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    進(jìn)境大豆種子攜帶真菌的分離與鑒定*

    2023-10-25 11:20:14楊瑾李凱興李培謙
    大豆科技 2023年5期
    關(guān)鍵詞:烏拉圭進(jìn)境種皮

    楊瑾,李凱興,李培謙

    (運(yùn)城學(xué)院生命科學(xué)系,山西 運(yùn)城 044000)

    大豆原產(chǎn)我國,是重要的糧食作物之一,其富含油脂和蛋白質(zhì),在國民生產(chǎn)中占有重要地位。隨著大豆進(jìn)境量的快速增長,攜帶各種檢疫性病蟲草害風(fēng)險(xiǎn)不斷加大。據(jù)統(tǒng)計(jì),我國進(jìn)境大豆攜帶的有害生物種類高達(dá)600 余種[1]。進(jìn)境大豆中的檢疫性病害,如大豆莖潰瘍病菌、大豆疫霉、菜豆莢斑駁病毒等檢出率逐年增高[2]。因此,了解進(jìn)境大豆病害發(fā)生及其攜帶病原情況對(duì)阻斷檢疫性病害在我國的危害和流行具有重要現(xiàn)實(shí)意義。檢疫性病害,尤其是國內(nèi)尚未發(fā)現(xiàn)的病害一經(jīng)傳入,將給我國農(nóng)業(yè)生產(chǎn)帶來嚴(yán)重危害[2]。大豆在貯存和運(yùn)輸過程中,不適合的溫度和濕度條件易使其產(chǎn)生霉變,而霉菌產(chǎn)生的毒素是影響大豆品質(zhì)的重要因素之一。因此,掌握進(jìn)境大豆在運(yùn)輸和貯存過程的真菌攜帶情況對(duì)保障進(jìn)境大豆質(zhì)量至關(guān)重要。

    本研究采用傳統(tǒng)分離培養(yǎng)技術(shù),通過形態(tài)學(xué)觀察和分子生物學(xué)手段對(duì)2021 年經(jīng)南通海關(guān)進(jìn)境的美國、烏拉圭、巴西大豆種子進(jìn)行檢測鑒定,并對(duì)植物病原微生物隨大豆入境傳播的可能性進(jìn)行分析,以期為進(jìn)境大豆檢驗(yàn)檢疫工作提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 植物材料大豆種子:為2021 年南通海關(guān)現(xiàn)場檢疫采樣樣品,分別來自美國、烏拉圭和巴西。

    1.1.2 培養(yǎng)基

    馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA):購自青島海博生物技術(shù)有限公司。稱取PDA 粉9.2 g 于250 mL三角瓶中,加入200 mL 超純水,115 ℃高壓滅菌15 min。

    1.1.3 主要儀器材料

    上海一恒電熱恒溫培養(yǎng)箱(DHP-9052),上海一恒科學(xué)儀器有限公司;蘇州凈化(SW-CG-2G)超凈工作臺(tái),蘇州凈化設(shè)備有限公司;德國Eppendorf(5804R)離心機(jī),上海艾研生物科技有限公司;天根基因組提取試劑盒(DP320),天根生化科技(北京)有限公司。

    1.1.4 其他材料

    堿基序列比對(duì)網(wǎng)站:NCBI 數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 種子帶菌率檢測

    采用分離培養(yǎng)法[3]對(duì)種子攜帶真菌情況進(jìn)行檢測。隨機(jī)選取美國、烏拉圭、巴西進(jìn)境大豆種子各100 粒,先將大豆種子在5%次氯酸鈉溶液中浸泡1 min 進(jìn)行表面消毒,再用無菌水沖洗3 次,然后均勻擺放于直徑9 cm 的馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA)平板上,每皿10 粒,共10 個(gè)培養(yǎng)皿。在25 ℃培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)5 d 后統(tǒng)計(jì)100 粒大豆種子帶菌情況。種子帶菌率= 帶菌種子數(shù)/檢測種子總數(shù)×100%。

    1.2.2 種子表面帶菌檢測

    隨機(jī)選取美國、烏拉圭和巴西進(jìn)境大豆種子各15 粒,剔除土屑和木屑,放入裝有100 mL 滅菌超純水的三角瓶中,置于超凈工作臺(tái)后用漩渦儀劇烈震蕩10 min。將震蕩后的上清液倒入滅菌離心管中,12 000 rpm/min 離心3 min。將離心后的下層液體均勻涂布在PDA 平板上,每種大豆以上步驟均3 次重復(fù)。將涂好的平板置于25 ℃培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)。每天觀察大豆周圍菌落生長狀況,及時(shí)挑出形態(tài)、顏色不同的菌落。將挑出的菌絲塊在新的PDA 培養(yǎng)基上轉(zhuǎn)接3 代,用以純化。觀察純化后的真菌,記錄菌落特征,用顯微鏡觀察菌絲和分生孢子形態(tài),對(duì)所有純化后的真菌對(duì)照檢索表進(jìn)行形態(tài)學(xué)[4]鑒定。純化好的菌株經(jīng)轉(zhuǎn)接后于滅菌濾紙片過夜吹干,置于-20 ℃冰箱保存。

