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    桂枝茯苓丸對慢性阻塞性肺疾病小鼠氣道重塑的影響

    2023-11-23 10:57:56楊億然譚宇軍譚光波胡學(xué)軍鄧秀娟
    中成藥 2023年11期
    關(guān)鍵詞:茯苓重塑桂枝

    張 真,楊億然,劉 雨,譚宇軍,吳 哲,譚光波,胡學(xué)軍,鄧秀娟*

    (1.湖南中醫(yī)藥大學(xué),湖南 長沙 410208; 2.湖南省中醫(yī)藥研究院附屬醫(yī)院,湖南 長沙 410006)

    慢性阻塞性肺疾病 (chronic obstructive pulmonary disease,COPD) 是一種以不可逆的氣流受限為特征的常見肺系疾病,氣道重塑是COPD 發(fā)生發(fā)展過程中重要的病理特征,源自于氣道組織的反復(fù)損傷-修復(fù)過程,是導(dǎo)致患者氣流受限和激素抵抗的主要原因[1-3]。上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化 (epithelialmesenchymal transition,EMT) 是指上皮細(xì)胞失去極性并轉(zhuǎn)化為可移動(dòng)的間充質(zhì)細(xì)胞,其形態(tài)學(xué)改變包括上皮細(xì)胞連接和極性復(fù)合物的破壞,以及細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu)的重組[4]。目前,EMT 已被認(rèn)為是許多呼吸系統(tǒng)疾病的基礎(chǔ),與氣道纖維化、氣道重塑和隨后的氣流阻塞有關(guān)[5]。大量研究表明,核因子活化B 細(xì)胞的κ 輕鏈增強(qiáng)子(nuclear factor kappalight-chain-enhancer of activated B cells,NF-κB) 所介導(dǎo)的蝸牛同源蛋白(Snail) 是EMT、細(xì)胞粘附和增殖的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子,NF-κB/Snail 通路在EMT中具有重要作用[6-8],與COPD 氣道重塑密切相關(guān)。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為,COPD 氣道重塑是在外來六淫之毒的持續(xù)作用下,肺絡(luò)受損,內(nèi)生痰瘀之毒,痹阻肺絡(luò)而成,“毒損肺絡(luò)” 是其關(guān)鍵病機(jī)[9-12]。桂枝茯苓丸出自《金匱要略》,是治療癥瘕積聚的經(jīng)典名方,具有活血化痰、消癥通絡(luò)的功效。因此,本研究以“毒損肺絡(luò)” 為理論基礎(chǔ),探討桂枝茯苓丸對NF-κB/Snail 介導(dǎo)的EMT 的影響,進(jìn)而揭示其改善COPD 氣道重塑的內(nèi)在機(jī)制。

    1 材料

    1.1 動(dòng)物 SPF 級雄性C57BL/6 小鼠40 只,體質(zhì)量18~22 g,由湖南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號SCXK (湘) 2019-0004,動(dòng)物質(zhì)量合格證號43072721100875058],飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用許可證號SYXK (湘) 2019-0009],溫度22 ~24 ℃,相對濕度50% ~60%,晝夜12 h/12 h 交替照明,自由進(jìn)食和飲水。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)湖南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會批準(zhǔn) (倫理號 LLBH-202203140006)。

