飼糧能氮比對簡州大耳羊糞便排泄參數(shù)及微生物區(qū)系的影響

付敏，陳天寶，歐陽佚亭，賴靖雯，陳敏，曾洪良

（四川省畜牧科學(xué)研究院，動物遺傳育種四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，成都 610000）

肉羊養(yǎng)殖是我國畜禽養(yǎng)殖的重要組成部分，與1961 年相比，2021 年肉羊出欄量增長了34.4 倍，羊肉產(chǎn)量增長了46.7 倍，肉羊產(chǎn)業(yè)穩(wěn)步增長[1]。然而，我國肉羊養(yǎng)殖也面臨著巨大的挑戰(zhàn)：一方面肉羊營養(yǎng)需要量標(biāo)準(zhǔn)不完善，導(dǎo)致生產(chǎn)上飼糧配方差異大，能量蛋白質(zhì)不平衡，既浪費(fèi)飼料資源，又造成環(huán)境氮污染。肉羊?qū)︷B(yǎng)分的消化主要通過瘤胃微生物發(fā)酵，只有飼糧提供的能量和氮含量達(dá)到微生物需求平衡時(shí)，微生物才能達(dá)到最佳生長狀態(tài)，進(jìn)而有利于養(yǎng)分的消化吸收，因此，飼糧適宜的能氮比是合理配制反芻動物飼糧的基礎(chǔ)[2]。研究表明，飼糧適宜的能氮比可以提高肉羊生產(chǎn)性能和養(yǎng)分消化率[3-5]；蛋白質(zhì)水平過高導(dǎo)致的能氮不平衡問題，不僅會降低肉羊生產(chǎn)性能，還會增加氮的排泄[5-6]，糞便中氮含量與飼料蛋白質(zhì)攝入量有很強(qiáng)的正相關(guān)關(guān)系[6-7]。李闖[2]、張繼偉等[4]、柴貴賓等[5]分別提出了不同飼養(yǎng)方式下本地羊適宜的飼糧能氮比，但由于肉羊的窄生態(tài)適應(yīng)性，不同品種肉羊飼糧能氮比適宜值仍然需要根據(jù)品種特性和飼養(yǎng)方式進(jìn)一步探索和研究。另一方面，隨著我國肉羊養(yǎng)殖數(shù)量增加和規(guī)?；潭忍岣撸B(yǎng)殖污染問題日益突出，威脅到生態(tài)環(huán)境和人居安全，而且反芻動物對環(huán)境的影響是其他牲畜的3~10 倍[8]。畜禽糞便排泄參數(shù)不僅能反映畜禽營養(yǎng)健康狀況，更是開展畜禽糞污治理和資源化利用的基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。國外對羊糞產(chǎn)排特性研究較早，美國農(nóng)業(yè)工程師協(xié)會發(fā)布了羊的糞尿產(chǎn)生量及糞尿中污染物的含量[9]，而國內(nèi)對肉羊糞便產(chǎn)排系數(shù)監(jiān)測的重視度不高，研究較晚，楊碩等[10]研究了規(guī)?；驁龆挪囱蚝托∥埠虿煌竟?jié)糞便主要成分含量差異，糞便產(chǎn)生量研究未見詳細(xì)報(bào)道。我國每10 年開展一次的污染普查，只針對生豬、牛、肉雞和蛋雞進(jìn)行產(chǎn)排污系數(shù)原位監(jiān)測，而缺少對羊的產(chǎn)排污監(jiān)測，這給肉羊糞污治理及資源化利用帶來了盲目性。

簡州大耳羊是我國人工培育的肉用山羊新品種，生長快、肉質(zhì)好，在南方地區(qū)廣泛飼養(yǎng)[11]。由于缺少針對性的飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)，生產(chǎn)上飼糧能氮比差異較大，這可能導(dǎo)致糞尿特性參數(shù)變化，不利于糞污減排和高效利用。因此，本試驗(yàn)旨在探索全價(jià)顆粒飼糧不同能氮比（代謝能/總氮）對生長育肥期簡州大耳羊糞便排泄參數(shù)、氮排泄參數(shù)以及糞便微生物區(qū)系的影響，為簡州大耳羊的低碳高效養(yǎng)殖和糞便資源化利用提供科技支撐。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