    1.2.3 種皮、種內(nèi)帶菌檢測

    采用組織分離法[3],隨機(jī)選取美國、烏拉圭和巴西進(jìn)境大豆種子各15 粒,用漩渦儀劇烈震蕩10 min,處理方法同上。用鑷子將震蕩后的大豆種子取出放入5%次氯酸鈉溶液中消毒1 min,滅菌超純水沖洗3 次后,用滅菌后的鑷子將大豆表皮撕下放在PDA 培養(yǎng)基上,將撕皮后的種子同樣放置于PDA 培養(yǎng)基上,每種大豆以上步驟均3 次重復(fù)[3]。將涂好的平板置于25 ℃培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)。菌株純化及形態(tài)學(xué)鑒定同1.2.2。純化好的菌株接于濾紙片干燥后置于-20 ℃冰箱保存。1.2.4 菌株分子鑒定

    用滅菌手術(shù)刀輕輕刮取培養(yǎng)基上純化后的菌絲,采用天根基因組提取試劑盒(DP320)提取菌株基因組DNA。提取后的基因組DNA 置于-20 ℃冰箱保存。利用ITS 序列引物ITS4/ITS5 進(jìn)行普通PCR 反應(yīng)。反應(yīng)體系為25 μL,其中2XEasy-LoadTMPCR Master Mix 12.5 μL;ITS4/ITS5 各1 μL;基因組模板1 μL;最后用滅菌超純水補(bǔ)足體積至25 μL。反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,58 ℃復(fù)性30 s,72 ℃延伸40 s,變性至延伸階段32 個(gè)循環(huán);72 ℃再延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠1 × TAE 緩沖液中電泳,經(jīng)核酸染料染色后于紫外燈下凝膠成像。將出現(xiàn)650 bp 長度的條帶樣品送至武漢金開瑞生物工程有限公司測序。將測序獲得的序列在NCBI 網(wǎng)站進(jìn)行Blast 同源性比對(duì)分析,將比對(duì)結(jié)果結(jié)合菌絲形態(tài)學(xué)觀察對(duì)病原菌進(jìn)行鑒定。

    1.3 數(shù)據(jù)分析

    試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2020 進(jìn)行計(jì)算和整理。序列比對(duì)在NCBI 數(shù)據(jù)庫上進(jìn)行。

    2 結(jié)果分析

    2.1 種子帶菌率檢測結(jié)果分析

    由表1 可知,不同國家進(jìn)境大豆種子帶菌率不同。進(jìn)境大豆種子帶菌率表現(xiàn)為美國>巴西>烏拉圭。其中美國進(jìn)境大豆種子帶菌率為20.7%;巴西進(jìn)境大豆種子帶菌率為18.1%;烏拉圭進(jìn)境大豆種子帶菌率為15.4%。

    表1 不同國家進(jìn)境大豆種子帶菌率檢測結(jié)果

    2.2 真菌分離物初步鑒定結(jié)果分析

    對(duì)來自3 個(gè)國家的進(jìn)境大豆種子分別進(jìn)行種子表面、種皮和種內(nèi)攜帶真菌分離鑒定。經(jīng)3 代純化培養(yǎng)后,共得到21 個(gè)分離物。其中美國進(jìn)境大豆上獲得6 個(gè)分離物,巴西進(jìn)境大豆上獲得11 個(gè)分離物,烏拉圭進(jìn)境大豆上獲得4 個(gè)分離物。通過菌落形態(tài)、菌絲和分生孢子觀察,初步鑒定其分屬青霉屬(Penicillium spp.)、曲霉屬(Aspergillus spp.)和殼球孢屬(Macrophomina spp.)。

    2.3 菌株分子鑒定結(jié)果分析

    通過引物ITS4/ITS5 對(duì)病原菌rDNA 區(qū)段的內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,將凝膠結(jié)果中顯示為650 bp 長度的單條帶序列進(jìn)行測序,經(jīng)NCBI 網(wǎng)站進(jìn)行序列比對(duì)分析,結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察,將菌株鑒定到種(見表2)。

    表2 不同國家進(jìn)境大豆種子菌株分子鑒定結(jié)果

    由表2 可知,經(jīng)鑒定,21 個(gè)分離物中曲霉屬(Aspergillus spp.)真菌分離率最高,共獲得12 個(gè),占比達(dá)57%。其主要為紅曲霉(A.ruber)、黃曲霉(A.flavus)、冠突曲霉(A.cristatus)和偽青曲霉(A.pseudoglaucus)。其中烏拉圭進(jìn)境大豆種子分離得到黃曲霉(A.flavus)和菜豆殼球孢(M.phaseolina);巴西進(jìn)境大豆種子分離得到菜豆殼球孢(M.phaseolina)、偽青曲霉(A.pseudoglaucus)、黃曲霉(A.flavus)和共青霉(P.commune);美國進(jìn)境大豆種子分離得到紅曲霉(A.ruber)、冠突曲霉(A.cristatus)和共青霉(P.commune)。