    1.2 藥物與試劑 金圣牌香煙,由江西中煙工業(yè)有限責(zé)任公司生產(chǎn),焦油含量8 mg,煙氣煙堿含量0.8 mg,CO 含量9 mg。桂枝茯苓丸(國藥準(zhǔn)字Z20027562) 購自成都九芝堂金鼎藥業(yè)有限公司,按每100 丸(15 g) 加450 mL 蒸餾水的比例溶解(即每30 mL 藥液含1 g 藥物),現(xiàn)用現(xiàn)配。NF-κB抑制劑EVP4593 (貨號A4217,美國APExBIO 公司); 4%多聚甲醛固定液(貨號BL539A,北京蘭捷柯科技有限公司); 白細(xì)胞介素-8 (interleukin-8,IL-8) ELISA 試劑盒(貨號MU30010,武漢貝茵萊生物科技有限公司); 白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6) ELISA 試劑盒、腫瘤壞死因子-α (tumor necrosis factor-α,TNF-α) ELISA 試劑盒、兔單抗E-鈣粘蛋白、兔單抗Snail、兔單抗IκBα、小鼠單抗NF-κB、小鼠單抗β-actin (貨號KE10007、KE10002、E-cadherin、20874-1-AP、13099-1-AP、10268-1-AP、66535-1-Ig、66009-1-Ig,武漢三鷹生物技術(shù)有限公司); 兔單抗α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)、兔單抗p-IκBα、兔單抗p-NF-κB [貨號ab124964、ab133462、ab76302,艾博抗(上海) 貿(mào)易有限公司]; 蘇木素伊紅染液、HRP 標(biāo)記羊抗小鼠二抗、HPR 標(biāo)記羊抗兔二抗 ( 貨號 AWI0020b、AWS0001、AWS0002,長沙艾碧維生物科技有限公司)。

    1.3 儀器 自制亞克力透明煙熏箱1.6 m×0.5 m×0.25 m (包含頂部和側(cè)面2 個(gè)直徑8 cm 的進(jìn)出氣孔),由上海易雕實(shí)業(yè)有限公司定制; LH-75 型管道風(fēng)機(jī)(深圳市世化電器照明有限公司); PFTMR 型小動(dòng)物肺功能檢測儀(上海塔望智能科技有限公司); TS-1 型搖床、GL-88B 型旋渦混合器(海門市其林貝爾儀器制造有限公司); H1650R 型臺式冷凍離心機(jī)(湖南湘儀科教儀器有限公司);JB-13 型磁力攪拌器、PHS-3C 型精密PH 計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司); PW-812 型全自動(dòng)酶標(biāo)洗板機(jī)、MB-530 型多功能酶標(biāo)分析儀(深圳市匯松科技發(fā)展有限公司); DYY-60 型電泳儀、DYCZ-24DN 型電泳槽、DYCZ-40D 型轉(zhuǎn)膜儀(北京六一生物科技有限公司); BioPrep-24 型生物樣品均質(zhì)儀(杭州奧盛儀器有限公司); ChemiScope6100 型化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng) (上海勤翔科學(xué)儀器有限公司)。

    2 方法

    2.1 分組與造模 小鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為空白組、模型組、桂枝茯苓丸組、EVP4593 組、桂枝茯苓丸+EVP4593 組,每組8 只,模型組和給藥組采用被動(dòng)吸煙的方式造模,每天熏煙2 次,每次使用20 支香煙,持續(xù)60 min,中途間隔4 h,每熏煙6 d,休息1 d,總計(jì)60 d。

    2.2 給藥 小鼠給藥劑量參考人和動(dòng)物體表面積折算的等效劑量比率表[13],得到桂枝茯苓丸組灌胃劑量為273 mg/kg,EVP4593 組皮下注射劑量為1 mg/kg[14]。各組在第61 天(即造模結(jié)束后第1天) 開始灌胃或(和) 皮下注射給藥,每天1 次,連續(xù)14 d,其中桂枝茯苓丸+EVP4593 組在皮下注射EVP4593 后立即灌胃桂枝茯苓丸藥液,空白組和模型組灌胃給予等量生理鹽水。灌胃過程中,模型組死亡2 只,桂枝茯苓丸組死亡1 只,桂枝茯苓丸+EVP4593 組死亡1 只。

    2.3 肺功能指標(biāo)檢測 小鼠腹腔注射1% 戊巴比妥鈉(40 mg/kg) 麻醉后,分離暴露氣管,進(jìn)行氣管插管固定,使用小動(dòng)物肺功能檢測儀測定每分鐘通氣量(minute ventilation volume,MV)、吸氣峰流量(peak inspiratory flow,PIF) 及呼氣峰流量(peak expiratory flow,PEF)。肺功能測定過程中,空白組失敗2 只,模型組失敗1 只,EVP4593 組失敗2 只,桂枝茯苓丸+EVP4593 組失敗1 只。