本研究采用單因子試驗(yàn)設(shè)計(jì)，選擇32 只體質(zhì)量為（26.16±2.39）kg 的健康簡州大耳羊，隨機(jī)分配到編號為a、b、c、d 的4 個(gè)試驗(yàn)組，每組8 只羊（公母各4只），分別飼喂能氮比（ME/N）為0.59、0.51、0.43、0.35的全價(jià)顆粒飼糧，適應(yīng)30 d后移入羊代謝籠開展12 d全收糞尿試驗(yàn)（預(yù)飼7 d，正式5 d），測定試驗(yàn)羊糞尿和氮排泄參數(shù)，然后在正式試驗(yàn)第5 天收集試驗(yàn)羊新鮮直腸糞便測定糞便微生物區(qū)系。試驗(yàn)飼糧配方和能氮比設(shè)計(jì)參照課題組前期研究[3]，能氮比為飼糧代謝能濃度與總氮濃度比值，試驗(yàn)飼糧組成及養(yǎng)分含量見表1。

表1 飼糧組成及養(yǎng)分含量（干物質(zhì)基礎(chǔ)，%）Table 1 Composition and nutrient content of experimental diets（DM basis，%）

1.2 飼養(yǎng)管理

飼養(yǎng)試驗(yàn)前對羊舍和用具全面清洗、晾干、消毒。飼養(yǎng)期間按照羊場管理規(guī)范進(jìn)行疫病防控和飼養(yǎng)管理，自由飲水，自由采食。正式試驗(yàn)期，對試驗(yàn)羊空腹稱質(zhì)量后移入羊代謝籠，單只單籠飼養(yǎng)，先預(yù)飼7 d以確保肉羊體況正常穩(wěn)定，然后連續(xù)開展5 d 的全收糞尿試驗(yàn)，準(zhǔn)確稱量每只羊每日的采食量、糞便量和尿液量，記錄圈舍環(huán)境溫度、濕度和試驗(yàn)羊健康狀況等。

1.3 樣品采集與處理

飼糧樣品：分別在飼糧加工完成的第1 天、適應(yīng)期第15 天和正式試驗(yàn)期每日采集每組飼料樣品200 g，測定干物質(zhì)含量和總氮含量。

糞便樣品：正式期每日8：00在每只羊的代謝籠特定位置放置干凈帶蓋塑料桶，用于收集試驗(yàn)羊每次全部糞便，于次日8：00稱取前1天糞便總量。糞便混勻后，采用四分法按照糞便總質(zhì)量的20%采集糞便樣品2份測定干物質(zhì)含量、pH和總氮含量，糞便樣品采集方法參照《畜禽糞便監(jiān)測技術(shù)》（GB/T 25169—2022）。

尿液樣品：正式期每日8：00 將干凈的裝有15 mL 4.5 mol·L-1H2SO4的接尿桶（容量5 000 mL）放置于羊代謝籠底部固定位置，收集每只羊全部尿液，于次日8：00 計(jì)量前1 天尿液總量，尿液混勻后，調(diào)整pH≤3（記錄加酸量），并按照總質(zhì)量的20%采集尿液樣品用于測定總氮和氨氮。所有樣品按照標(biāo)準(zhǔn)編號，4 ℃保存，送實(shí)驗(yàn)室檢測。

糞便微生物樣品：在正式期第5 天，用無菌鑷子采集每頭試驗(yàn)羊直腸末端新鮮無污染糞便，裝入5 mL凍存管，并做好標(biāo)記，-80 ℃凍存。

1.4 樣品檢測方法及指標(biāo)計(jì)算

1.4.1 肉羊糞便及氮排泄參數(shù)檢測與計(jì)算

飼料和糞便的干物質(zhì)含量均參照《飼料分析及飼料質(zhì)量檢測技術(shù)》[13]測定，糞便和尿液pH、總氮、氨氮參照NY/T 525—2021 測定。畜禽糞便的排泄量還與體質(zhì)量呈顯著正相關(guān)關(guān)系[14]，為了降低體質(zhì)量變化帶來的排泄量的差異，用單位代謝體質(zhì)量糞便尿液（氮）排泄參數(shù)來衡量糞尿（氮）排泄量更具代表性。通過以下公式計(jì)算：

