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    亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變選育高產(chǎn)衣康酸菌株

    2023-08-12 02:06:56杜敬彩趙剛李自云許國峰張成虎
    生物化工 2023年3期
    關(guān)鍵詞:亞硝基突變率致死率

    杜敬彩,趙剛,李自云,許國峰,張成虎*

    (1.山東泓達(dá)生物科技有限公司,山東臨沂 276400;2.山東沂蒙山酒業(yè)有限公司,山東臨沂 276400)

    衣康酸學(xué)名為甲叉琥珀酸、亞甲基丁二酸,是不飽和二元有機酸。因為衣康酸分子內(nèi)含一個不飽和雙鍵,化學(xué)性質(zhì)活潑,可進行自聚合,也能與其他有機物共聚。衣康酸具有兩個羧基,還可以與醇發(fā)生酯化反應(yīng)。平臺化合物是指可進一步轉(zhuǎn)化為價值更高的目標(biāo)化工產(chǎn)品的基礎(chǔ)化學(xué)物,2004 年,衣康酸被美國能源部評選為12 種最具發(fā)展?jié)摿Φ纳锘脚_化合物之一[1]。衣康酸酯類是生產(chǎn)腈綸、樹脂、塑料、橡膠、藥物、表面活性劑、無毒食品包裝材料、除草劑、除垢劑、粘著劑、除臭劑、紙張等的工業(yè)原料,廣泛用于化工行業(yè)[2-3]。因此,衣康酸是化學(xué)合成工業(yè)的重要原料,也是化工生產(chǎn)的重要原料。

    衣康酸的生產(chǎn)方法主要有化學(xué)法和生物法,相比化學(xué)法生產(chǎn)衣康酸,生物發(fā)酵法具有原料來源豐富、成本較低、反應(yīng)條件溫和、環(huán)境友好、工藝技術(shù)成熟等優(yōu)點,因此生物發(fā)酵法是目前衣康酸生產(chǎn)的主流方向。近年來報道的微生物發(fā)酵法生產(chǎn)衣康酸的主要菌種包括土曲霉[4](Aspergillus terreus)、玉米黑粉菌[5](Ustilago maydis)、黑曲霉[6](Aspergillus niger),這些菌株產(chǎn)生的衣康酸可自主分泌到胞外。目前,土曲霉(Aspergillus terreus)仍然是應(yīng)用最廣泛的衣康酸工業(yè)生產(chǎn)菌株,但菌種產(chǎn)量較低、產(chǎn)酸不穩(wěn)定成為制約衣康酸生物發(fā)酵產(chǎn)業(yè)快速發(fā)展的重要因素。因此,利用傳統(tǒng)誘變育種或基因重組對菌種進行改良已成為衣康酸生產(chǎn)領(lǐng)域的重要研究方向。

    傳統(tǒng)的物理、化學(xué)誘變方法可以促進誘發(fā)突變,提高突變率,并且因其便捷、快速、有效等優(yōu)點,迄今為止仍是國內(nèi)外提高菌種產(chǎn)量、性能的主要手段。誘變方法不同對菌株產(chǎn)生的誘變效應(yīng)也不同。如紫外誘變是一種常用的物理誘變因素,可使DNA 形成嘧啶二聚體[7],而亞硝基胍(NTG)是烷化劑的一種,被喻為“超誘變劑”[8],它主要在DNA 鏈的復(fù)制區(qū)引起GC →AT 的轉(zhuǎn)換,即使在致死率很低的條件下也能使微生物產(chǎn)生高頻率的突變。單一誘變方法雖可得到高產(chǎn)菌株,但突變概率偏低;復(fù)合誘變具有協(xié)同效應(yīng),比單一誘變效果好[9]。

    本研究采用亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變對本實驗室一株產(chǎn)衣康酸菌株進行菌種選育,加大菌株突變率,有效提高高產(chǎn)菌株的選育效率,并對高產(chǎn)菌株的遺傳穩(wěn)定性進行了研究。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株

    土曲霉KYK-031,本實驗室篩選保藏。

    1.1.2 培養(yǎng)基

    (1)傳代斜面培養(yǎng)基:葡萄糖20.0 g/L,胰蛋白胨1.0 g/L,玉米漿3.0 g/L,硫酸鎂1.0 g/L,磷酸二氫鉀0.5 g/L,瓊脂20.0 g/L,pH 自然。

