087H3T7 對辣椒種質資源進行篩選,分別鑒定出6 份和8 份陽性材料,其中自交系CF1(02-41)和CF48(16-50A)僅在087H3T7 標記下檢測為陽性,接種鑒定發(fā)現2份材料均為抗病表型,推測CF1(02-41)和CF48(16-50A)可能含有L4抗病位點,而標記IH1-04僅與L3位點連鎖并不適用,該結果有待進一步利用P1,2,3株系通過人工接種鑒定來驗證。

    辣椒炭疽病在世界范圍內均有發(fā)生,且危害日益嚴重,本試驗對來自內蒙古地區(qū)的辣椒種質資源進行鑒定后并未發(fā)現抗病種質,這與前人認為一年生辣椒栽培種(C.annuum)中抗炭疽病種質資源極度匱乏的結論相一致(Yoon et al.,2004;周黛媛 等,2022)。雖然也有少數研究學者在栽培種C.annuum中鑒定發(fā)現多份抗病甚至高抗種質(馬榮群 等,2008;吳慶麗和秦剛,2013;彭澤 等,2022),但由于不同研究中所使用的接種方法、炭疽菌孢子懸浮液濃度、接種后培養(yǎng)條件、抗病等級劃分標準均不相同,因此無法相互比較。此外,本試驗中用于炭疽病抗性鑒定的辣椒種質均為羊角椒或甜椒類型,而張世才等(2022)研究表明,對炭疽病抗性較好的材料多為小果類型辣椒,馬榮群等(2008)研究發(fā)現抗炭疽病或耐炭疽病的辣椒種質農藝性狀多數較差。本試驗未篩選到抗炭疽病的種質,這一結果是否與選擇的辣椒材料類型有關,仍有待進一步研究。目前普遍研究表明,辣椒抗炭疽病種質資源多存在C.baccatum和C.chinense2 個種中(Lee et al.,2010;Ro et al.,2021),如C.baccatum中的PBC81、PBC80 和C.chinense中的PBC932 對炭疽菌具有良好的抗性(Kim et al.,2007;Mahasuk et al.,2009),但它們與常見栽培種C.annuum存在一定的雜交障礙,很難直接應用。因此,迄今為止商業(yè)化抗炭疽病辣椒品種十分稀缺,亟需加大抗炭疽病辣椒種質挖掘工作,特別是一年生辣椒的抗病資源,為抗炭疽病基因克隆、實用分子標記開發(fā)和抗病品種培育奠定材料基礎。

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