賈曉旭,張怡博,袁慶,王碩,朱金墻
(1.鄂爾多斯中醫(yī)醫(yī)院藥劑科,鄂爾多斯 017010;2.天津中醫(yī)藥大學(xué),天津 301617;3.天津中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)藥研究院,組分中藥國家重點實驗室,天津 301617)
缺血性腦血管疾病嚴(yán)重危害著人類的生命健康,及時恢復(fù)血流以實現(xiàn)再灌注是目前最常用的治療策略,但該策略在挽救患者生命的同時又會產(chǎn)生新?lián)p傷,即腦缺血再灌注損傷(CIRI)[1]。CIRI 是一種復(fù)雜的級聯(lián)反應(yīng)性病理生理過程,涉及多種發(fā)病機制。研究表明,CIRI 可損傷神經(jīng)元軸突及突觸結(jié)構(gòu),進一步導(dǎo)致海馬、大腦皮層等部位神經(jīng)元死亡[2-3]。因此,神經(jīng)元突觸重塑在減輕CIRI 以及神經(jīng)組織修復(fù)方面發(fā)揮重要作用。
具有多環(huán)節(jié)、多靶點、多途徑等作用特點的中藥在防治CIRI 方面具有獨特的作用[4]。中藥紅花(Carthamus tinctorius L.)具有通絡(luò)活血、祛瘀止痛的功效,常用于心腦血管疾?。ㄈ绺哐獕翰 ⒐谛牟?、腦血栓)的輔助治療,其主要活性成分為水溶性成分紅花黃色素(SY),其中羥基紅花黃色素A(HSYA)為紅花黃色素中含量較高的成分[5]。藥理研究表明,HSYA 能抗興奮性毒性、抗氧化應(yīng)激、抗凋亡、抗炎、保護血腦屏障和調(diào)節(jié)自噬,還能促進突觸可塑性,從而發(fā)揮抗CIRI 的作用[6-7]。Yu 等[8]研究發(fā)現(xiàn)HSYA 可增強大腦中動脈閉塞(MCAO)大鼠基底興奮性突觸傳遞,并誘導(dǎo)海馬長時程增強(LTP),增加腦源性神經(jīng)生長因子(BDNF)和GluN2B 的表達,增強突觸可塑性,但是對CIRI 后神經(jīng)元突觸重塑的作用機制尚未研究。
本研究體外原代培養(yǎng)皮層神經(jīng)元,建立缺氧/復(fù)氧(H/R)損傷模型模擬CIRI,通過考察HSYA 對H/R 損傷后神經(jīng)元活力及乳酸脫氫酶(LDH)的影響,明確其神經(jīng)保護作用;并考察HSYA 對H/R 損傷的神經(jīng)元中BDNF、生長相關(guān)蛋白43(GAP-43)以及NogoA mRNA 和蛋白表達的影響,初步探討HSYA抗H/R 所致神經(jīng)元損傷的作用機制。
1.1 實驗動物 Wistar 大鼠16 d 孕鼠,清潔級,由天津中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心提供。
1.2 藥物與主要試劑 HSYA(天津一方科技有限責(zé)任公司,中國),DMEM/F12 培養(yǎng)基、B-27(GIBCO 公司,美國),胰酶1∶250(Ameresco 公司,美國),胎牛血清(FBS,HYCLONE 公司,美國),LDH 檢測試劑盒(北京中生生物工程高技術(shù)公司,中國),四甲基偶氮唑鹽(MTT),二甲基亞砜(DMSO)、多聚賴氨酸(SIGMA 公司,美國),青霉素、鏈霉素(市售分析純)、Trizol(上海生工生物技術(shù)有限公司)、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)試劑盒(寶生物工程有限公司);BDNF、GAP-43 及Nogo-A 酶聯(lián)免疫試劑盒(R&D 公司),丙三醇、氯仿、無水乙醇(分析純,天津市化學(xué)試劑廠),BDNF、GAP-43 及Nogo-A mRNA的上、下游引物(上海生工生物技術(shù)有限公司)。
表1 引物序列Tab.1 Primers Sequence