氮攝入量（g·d-1）=日采食干物質(zhì)量（g·d-1）×飼糧氮含量（%）

日排糞氮（g·d-1）=日排糞便干物質(zhì)量（g·d-1）×糞便總氮含量（%）

日排尿氮（g·d-1）=日排尿液質(zhì)量（g·d-1）×尿液總氮含量（%）

日排總氮（g·d-1）=日排糞氮（g·d-1）+日排尿氮（g·d-1）

氮排泄率（%）=日排總氮（g·d-1）/日攝入氮量（g·d-1）×100%

單位代謝體質(zhì)量糞便日排泄量（g·kg-0.75·d-1）=日排糞便干物質(zhì)量（g·d-1）/羊活體質(zhì)量0.75（kg0.75）

單位代謝體質(zhì)量尿液日排泄量（g·kg-0.75·d-1）=日排尿液質(zhì)量（g·d-1）/羊活體質(zhì)量0.75（kg0.75）

單位代謝體質(zhì)量糞氮日排泄量（g·kg-0.75·d-1）=日排糞氮（g·d-1）/羊活體質(zhì)量0.75（kg0.75）

單位代謝體質(zhì)量尿氮日排泄量（g·kg-0.75·d-1）=日排尿氮（g·d-1）/羊活體質(zhì)量0.75（kg0.75）

1.4.2 肉羊糞便微生物菌群檢測

糞便細(xì)菌多樣性檢測由天津諾禾致源生物信息科技有限公司完成，DNA提取和16S rRNA PCR擴(kuò)增、測序及數(shù)據(jù)分析法參照Griffith等[15]的方法。每個(gè)試驗(yàn)組選擇8只羊的糞便樣品進(jìn)行微生物菌群檢測，分析糞便微生物菌群多樣性，及在門和屬水平上的組成和相對豐度。

1.5 統(tǒng)計(jì)分析

利用SPSS 20.0 軟件One-way ANOVA 進(jìn)行單因素方差分析，組間采用Duncan's 法進(jìn)行多重比較，隨后對飼糧能氮比進(jìn)行線性（Linear）和二次曲線（Quadratic）回歸分析。數(shù)據(jù)結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示，P<0.05表示差異顯著，P>0.05表示差異不顯著。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同能氮比全價(jià)顆粒飼糧對簡州大耳羊糞便排泄參數(shù)的影響

2.1.1 對糞便排泄參數(shù)的影響

如表2 所示，飼糧能氮比對試驗(yàn)羊干物質(zhì)采食量、糞便排泄量、尿液排泄量及單位代謝體質(zhì)量糞便日排泄參數(shù)均無顯著影響（PA>0.05），4組試驗(yàn)羊干物質(zhì)采食量平均為1.21 kg·d-1，糞便、尿液排泄量平均為1.25 kg·d-1和0.70 kg·d-1，糞便含水率平均為62.32%，單位代謝體質(zhì)量糞便和尿液日排泄量平均為29.49 g?kg-0.75·d-1和50.59 g?kg-0.75·d-1。隨著飼糧能氮比降低，糞便pH 呈線性增加（PL=0.004），且具有顯著的組間差異（PA=0.029）；單位代謝體質(zhì)量尿液排泄量呈線性增加（PL=0.046），從47.35 g?kg-0.75·d-1增加到59.57 g?kg-0.75·d-1，增加了25.81%。

表2 不同試驗(yàn)組簡州大耳羊糞便排泄參數(shù)Table 2 The fecal excretion parameters of Jianzhou Da′er goats in different groups

2.1.2 對氮排泄參數(shù)的影響

如表3 所示，不同能氮比飼糧對試驗(yàn)羊糞氮、氮排泄率、單位代謝體質(zhì)量糞氮日排泄參數(shù)無顯著影響（PA>0.05），糞氮日排泄量為7.26~8.23 g·d-1，氮排泄率為63.60%~68.55%。但是，隨著飼糧能氮比降低，氮的日攝入量、尿總氮排泄量、尿氨氮排泄量、日排總氮量、單位代謝體質(zhì)量尿氮和單位代謝體質(zhì)量總氮日排泄量均呈線性增加（PL<0.001），且具有顯著的組間差異（PA<0.05），相對于a 組，d 組分別增加了54.90%、152.03 %、605.66%、63.82%、147.50%、60.82%。

表3 不同試驗(yàn)組簡州大耳羊氮排泄參數(shù)Table 3 The nitrogen excretion parameters of Jianzhou Da′er goats in different groups

2.2 不同能氮比全價(jià)顆粒飼糧對簡州大耳羊糞便微生物區(qū)系的影響

2.2.1 糞便樣品16S rRNA 基因測序結(jié)果

4 組糞便32 個(gè)樣本中共獲得1 616 790 條優(yōu)質(zhì)細(xì)菌16S rRNA 基因序列，每個(gè)樣本平均產(chǎn)生55 751.38條，序列平均長度為371.8 bp，有效標(biāo)記（Effective Tags）中堿基質(zhì)量值大于20（測序錯(cuò)誤率小于1%）和30（測序錯(cuò)誤率小于0.1%）的堿基所占的百分比分別為98.16%和94.30%。