    2.4 肺組織病理檢查 取小鼠左肺組織于4% 多聚甲醛中固定24 h,脫水后石蠟包埋切片。HE 染色觀察肺組織病理形態(tài),肺部炎癥的嚴(yán)重程度通過炎癥評分進(jìn)行半定量分析[15],定義為0 分,無炎癥; 1 分,輕度炎癥,偶見炎性細(xì)胞灶; 2 分,中度炎癥,大部分肺泡、支氣管或血管壁有1 ~5 層炎性細(xì)胞; 3 分,重度炎癥,大部分肺泡、支氣管或血管壁有5 層以上炎性細(xì)胞。每張切片取5 個(gè)視野的炎癥評分均值作為最終結(jié)果。按照文獻(xiàn)[16]報(bào)道方法,選取最小內(nèi)徑/最大內(nèi)徑>0.5,且基底膜周徑<2 000 μm 的支氣管作為檢測對象,通過Image J (v1.53) 軟件測定氣道管壁總面積(wall area of bronchial tube,WAt) 和支氣管基底膜周徑(perimeter of basement membrane,Pbm),以Pbm為基值標(biāo)準(zhǔn)化,以WAt 與Pbm 比值代表氣道管壁厚度,每張切片選取5 個(gè)支氣管進(jìn)行測量。

    Masson 染色觀察氣道纖維化改變,其中膠原纖維呈藍(lán)色。通過Image J (v1.53) 軟件測定藍(lán)染面積,以Pbm 為基值標(biāo)準(zhǔn)化,測得藍(lán)染區(qū)平均厚度(μm2/μm),每張切片選取5 個(gè)支氣管進(jìn)行測量。

    2.5 ELISA 法檢測肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α 水平 稱取100 mg 肺組織,剪碎后放入組織研磨器(勻漿管) 中,加入1 mL 1× PBS 溶液,制成勻漿,置于-20 ℃過夜,經(jīng)反復(fù)凍融2 次破壞細(xì)胞膜,2~8 ℃、5 000×g 離心5 min,取上清液備用。嚴(yán)格按ELISA 試劑盒說明書操作,檢測IL-6、IL-8和TNF-α 水平。

    2.6 Western blot 法檢測肺組織EMT 和NF-κB/Snail 通路相關(guān)蛋白表達(dá) 稱取25 mg 肺組織,加入300 μL RIPA 裂解液,在生物樣品均質(zhì)儀中研磨為組織勻漿,冰上裂解10 min,12 000 r/min 離心15 min,提取上清液,BCA 試劑盒檢測蛋白濃度。配制SDS-PAGE 凝膠,經(jīng)電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉,加稀釋后的一抗E-cadherin (1 ∶5 000)、α-SMA (1 ∶1 000)、Snail (1 ∶500)、IκBα (1 ∶1 000)、p-IκBα (1 ∶10 000)、NF-κB (1 ∶1 000)、p-NF-κB(1 ∶1 000)、β-actin (1 ∶5 000),4 ℃孵育過夜,次日室溫放置30 min,1×PBST 洗膜3 次,每次15 min,加稀釋后的二抗(1 ∶5 000) 室溫孵育90 min,1×PBST 洗膜3 次,每次10 min,ECL 化學(xué)發(fā)光顯影,凝膠成像系統(tǒng)成像,通過Image J(v1.53) 軟件測定各條帶光密度值,以β-actin 為內(nèi)參。

    2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 通過SPSS 26.0 軟件進(jìn)行處理,數(shù)據(jù)以(±s) 表示,多組間比較采用單因素方差分析,若不符合正態(tài)分布或(和) 方差不齊時(shí),采用非參數(shù)檢驗(yàn)。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    3 結(jié)果

    3.1 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺功能的影響 與空白組比較,模型組小鼠MV、PIF 和PEF 值降低(P<0.05); 與模型組比較,各給藥組小鼠MV、PIF 和PEF 值升高(P<0.05),其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著(P<0.05),而桂枝茯苓丸組和EVP4593 組間比較無明顯差異(P>0.05),見表1。