1.3 主要儀器 CO2恒溫培養(yǎng)箱(THERMO,F(xiàn)ORMA3111 型,美國),倒置相差顯微鏡(LEIClADMIL,德國),三氣培養(yǎng)箱(MODEL 3131,THERMO,美國),酶標(biāo)儀(Multiskan Ascent,THERMO LABSYSTEMS,美國),微量多功能讀板機(NanoQuant,infinite M200,瑞士),ABI 7300 型實時熒光定量PCR 系統(tǒng)(Applied Biosystems,美國)。
1.4 方法
1.4.1 神經(jīng)元原代培養(yǎng) 參照本課題組前期實驗方法[9],取懷孕16 d 的Wistar 大鼠,頸椎脫臼處死,用75%醫(yī)用酒精浸泡3~5 min,于無菌條件下取出胚胎大腦皮層,剔除腦膜及大血管。將皮質(zhì)剪碎約1 mm3大小,加入適量0.25%胰蛋白酶,37 ℃消化5 min。立即加入含10%胎牛血清(FBS)的DMEM/F12 培養(yǎng)液終止消化,并將組織完全吹散。經(jīng)75 μm篩網(wǎng)過濾,收集濾液;800 r/min 離心10 min(本研究所用離心機半徑均為13 cm),棄上清,收集沉淀。用含體積分?jǐn)?shù)10%FBS 的DMEM/F12 培養(yǎng)液將細胞重懸。調(diào)整細胞密度至1×106/mL,接種于預(yù)先涂有0.01%多聚賴氨酸的培養(yǎng)板中,置于培養(yǎng)箱培養(yǎng)4 h后,置換為無血清DMEM/F12 培養(yǎng)液(含體積分?jǐn)?shù)2%B-27,100 U/mL 青霉素,100 U/mL 鏈霉素)。以后,每2 d 半量換液1 次,細胞生長至第7 天時可用于實驗。
1.4.2 實驗分組及給藥 取接種于6 孔或者96 孔細胞培養(yǎng)板中的神經(jīng)元,每組設(shè)平行6 孔,隨機分為正常對照組、H/R 組、羥基紅花黃色素A 低(5 μg/mL)、中(20 μg/mL)、高(80 μg/mL)劑量組,具體處理方法如下。正常對照組:置換無血清培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)48 h,不做H/R 處理;H/R 組:置換無血清培養(yǎng)液,將培養(yǎng)板放入體積分?jǐn)?shù)分別為0.94 N2、0.05 CO2、0.01 O2的三氣培養(yǎng)箱中缺氧孵育24 h,再于體積分?jǐn)?shù)分別為0.95 空氣、0.05 CO2條件下復(fù)氧孵育24 h;HSYA 低、中、高劑量組:分別置換為含5、20、80 μg/mL HSYA 的無血清培養(yǎng)液,H/R 處理同H/R 組。
1.4.3 指標(biāo)檢測
1.4.3.1 噻唑藍(MTT)法檢測細胞活力 取接種于96 孔板的神經(jīng)元,收集培養(yǎng)上清液(用于LDH 檢測),將MTT 液按0.5 mg/mL 的濃度加入100 μL/孔,繼續(xù)孵育4 h 后,倒置顯微鏡下可見活細胞處有大量紫藍色針狀結(jié)晶,棄上清,加DMSO 100 μL/孔溶解后,酶標(biāo)儀上讀取OD 值,波長為570 nm。
1.4.3.2 LDH 試劑盒檢測細胞上清液中LDH 活性 取細胞上清液,按照試劑盒說明書方法操作,以全自動生化分析儀測定LDH 活性。