2.2.2 OTUs分析和物種注釋

所有樣品共注釋了41 個(gè)門、74 個(gè)綱、163 個(gè)目、234個(gè)科、419個(gè)屬和146個(gè)種。如圖1所示，4個(gè)組共聚類得到2 538 個(gè)OTU，a、b、c、d 組OTU 數(shù)分別為1 665、1 627、1 663、1 855 個(gè)，共用1 170 個(gè)OTU，占OTU總數(shù)的46.10%，獨(dú)有的OTU數(shù)分別為75、81、57、430 個(gè)，占OTU 總數(shù)的比例分別為2.96%、3.19%、2.25%、16.94%，表明a、b、c 組相似度較高，差異較小，d組與其他3組差異較大。

圖1 不同試驗(yàn)組糞便微生物Venn圖Figure 1 The venn diagram of fecal microorganisms in different groups

2.2.3 菌群α多樣性分析

由表4 可知，4 個(gè)組的覆蓋度均大于0.99，能準(zhǔn)確地反映試驗(yàn)羊糞便中細(xì)菌的組成。a、b、c組α多樣性差異不顯著，但隨著能氮比降低，Shannon 指數(shù)和Simpson指數(shù)均呈顯著下降趨勢（PL<0.05，PQ<0.05），d組的Simpson 指數(shù)顯著低于a、b 組和c 組（PA<0.05），Shannon指數(shù)顯著低于b組（PA<0.05）。

表4 不同試驗(yàn)組簡州大耳羊菌群多樣性指數(shù)Table 4 The microbial diversity index of Jianzhou Da′er goats in different groups

2.2.4 菌群β多樣性分析

主成分分析（PCA）如圖2 所示，主成分1 和主成分2 的貢獻(xiàn)值分別為13.15%和7.98%，a、b、c 3 組樣本差異較小，微生物群落結(jié)構(gòu)相似度較高，而d 組與其他3組距離較遠(yuǎn)，差異較大。

圖2 糞便微生物主成分分析Figure 2 The principal component analysis（PCA）of fecal microorganisms

2.2.5 糞便菌群在門和屬水平上的組成與相對豐度

如表5所示，在門水平上厚壁菌門（Firmicutes）和擬桿菌門（Bacteroidota）是優(yōu)勢菌門，兩個(gè)菌門占總細(xì)菌種類的80%左右。隨著飼糧能氮比降低，厚壁菌門的相對豐度先增加后降低（PQ=0.007），c組最高，但與a、b 組差異不顯著，d 組顯著低于前3 組（PA=0.003）；疣微菌門（Verrucomicrobiota）和放線菌門（Ac?tinobacteriota）相對豐度呈線性升高（PL<0.05），且d 組顯著高于前3組（PA<0.05）；其他菌群相對豐度沒有受到顯著影響（P>0.05）。

表5 糞便微生物門水平的相對豐度（%）Table 5 The relative abundance of fecal microflora at phylum level（%）

如表6 所示，在屬水平上，擬桿菌屬（Bacteroi?des）、瘤胃球菌科（UCG-005）、另枝菌屬（Alistipes）、理研菌科RC9（Rikenellaceae_RC9）、克里斯滕森菌科R7（Christensenellaceae_R-7）、普雷沃氏菌屬（UCG-002）和艾克曼菌屬（Akkermansia）等是各組糞便優(yōu)勢菌屬。隨著飼糧能氮比降低，艾克曼菌屬（PL=0.002）和擬桿菌屬（PL=0.021）的相對豐度呈線性增加，而且d組艾克曼菌屬相對豐度顯著高于前3組（PA=0.007）。毛螺菌科（Lachnospiraceae_AC2044_group）的相對豐度先增加后降低，呈顯著的二次曲線關(guān)系（PQ=0.042）。

表6 糞便微生物屬水平相對豐度（%）Table 6 The relative abundance of fecal microflora at genus level（%）