    表1 各組小鼠肺功能比較(±s)Tab.1 Comparison of mouse lung function levels in each group (±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只MV/mLPEF/(mL·s-1)PIF/(mL·s-1)空白組648.62±3.214.95±0.343.77±0.29模型組519.32±5.12*2.09±0.39*2.06±0.24*桂枝茯苓丸組730.62±4.07#3.51±0.42#2.54±0.22#EVP4593 組632.41±2.83#3.54±0.21#2.62±0.27#桂枝茯苓丸+EVP4593 組640.25±3.67?!鳌?.09±0.15?!鳌?.24±0.17?!鳌?/p>

    3.2 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺組織病理形態(tài)的影響 空白組小鼠肺泡腔完整,黏膜上皮細(xì)胞無脫離壞死,黏膜下腺體無增生,氣道周圍少見炎性細(xì)胞,氣管腔內(nèi)無分泌物,基底膜和平滑肌無增生;與空白組比較,模型組小鼠肺泡間隔增厚,支氣管的基底膜和平滑肌增生,支氣管壁增厚,有大量炎性細(xì)胞浸潤,氣管腔內(nèi)可見上皮細(xì)胞脫離或分泌物,并存在不同程度的狹窄,肺組織炎癥評分和氣道管壁厚度均增加(P<0.05); 與模型組比較,各給藥組小鼠上述病理改變減輕,肺組織炎癥評分和氣道管壁厚度均降低(P<0.05),其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著(P<0.05),而桂枝茯苓丸組和EVP4593 組間比較無明顯差異(P>0.05),見圖1、表2。

    表2 各組小鼠肺組織炎癥評分和氣道管壁厚度比較(±s)Tab.2 Comparison of mouse lung inflammation score and airway wall thickness in each group (±s)

    表2 各組小鼠肺組織炎癥評分和氣道管壁厚度比較(±s)Tab.2 Comparison of mouse lung inflammation score and airway wall thickness in each group (±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只炎癥評分/分氣道管壁厚度/(WAt·Pbm-1)空白組80.00±0.0016.25±1.31模型組63.00±0.76*41.51±2.35*桂枝茯苓丸組72.00±0.76#34.43±1.95#EVP4593 組81.75±0.71#33.51±1.68#桂枝茯苓丸+EVP4593 組71.00±0.76?!鳌?4.59±1.70?!?/p>

    3.3 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺組織膠原纖維的影響 與空白組比較,模型組小鼠氣道藍(lán)染區(qū)厚度增加(P<0.05),膠原纖維增多; 與模型組比較,各給藥組小鼠氣道藍(lán)染區(qū)厚度減?。≒<0.05),膠原纖維減少,其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著(P<0.05),而桂枝茯苓丸組和EVP4593 組間比較無明顯差異(P>0.05),見圖2、表3。

    圖2 各組小鼠肺組織Masson 染色(×200)Fig.2 Masson staining of mouse lung tissue for each group (×100)

    表3 各組小鼠氣道藍(lán)染區(qū)厚度比較(±s)Tab.3 Comparison of the thickness of mouse airway blue staining area in each group (±s)

    表3 各組小鼠氣道藍(lán)染區(qū)厚度比較(±s)Tab.3 Comparison of the thickness of mouse airway blue staining area in each group (±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只氣道藍(lán)染區(qū)厚度/(μm2·μm-1)空白組87.25±1.01模型組631.51±2.35*桂枝茯苓丸組718.23±1.95#EVP4593 組817.91±1.68#桂枝茯苓丸+EVP4593 組711.59±1.70?!鳌?/p>

    3.4 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α 水平的影響 與空白組比較,模型組小鼠肺組的IL-6、IL-8 和TNF-α 水平升高(P<0.05); 與模型組比較,各給藥組小鼠肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α 水平降低(P<0.05),其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著(P<0.05),見表4。

    表4 各組小鼠肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α 水平比較(pg/mL,±s)Tab.4 Comparison of IL-6,IL-8 and TNF-α levels in mouse lung tissue of each group (pg/mL,±s)

    表4 各組小鼠肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α 水平比較(pg/mL,±s)Tab.4 Comparison of IL-6,IL-8 and TNF-α levels in mouse lung tissue of each group (pg/mL,±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只IL-6IL-8TNF-α空白組828.74±2.9042.26±3.2431.46±4.19模型組686.77±7.31*88.72±5.19*72.44±6.82*桂枝茯苓丸組760.61±6.95#65.64±3.61#46.21±4.07#EVP4593 組872.11±6.13?!?7.13±4.59?!?2.25±5.38?!鞴鹬蜍咄?EVP4593 組750.07±4.74?!鳌?4.82±5.70#△▲41.72±4.27?!鳌?/p>