1.4.3.3 RT-PCR 檢測BDNF、GAP-43 及Nogo-A mRNA 表達水平 取接種于6 孔板的神經(jīng)元,棄培養(yǎng)液,用冷磷酸緩沖鹽溶液(PBS)洗2 次,每孔加入1 mL 裂解液TRIzol,反復(fù)吹打,室溫放置5 min,使得核酸蛋白復(fù)合物完全分離。加0.2 mL 氯仿,劇烈振蕩,室溫放置15~30 min 后,于4 ℃12 000 r/min離心15 min,將水相轉(zhuǎn)移到新的無RNase 的離心管中,緩慢加入1 倍體積-20 ℃保存的丙三醇,混勻,置-20 ℃2 h 以上,充分沉淀RNA。4 ℃10 000×g 離心10 min,棄上清。沉淀加入75%乙醇1 mL,重新懸浮,4℃8 000×g 離心10 min,棄上清。在超凈臺內(nèi)室溫揮發(fā)5 min,加入適量無RNnase 水輕輕吹打沉淀,使之溶解,用紫外分光光度法檢測RNA 樣品的濃度及純度。反轉(zhuǎn)錄,應(yīng)用ABI 7300 實時定量PCR儀分析軟件進行分析,獲得每個樣品每次反應(yīng)的CT值,計算得到其△CT,進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計[10]。
1.4.3.4 ELISA 檢測BDNF、GAP-43 及Nogo-A蛋白表達水平 收集各組上清液,1 000 r/min 離心10 min。將50 μL 標(biāo)準(zhǔn)品、50 μL 樣品加入相應(yīng)反應(yīng)孔,立即加入50 μL 的生物素標(biāo)記的抗體,混勻,37 ℃溫育1 h,洗板3 次,每孔加入60 μL 的親和鏈霉素-HRP,37 ℃溫育30 min,洗板3 次,每孔加入底物A、B 各50 μL,混勻30 s,封板,37 ℃避光溫育10 min,每孔加入終止液50 μL,立即于450 nm 波長處檢測,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算濃度。
1.5 統(tǒng)計學(xué)方法 運用SPSS 20.0 軟件包進行數(shù)據(jù)處理,所有數(shù)據(jù)采用均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t 檢驗。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 HSYA 對缺氧/復(fù)氧損傷神經(jīng)元活力的影響 與正常對照組比較,H/R 組神經(jīng)元活力顯著降低(P<0.01);與H/R 組比較,HSYA 低、中、高劑量組神經(jīng)元活力均顯著增強(P<0.01)。見圖1。
圖1 不同濃度HSYA 對缺氧/復(fù)氧損傷神經(jīng)元活力的影響(±s,n=6)Fig.1 Effect of different concentrations of HSYA on neuronal viability after hypoxia/reoxygenation injury(±s,n=6)
2.2 HSYA 對缺氧/復(fù)氧損傷神經(jīng)元LDH 釋放的影響 與正常對照組比較,H/R 組神經(jīng)元LDH 釋放明顯增加(P<0.05)。與H/R 組比較,HSYA 低、中、高劑量組神經(jīng)元LDH 釋放均顯著減少(P<0.01)。見圖2。
圖2 不同濃度HSYA 對缺氧/復(fù)氧損傷神經(jīng)元LDH 釋放的影響(±s,n=6)Fig.2 Effect of different concentrations of HSYA on LDH release in neurons with hypoxia/reoxygenation injury(±s,n=6)
2.3 HSYA 對H/R 損傷神經(jīng)元中BDNF、GAP-43及Nogo-A mRNA 表達的影響 與正常對照組比較,H/R 組BDNF 及GAP-43 mRNA 表達均顯著降低(P<0.05),Nogo-A mRNA 表達顯著增加(P<0.01);與H/R 組比較,HSYA 低、中、高劑量均可顯著促進BDNF mRNA 表達(P<0.05 或P<0.01),且抑制Nogo-A mRNA 表達(P<0.05 或P<0.01);HSYA 中、高劑量可顯著促進GAP-43 mRNA 表達(P<0.05 或P<0.01)。見圖3、4、5。