    (2)種瓶培養(yǎng)基:葡萄糖40.0 g/L,硫酸銨5.0 g/L,玉米漿2.5 g/L,硫酸鎂1.0 g/L,磷酸二氫鉀0.5 g/L,硝酸調(diào)pH 值至3.0。

    (3)搖瓶培養(yǎng)基:葡萄糖130.00 g/L,硫酸銨5.00 g/L,玉米漿2.50 g/L,硫酸鎂1.00 g/L,磷酸二氫鉀0.50 g/L,硫酸亞鐵0.01 g/L,硫酸鋅0.01 g/L,氯化鈣0.50 g/L,硝酸調(diào)pH 值至3.0。

    (4)初篩顯色平板培養(yǎng)基:葡萄糖100.00 g/L,硫酸銨5.00 g/L,玉米漿2.50 g/L,硫酸鎂1.00 g/L,磷酸二氫鉀0.50 g/L,硫酸亞鐵0.01 g/L,硫酸鋅0.01 g/L,溴甲酚綠0.10 g/L,瓊脂20.00 g/L。

    1.1.3 試劑

    亞硝基胍,分析純,上海源葉生物科技有限公司;溴甲酚綠,分析純,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;胰蛋白胨,生化試劑,國藥集團化學(xué)試劑有限公司;玉米漿,生化試劑,魯洲生物科技(山東)有限公司;瓊脂,生化試劑,上海沃凱藥業(yè)有限公司;酚酞,分析純,天津市北辰區(qū)方正試劑廠;其余試劑均為國藥集團化學(xué)試劑有限公司生產(chǎn)的分析純試劑。

    1.1.4 儀器與設(shè)備

    ZWY-2112B 型恒溫?fù)u床、ZXDP-B2270 型電熱恒溫培養(yǎng)箱和ZHJH-C1112C 型超凈工作臺,上海智城分析儀器制造有限公司;LDZM-80L-Ⅱ型立式高壓蒸汽滅菌鍋,上海申安醫(yī)療器械廠;SBA-40E 型生物傳感分析儀,山東省科學(xué)院生物研究所。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 單孢子懸液制備

    甘油管菌種接種新鮮斜面培養(yǎng)基,37 ℃培養(yǎng)6 ~7 d,待長出孢子,取出斜面加入6 mL 磷酸緩沖液(0.1 mol/L,pH 6.0),用接種環(huán)刮下孢子,振蕩試管立即通過帶濾紙漏斗過濾,調(diào)整孢子懸液的濃度為106個/mL,得到單孢子懸液[10]。

    1.2.2 亞硝基胍(NTG)溶液的制備

    使用磷酸緩沖液(0.1 mol/L,pH 6.0)配制1 mg/mL亞硝基胍溶液,于暗處振蕩溶解后備用。

    1.2.3 亞硝基胍誘變

    亞硝基胍溶液與單孢子懸液以1 ∶1 的體積比例混合,30 ℃振蕩20 ~60 min,20 min 時取樣1 次,之后每10 min 取樣1 次,取樣后立即稀釋1 000 倍終止反應(yīng);梯度稀釋后,于初篩顯色平板進行分離培養(yǎng),37 ℃培養(yǎng)3 d 后計數(shù)。未處理的單孢子懸液與pH 6.0的磷酸緩沖液以1 ∶1 的體積比例混合,梯度稀釋后于初篩顯色平板進行分離培養(yǎng),37 ℃培養(yǎng)3 d 后計數(shù)。

    根據(jù)處理前后的孢子數(shù)按公式(1)計算致死率。根據(jù)Hc 值(變色圈直徑與菌落直徑的比值),處理后的單菌落比處理前的單菌落Hc值高的為正突變菌株,按公式(2)計算正突變率。

    式中:B0和By分別為每1 mL 未處理和誘變處理孢子液中孢子數(shù);J為每1 mL 對照組菌液中菌株數(shù)。

    1.2.4 紫外誘變

    取單孢子懸液8 mL 至直徑為9 cm 的無菌培養(yǎng)皿中,置于磁力攪拌器上,15 W 紫外線下30 cm 處。在正式照射前,應(yīng)先開啟紫外燈預(yù)熱10 ~20 min,待光波穩(wěn)定后,開啟皿蓋和磁力攪拌,分別照射1 min、2 min、3 min、4 min 和5 min。操作全過程在紅燈下進行,避免白熾光。誘變單孢子懸液放入黑暗冰箱中保存1 h,抑制突變體中的修復(fù)酶活,提高誘變突變率。取未照射的制備孢子液和照射后冰箱保存的孢子液各1 mL,梯度稀釋至合適濃度,取0.1 mL 單孢子懸液均勻涂布于初篩顯色平板,于37 ℃避光培養(yǎng)3 d。計算致死率和正突變率。