    3.5 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺組織EMT 相關(guān)蛋白表達(dá)的影響 與空白組比較,模型組小鼠肺組織E-cadherin 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),α-SMA 蛋白表達(dá)升高(P<0.05); 與模型組比較,各給藥組小鼠肺組織E-cadherin 蛋白表達(dá)升高(P<0.05),α-SMA 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著 (P<0.05),見圖3、表5。

    圖3 各組小鼠肺組織EMT 相關(guān)蛋白條帶圖Fig.3 Bands of EMT related proteins in mouse lung tissues of each group

    表5 各組小鼠肺組織EMT 相關(guān)蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.5 Comparison of EMT-related proteins expressions in mouse lung tissue of each group (±s)

    表5 各組小鼠肺組織EMT 相關(guān)蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.5 Comparison of EMT-related proteins expressions in mouse lung tissue of each group (±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只 E-cadherinα-SMA空白組80.53±0.120.07±0.01模型組60.12±0.03*0.63±0.04*桂枝茯苓丸組70.28±0.09#0.30±0.02#EVP4593 組80.27±0.06#0.39±0.02?!鞴鹬蜍咄?EVP4593 組70.38±0.04?!鳌?.27±0.03#△▲

    3.6 桂枝茯苓丸對COPD 小鼠肺組織NF-κB/Snail通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響 與空白組比較,模型組小鼠肺組織p-IκBα、p-NF-κB 和Snail 蛋白表達(dá)升高(P<0.05),p-IκBα/IκBα 和p-NF-κB/NF-κB 比值升高(P<0.05); 與模型組比較,各給藥組小鼠肺組織p-IκBα、p-NF-κB 和Snail 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),p-IκBα/IκBα 和p-NF-κB/NF-κB 比值降低(P<0.05),其中以桂枝茯苓丸+EVP4593 組最為顯著(P<0.05),見圖4、表6。

    圖4 各組小鼠肺組織NF-κB/Snail 通路相關(guān)蛋白條帶圖Fig.4 Bands of NF-κB/Snail pathway related proteins in mouse lung tissues of each group

    表6 各組小鼠肺組織NF-κB/Snail 通路相關(guān)蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.6 Comparison of NF-κB/Snail pathway related proteins expressions in mouse lung tissue of each group (±s)

    表6 各組小鼠肺組織NF-κB/Snail 通路相關(guān)蛋白表達(dá)比較(±s)Tab.6 Comparison of NF-κB/Snail pathway related proteins expressions in mouse lung tissue of each group (±s)

    注: 與空白組比較,*P<0.05; 與模型組比較,#P<0.05; 與桂枝茯苓丸組比較,△P<0.05; 與EVP4593 組比較,▲P<0.05。

    組別動(dòng)物數(shù)/只p-IκBαp-IκBα/IκBαp-NF-κBp-NF-κB/NF-κBSnail空白組80.13±0.010.17±0.010.10±0.020.19±0.010.12±0.01模型組60.66±0.06*0.88±0.07*0.57±0.04*0.95±0.07*0.58±0.05*桂枝茯苓丸組70.37±0.04#0.48±0.06#0.28±0.03#0.55±0.06#0.32±0.03#EVP4593 組80.44±0.03?!?.59±0.04?!?.37±0.02?!?.73±0.06#△0.43±0.05?!鞴鹬蜍咄?EVP4593 組70.27±0.02?!鳌?.39±0.06?!鳌?.21±0.02#△▲0.44±0.03?!鳌?.26±0.01?!鳌?/p>