圖3 HSYA 對H/R 損傷神經(jīng)元的BDNF mRNA 表達的影響(±s,n=6)Fig.3 Effect of HSYA on BDNF mRNA expression in H/R injured neurons(±s,n=6)
圖4 HSYA 對H/R 損傷神經(jīng)元的GAP-43 mRNA 表達的影響(±s,n=6)Fig.4 Effect of HSYA on GAP-43 mRNA expression in H/R injured neurons(±s,n=6)
圖5 HSYA 對H/R 損傷神經(jīng)元的Nogo-A mRNA 表達的影響(±s,n=6)Fig.5 Effect of HSYA on Nogo-A mRNA expression in H/R injured neurons(±s,n=6)
2.4 HYSA 對H/R 損傷CNC 的BDNF、GAP-43 及Nogo-A 蛋白表達水平的影響 與正常對照組比較,H/R 組BDNF、GAP-43 蛋白表達均顯著降低(P<0.05),NogoA 蛋白表達水平顯著提高(P<0.01);與H/R 組比較,HSYA 低、中、高劑量均可顯著降低BDNF 蛋白表達水平(P<0.05),且抑制Nogo-A 蛋白表達(P<0.05 或P<0.01);HSYA 中、高劑量可顯著促進GAP-43 mRNA 表達(P<0.05)。見圖6、7、8。
圖6 HYSA 對H/R 損傷神經(jīng)元BDNF 蛋白表達的影響(±s,n=6)Fig.6 Effect of HYSA on BDNF protein expression in H/R injured neurons(±s,n=6)
圖7 HYSA 對H/R 損傷神經(jīng)元GAP-43 蛋白表達的影響(±s,n=6)Fig.7 Effect of HYSA on the expression of GAP-43 protein in H/R injured neurons(±s,n=6)
圖8 HYSA 對H/R 損傷神經(jīng)元Nogo-A 蛋白表達的影響(±s,n=6)Fig.8 Effect of HYSA on the expression of Nogo-A protein in H/R injured neurons(±s,n=6)
CIRI 最核心的問題是神經(jīng)元損害引起的神經(jīng)功能障礙,因此,保護和恢復(fù)受損神經(jīng)元的功能成為治療CIRI 最重要的任務(wù)[11]。近年來,諸多學(xué)者認(rèn)為其治療靶點不應(yīng)僅僅局限于抵抗損傷的因素,而更應(yīng)該著眼于內(nèi)源性的神經(jīng)保護機制和長期的恢復(fù)過程[12]。
神經(jīng)營養(yǎng)因子可誘導(dǎo)、調(diào)節(jié)和控制神經(jīng)元的生存、生長、遷移以及與其他細胞建立功能性聯(lián)系,并在神經(jīng)再生過程中促進軸突的再生長。神經(jīng)營養(yǎng)因子(NTFs)是一類對神經(jīng)元的發(fā)育、存活和凋亡起重要作用的蛋白質(zhì),主要分為:1)神經(jīng)營養(yǎng)素(NT)家族,包括神經(jīng)生長因子(NGF)、BDNF、神經(jīng)營養(yǎng)因子-3(NT-3)、神經(jīng)營養(yǎng)因子-4/5(NT-4/5)等。2)膠質(zhì)細胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(GDNF)。3)睫狀神經(jīng)營養(yǎng)因子(CNTF)。這些蛋白質(zhì)已經(jīng)成為治療神經(jīng)損傷等疾病的潛在藥物標(biāo)靶。其中BDNF 是體內(nèi)含量最多的神經(jīng)營養(yǎng)因子。