    通過對(duì)種子表面、種皮和種內(nèi)3 個(gè)不同部位帶菌情況進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)種子表面帶菌情況與種內(nèi)、種皮帶菌情況存在較大差別。來自3 個(gè)國家進(jìn)境大豆種子表面均可分離得到真菌,但美國和烏拉圭進(jìn)境大豆種子種皮均未分離得到真菌。其中美國進(jìn)境大豆種子表面分離物與種內(nèi)分離物不同;烏拉圭進(jìn)境大豆種子表面分離得到菜豆殼球孢,而種內(nèi)未分離得到該真菌;巴西進(jìn)境大豆種子表面分離得到菜豆殼球孢,但在種皮和種內(nèi)均未分離到該真菌(見表2)。

    3 結(jié)論與討論

    本研究對(duì)2021 年經(jīng)南通海關(guān)進(jìn)境的美國、烏拉圭和巴西進(jìn)境大豆種子帶菌情況進(jìn)行檢測,共得到21 個(gè)分離物,其中曲霉屬(Aspergillus spp.)真菌分離率最高,占比為57%;其次為青霉屬真菌和菜豆殼球孢。魏思楠等[3]對(duì)我國不同地區(qū)大豆主栽品種種子攜帶真菌進(jìn)行研究表明,我國大豆種子中青霉屬的分離率最高,其次是曲霉屬。其中青霉屬真菌多為貯藏期病害病原菌,對(duì)植物生育期的生長發(fā)育影響不大。王勇等[5]對(duì)浙江省舟山口岸進(jìn)境大豆攜帶常見真菌進(jìn)行檢測表明,青霉屬和曲霉屬真菌檢出率最高。

    大豆在運(yùn)輸和貯存過程中易發(fā)生霉變,霉變后產(chǎn)生的霉菌毒素可嚴(yán)重危害人體健康。黃曲霉毒素(A.flatoxins)由曲霉屬(Aspergillus spp.)真菌產(chǎn)生,是最常見也是毒性最強(qiáng)的霉菌毒素之一。曲霉屬在自然界中分布較廣,可侵染飼料、花生和油料等。黃曲霉侵染食物后產(chǎn)生的黃曲霉毒素是化合物中毒性和致癌性最強(qiáng)的有害物質(zhì)之一[6]。其中花生種子為最易感染黃曲霉的作物之一,由黃曲霉毒素產(chǎn)生的污染已成為制約花生國際競爭力的關(guān)鍵因素[7]。自1960 年發(fā)現(xiàn)黃曲霉毒素后,國內(nèi)及出入境大豆種子及其制品中黃曲霉毒素監(jiān)測成為重要關(guān)注領(lǐng)域。對(duì)于進(jìn)境大豆攜帶的貯存期病原真菌可采用熏蒸處理,殺死運(yùn)輸過程或貯存中產(chǎn)生的青霉和曲霉。此外,還可采用干熱方法處理帶菌大豆[9]。

    菜豆殼球孢(M.phaseolina)是一種常見土傳性病原菌,可侵染500 多種植物。由其引起的大豆炭腐病為影響美國大豆生產(chǎn)的第三大病害,其廣泛發(fā)生于世界主要大豆生產(chǎn)區(qū),可造成大豆嚴(yán)重減產(chǎn)[10-12]。本研究中,在烏拉圭和巴西進(jìn)境大豆中均分離得到了該真菌。間座殼屬(Diaporthe novem)真菌是一種常見檢疫性病害,該病菌可引起大豆莖稈潰瘍及種子腐爛,對(duì)大豆產(chǎn)生嚴(yán)重危害[13],本研究未檢測到該檢疫性病原。

    本研究通過對(duì)大豆種子表面、種皮和種內(nèi)不同部位帶菌情況進(jìn)行比較發(fā)現(xiàn),不同部位真菌分離情況差別較大。種皮和種內(nèi)帶菌不同的原因可能是真菌侵染大豆種子后,種子較為干燥,真菌無法繼續(xù)擴(kuò)展,因此只在表面或種皮分離得到。此外,試驗(yàn)中由于純化技術(shù)的限制也會(huì)導(dǎo)致某些真菌無法分離得到。因此在進(jìn)行種子帶菌檢測時(shí),不能僅單一地進(jìn)行表面分離物的鑒定,還應(yīng)從不同部位全面取樣進(jìn)行鑒定才能準(zhǔn)確反映種子帶菌情況。

    致謝:感謝中華人民共和國南通海關(guān)朱林為本試驗(yàn)提供大豆種子,在此表示衷心感謝!

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