    4 討論

    肺不僅多氣,還是多血、多津之臟,其性易瘀易滯,在六淫等外來之毒的作用下,肺絡(luò)受損,反復(fù)外感,留痰生瘀,導(dǎo)致絡(luò)氣不暢,日久痰瘀化毒,積伏絡(luò)脈,痹阻肺絡(luò),形成COPD 氣道重塑的病理狀態(tài)[10]。桂枝茯苓丸出自張仲景的《金匱要略》,由桂枝、茯苓、赤芍、牡丹皮及桃仁組成,是活血化痰、消癥通絡(luò)之名方[17],可使瘀祛痰消、絡(luò)通毒除,氣道通暢,其應(yīng)用符合“毒損肺絡(luò)”的中醫(yī)病機(jī)思路。

    COPD 氣道重塑涉及網(wǎng)狀基底膜增厚、膠原沉積、氣道纖維化和平滑肌細(xì)胞增生等過程[18]。各種炎癥因子和生長因子參與了氣道的頻繁損傷-修復(fù),慢性炎癥是氣道重塑的重要原因[19]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,COPD 小鼠肺組織IL-6、IL-8 和TNF-α水平升高,同時(shí)伴有大量炎性細(xì)胞浸潤和細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM) 膠原沉積,符合中醫(yī)中“毒損肺絡(luò)、痰瘀痹阻” 的認(rèn)識; 經(jīng)桂枝茯苓丸干預(yù)后,COPD 小鼠以上指標(biāo)得到明顯改善,提示桂枝茯苓丸可解痰瘀之毒,暢通肺絡(luò)痹阻。

    EMT 是上皮細(xì)胞失去其細(xì)胞粘附和頂端-基底極性的特征,并獲得遷移、侵襲和產(chǎn)生ECM 成分的間充質(zhì)細(xì)胞特性[20]。EMT 的生物標(biāo)志包括Ecadherin 的丟失,和(或) 間充質(zhì)標(biāo)志物的增多,如N-鈣粘蛋白、波形蛋白和α-SMA 等[21]。研究表明,EMT 所引發(fā)的上皮細(xì)胞功能異常在COPD 氣道重塑中起重要作用[22]。

    NF-κB 是一種具有多向調(diào)節(jié)作用的核轉(zhuǎn)錄因子,正常情況下與IκBα 形成復(fù)合體,處于被抑制狀態(tài)。一些胞外信號 (包括IL-6[23]、IL-8[24]和TNF-α[6]等炎性因子) 在膜受體的介導(dǎo)下,可激活I(lǐng)κB 激酶,進(jìn)而磷酸化IκBα,使其泛素化降解,最終導(dǎo)致NF-κB 解除抑制而激活,易位到細(xì)胞核以促進(jìn)多種轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)[25]。Snail 蛋白是一種鋅指轉(zhuǎn)錄因子,已被證實(shí)可直接作用于E-cadherin 并抑制其表達(dá),還可上調(diào)Vimentin 和Fibronectin 等間充質(zhì)標(biāo)志物,從而誘導(dǎo)EMT 的發(fā)生[26]?,F(xiàn)有研究表明,NF-κB 可通過直接激活、促進(jìn)轉(zhuǎn)錄和阻斷泛素化降解等途徑增加Snail 的水平[6,8,26-28],NF-κB/Snail 通路在EMT 中的作用已得到廣泛共識。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,COPD 小鼠存在氣道重塑,同時(shí)伴有p-IκBα、p-NF-κB 和Snail 表達(dá)增加,p-IκBα/IκBα和p-NF-κB/NF-κB 比值升高,E-cadherin 表達(dá)降低和α-SMA 表達(dá)增加,并且以上指標(biāo)均可被EVP4593 (NF-κB 信號阻斷劑) 所抑制,提示NFκB/Snail 通路介導(dǎo)了EMT 的發(fā)生,并可能是COPD小鼠氣道重塑的重要原因。桂枝茯苓丸組與EVP4593 組結(jié)果相似,提示桂枝茯苓丸可通過抑制NF-κB/Snail 通路介導(dǎo)的EMT 來改善COPD 氣道重塑。兩者合用療效比單用更好,提示桂枝茯苓丸的治療機(jī)制可能涉及多種途徑,還有待進(jìn)一步探索。

    綜上所述,本研究證實(shí)了NF-κB/Snail 信號通路所介導(dǎo)的EMT 參與了COPD 氣道重塑,而桂枝茯苓丸可能通過“活血化痰、消癥通絡(luò)” 改善以上過程。

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