BDNF 是從豬腦脊液中發(fā)現(xiàn)的一種具有神經(jīng)營養(yǎng)作用的堿性蛋白質(zhì),BDNF 及其受體在神經(jīng)系統(tǒng)廣泛表達,但主要是在中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)表達,其中海馬和皮質(zhì)的含量最高。它通過與酪氨酸激酶受體B(TrkB)的結(jié)合而發(fā)揮作用,對神經(jīng)元的生存、分化、生長和神經(jīng)元正常生理功能具有維持和促進作用,而且還有增加突觸可塑性及神經(jīng)再生等作用[13]。本研究結(jié)果顯示,HSYA 可有效抑制H/R 引起的LDH 釋放,明顯增加神經(jīng)元細胞活力,表明HSYA 能有效減輕H/R 引起的神經(jīng)元損傷。為了探究其作用機制,本研究進一步考察了HSYA 對神經(jīng)元表達及分泌BDNF 的影響,結(jié)果表明HSYA 可有效促進神經(jīng)元釋放BDNF。
此外,BDNF 還可以促進突觸成熟,增加突觸可塑性[14-15]。因此,本研究進一步考察HSYA 是否可以通過促進BDNF 表達而增加神經(jīng)元突觸可塑性。GAP-43 是存在于神經(jīng)元軸突生長錐中的一種特異性胞膜磷酸蛋白,廣泛分布于大腦、小腦、脊髓、背根節(jié)以及自主神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)元內(nèi)。在發(fā)育中的神經(jīng)元內(nèi),沿整個軸突表達,在生長錐表達尤其豐富;而在成熟神經(jīng)系統(tǒng),主要分布于某些特定區(qū)域的神經(jīng)終末中,在促進神經(jīng)細胞生長、軸突再生和突觸重構(gòu)等方面發(fā)揮重要作用,已成為研究神經(jīng)生長發(fā)育和損傷修復(fù)等神經(jīng)可塑性的首選分子探針[16-17]。Nogo-A 是一種氨基酸的膜蛋白,是有效的軸突生長抑制因子,不僅表達于少突膠質(zhì)細胞,還廣泛表達于神經(jīng)元,是反映神經(jīng)損傷后是否可再生的指標(biāo)之一[18-19]。在生理狀態(tài)下,Nogo-A 對生長較遲的神經(jīng)纖維起到約束的作用,神經(jīng)纖維只能進入特定的區(qū)域?qū)觾?nèi)。在成年哺乳動物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,Nogo-A的主要作用是保持中樞神經(jīng)系統(tǒng)微環(huán)境的穩(wěn)定,防止不必要的出芽,有助于保持神經(jīng)聯(lián)系的特異性,防止形成不必要的、錯誤的投射,通過微管動力學(xué)調(diào)節(jié)參與軸突生長和樹突塑形的進程。Nogo-A 與其他生長抑制因子和神經(jīng)生長促進因子呈平衡狀態(tài),當(dāng)出現(xiàn)外界刺激后,其內(nèi)部平衡被破壞,Nogo-A呈現(xiàn)抑制作用[20-21]。以上兩種蛋白均可一定程度地分泌到細胞外。本研究考察了HSYA 對神經(jīng)元內(nèi)GAP-43 和Nogo-A mRNA 以及細胞上清液中二者蛋白含量的影響,結(jié)果顯示,HSYA 可促進GAP-43 mRNA 及蛋白表達,同時抑制Nogo-A mRNA 及蛋白表達,表明HSYA 能有效增加神經(jīng)元突觸可塑性。
本研究初步表明HSYA 抗H/R 損傷神經(jīng)元的作用機制可能是通過促進BDNF 表達而改善神經(jīng)元生存狀態(tài),并增加神經(jīng)元突觸可塑性。但該作用還有待從神經(jīng)元突觸微觀形態(tài)學(xué)角度來進一步驗證,其作用機制亦有待圍繞BDNF/酪氨酸激酶B(TrkB)、Nogo-A/Nogo-A 受體(NgR)等信號通路進行深入探討。