    1.2.5 亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變

    以亞硝基胍和紫外線誘變的最佳參數(shù)進行復(fù)合誘變。取經(jīng)亞硝基胍誘變的單孢子懸液8 mL 至直徑為9 cm 的無菌培養(yǎng)皿中,進行紫外誘變,稀釋分離后涂布于初篩顯色平板,于37 ℃避光培養(yǎng)3 d。根據(jù)孢子液中活孢子數(shù)和Hc 值,以未經(jīng)處理的單孢子懸液為對照,計算致死率和正突變率。

    1.2.6 篩選方法

    (1)平板初篩

    衣康酸單菌落生長過程中產(chǎn)生衣康酸,滲透進周圍培養(yǎng)基中,導(dǎo)致pH 降低,初篩顯色平板在溴甲酚綠酸堿指示劑的作用下,藍(lán)綠色的平板上產(chǎn)生黃色變色圈,根據(jù)初篩顯色平板上的Hc 值,選取10%的高產(chǎn)菌株傳代于試管斜面培養(yǎng)基,37 ℃下恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)3 d 進入復(fù)篩。

    (2)搖瓶復(fù)篩

    將平板初篩獲得菌株斜面孢子接種瓶培養(yǎng)基,37 ℃下200 r/min 回旋式搖床培養(yǎng)36 h,按10%接種量轉(zhuǎn)接搖瓶培養(yǎng)基,500 mL 三角瓶裝液量為60 mL,每株菌株做3 個平行,在37 ℃下200 r/min 回旋式搖床培養(yǎng)3 d。

    (3)誘變篩選路線

    根據(jù)選定誘變條件,確定如下誘變路線[11]。第一輪:以土曲霉HYK-031 為出發(fā)菌株,經(jīng)亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后,初篩顯色平板上根據(jù)Hc 值從500 株顯色菌株進行初篩,選取50 株Hc 值較大菌株進行搖瓶復(fù)篩,篩選出5 株高產(chǎn)菌株。第二輪:分別以5 株高產(chǎn)菌株為出發(fā)菌株,每株出發(fā)菌株經(jīng)亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后,分別從初篩顯色平板上長出的100 株顯色菌株(共500 株)中進行初篩,選取50 株Hc 值較大菌株進行搖瓶復(fù)篩,篩選出5 株高產(chǎn)菌株。第三輪:與第二輪步驟相同。第四輪:與第三輪步驟相同。

    1.2.7 高產(chǎn)突變株遺傳穩(wěn)定性考察

    將亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后復(fù)篩選育的衣康酸高產(chǎn)菌株,連續(xù)傳5 代,并將5 代全部進行搖瓶發(fā)酵驗證,根據(jù)發(fā)酵結(jié)果確定高產(chǎn)菌株的遺傳穩(wěn)定性。

    1.2.8 分析方法

    (1)衣康酸含量檢測

    發(fā)酵完畢,取出搖瓶加水恢復(fù)至原體積60 mL,取發(fā)酵液用濾紙進行過濾后,稱取濾液0.2 g,精確到0.2 mg,用約50 mL 水溶解并全部移入250 mL 錐形瓶中,加酚酞指示液2 ~3 滴,以0.1 mol/L 氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液滴定至淡粉色,并保持30 s不褪色為終點,記錄消耗氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積V1,同時做空白試驗,記錄消耗氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積V2。衣康酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)W按公式(3)計算。

    式中,c為氫氧化鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的準(zhǔn)確濃度,mol/L;65.05 為衣康酸的摩爾質(zhì)量,g/mol;m為試樣的質(zhì)量,g。

    (2)糖酸轉(zhuǎn)化率

    生物傳感分析儀檢測初始糖濃度和殘?zhí)菨舛?,糖酸轉(zhuǎn)化率按公式(4)計算。

    1.3 統(tǒng)計與分析

    利用Excel 2007 軟件對數(shù)據(jù)進行平均數(shù)和方差的統(tǒng)計分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 亞硝基胍誘變時間的確定

    對出發(fā)菌株土曲霉KYK-031 進行亞硝基胍誘變后,計算致死率和正突變率,結(jié)果如圖1 所示。亞硝基胍在500 μg/mL 濃度下,隨著亞硝基胍誘變時間的延長,致死率逐漸升高,正突變率則先上升后下降。當(dāng)亞硝基胍誘變時間為40 min 時,正突變率達(dá)到最高(15%),此時的致死率為81.6%。因此,選擇亞硝基胍誘變時間為40 min。

    圖1 NTG 誘變的影響

    2.2 紫外誘變時間的確定

    對出發(fā)菌株土曲霉KYK-031 進行了紫外誘變后,計算致死率和正突變率,結(jié)果如圖2 所示。在相同紫外照射強度下,隨著誘變時間的延長致死率逐漸升高,正突變率則呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。當(dāng)紫外誘變時間為2 min 時,正突變率達(dá)到最高(17.3%),此時的致死率為75.2%。因此,選擇紫外誘變時間為2 min。

    圖2 紫外誘變的影響

    2.3 亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變

    對出發(fā)菌株土曲霉KYK-031 進行亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變,選擇亞硝基胍誘變濃度為500 μg/mL,亞硝基胍誘變時間為40 min,15 W 紫外線照射時間為2 min,亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后,進行致死率和正突變率的計算。三次重復(fù)實驗結(jié)果見表1,致死率達(dá)到93.5%,正突變率也達(dá)到了26.1%,比單一誘變正突變率高。

    表1 亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變對土曲霉的影響

    2.4 高產(chǎn)菌株的篩選

    以土曲霉KYK-031 為出發(fā)菌株,進行三輪亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后,根據(jù)平板初篩和搖瓶復(fù)篩結(jié)果,篩選出5 株衣康酸高產(chǎn)菌株KYK-1035、KYK-1165、KYK-1352、KYK-1483 和KYK-1494,搖瓶發(fā)酵產(chǎn)量結(jié)果如圖3 所示。KYK-1035 菌株搖瓶發(fā)酵衣康酸產(chǎn)量最高,為73.7 g/L,比出發(fā)菌株(41.8 g/L)提高了76.3%,糖酸轉(zhuǎn)化率為63.4%。

    圖3 土曲霉突變株產(chǎn)量和糖酸轉(zhuǎn)化率

    2.5 高產(chǎn)菌株的遺傳穩(wěn)定性

    篩選出的衣康酸高產(chǎn)菌株要符合生產(chǎn)菌株穩(wěn)定性的要求。對篩選出的衣康酸高產(chǎn)菌株KYK-1035傳代5 次,對5 代菌株的遺傳穩(wěn)定性進行考察,結(jié)果見表2。由結(jié)果可知,KYK-1035 菌株搖瓶發(fā)酵衣康酸的產(chǎn)量維持在72.4 ~73.9 g/L,糖酸轉(zhuǎn)化率維持在62.6%~63.6%,衣康酸產(chǎn)量和糖酸轉(zhuǎn)化率都較穩(wěn)定,遺傳穩(wěn)定性良好。

    表2 土曲霉突變株KYK-1035 的遺傳穩(wěn)定性

    3 結(jié)論

    通過對衣康酸出發(fā)菌株土曲霉KYK-031 進行傳統(tǒng)的化學(xué)、物理誘變,獲得高產(chǎn)衣康酸菌株。分別對亞硝基胍誘變和紫外誘變的致死率和正突變率進行研究,確定了亞硝基胍在500 μg/mL 濃度下的最佳誘變時間為40 min,15 W 紫外誘變的最佳誘變時間為2 min。最佳誘變條件下對土曲霉KYK-031 進行亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變,比單一誘變的正突變率更高。進行三輪亞硝基胍-紫外復(fù)合誘變后,篩選出一株衣康酸高產(chǎn)菌株KYK-1035,搖瓶發(fā)酵衣康酸產(chǎn)量水平為73.7 g/L,比出發(fā)菌株(41.8 g/L)提高了76.3%,糖酸轉(zhuǎn)化率為63.4%。對KYK-1035 菌株進行遺傳穩(wěn)定性驗證,該菌株穩(wěn)定性良好,為今后的工業(yè)化生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。后期將繼續(xù)對該菌株進行逐步放大優(yōu)化,使其作為生產(chǎn)菌株更適應(yīng)工業(yè)化生產(chǎn)。

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