3 討論

3.1 不同能氮比全價(jià)顆粒飼糧對簡州大耳羊糞便及氮排泄的影響

與豬和雞的糞便相比，肉羊糞便呈顆粒狀，具有含水率較低及適宜的碳氮比等特點(diǎn)[16-17]，在糞肥還田利用中深受種植業(yè)主的喜愛，但由于缺少糞便排泄相關(guān)參數(shù)指導(dǎo)，糞肥資源化利用效率受到限制。因此，本研究獲取了飼糧不同能氮比條件下簡州大耳羊的糞便排泄參數(shù)，并探索其影響規(guī)律和機(jī)理。我國肉羊糞便排泄參數(shù)相關(guān)研究報(bào)道較少，李丹陽等[18]研究報(bào)道半放牧半舍飼貴州半細(xì)毛羊的糞便量、尿液量分別為0.97 kg·d-1·只-1和0.53 L·d-1·只-1，全舍飼湖羊分別為0.99 kg·d-1·只-1和0.56 L·d-1·只-1，略低于本研究結(jié)果。宋大利等[19]報(bào)道的羊糞便排泄量（1.9 kg·d-1）高于本研究，尿液排泄量（0.6 kg·d-1）略低于本研究。分析原因主要是因?yàn)闇y試羊的品種、飼養(yǎng)方式、飼糧形態(tài)都具有較大的差異。本研究結(jié)果表明全價(jià)顆粒飼糧能氮比對試驗(yàn)羊干物質(zhì)采食量、糞便和尿液排泄量均無顯著影響，原因是肉羊干物質(zhì)采食量與飼糧原料組成、形態(tài)、能量和纖維含量顯著相關(guān)[20]，本試驗(yàn)中飼糧原料組成、形態(tài)以及能量和纖維水平一致，因此4組試驗(yàn)羊干物質(zhì)采食量無顯著差異，而干物質(zhì)采食量顯著影響糞便排泄量[21-22]，因此，糞尿排泄量也無顯著差異，這與前人研究結(jié)果一致。糞便pH 不僅能反映腸道內(nèi)環(huán)境，而且是影響氨氣揮發(fā)的關(guān)鍵因素，一般呈中性或者弱堿性，pH 升高將增加氮的損失[23]。目前未見關(guān)于肉羊糞便pH 的報(bào)道，但有研究顯示生豬 糞 便pH 為6.42~7.64[24]，肉 雞 糞 便pH 為6.15~8.17[25]，肉牛糞便pH 為6.42~6.9[26]，均低于本研究結(jié)果。生豬和肉雞均采用全價(jià)精飼糧飼喂，而肉牛采用全混合日糧飼喂，精飼糧的占比較低，因此生豬和肉雞糞便pH 較肉牛更高，而本研究采用全價(jià)顆粒飼糧飼喂，且營養(yǎng)濃度按照肉羊飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)的最高生產(chǎn)性能（日增質(zhì)量200 g）進(jìn)行配方，營養(yǎng)密度較大，導(dǎo)致糞便中未消化的堿性物質(zhì)含量較高，而且飼糧能氮比降低，增加了飼糧氮的攝入，導(dǎo)致后腸含氮堿性物質(zhì)增加，進(jìn)而造成糞便pH增加。

本研究結(jié)果表明，飼糧能氮比降低顯著增加了尿氮的排泄，且呈現(xiàn)了顯著的線性相關(guān)性，但對糞氮排泄量沒有顯著影響。這與牛驍麟等[27]用蛋白水平分別為11.5%、14.0%和16.5%的飼糧飼喂32.25 kg左右湖羊的研究結(jié)果一致，同時(shí)，樊艷華等[28]和Marini等[29]也得出了相似的試驗(yàn)結(jié)果。糞氮排泄量差異不顯著是由于糞氮主要來源于未消化的日糧氮、未被消化的微生物氮和內(nèi)源氮，排泄量一般比較穩(wěn)定[30]；尿氮排泄與反芻動物特殊的消化功能有關(guān)，研究表明，反芻動物飼糧中的大部分養(yǎng)分在瘤胃被分解消化，飼糧蛋白質(zhì)被分解為肽、氨基酸和氨，一部分氨被瘤胃微生物利用合成微生物蛋白，另一部分則被瘤胃壁或后腸吸收，通過血液循環(huán)經(jīng)門靜脈進(jìn)入動物肝臟轉(zhuǎn)化為尿素，其中一部分被尿液排出體外，當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)不足時(shí)，部分尿素重新進(jìn)入血液循環(huán)到達(dá)唾液腺，隨唾液重新進(jìn)入瘤胃[2]。因此，隨著能氮比降低，飼糧氮濃度升高，多余的氮以尿素的形式通過尿液排出體外，導(dǎo)致尿液中的氮排泄量增加，而當(dāng)尿液中尿素排出體外遇到糞便尿素酶時(shí)會轉(zhuǎn)化為氨，導(dǎo)致尿總氮和氨氮的量顯著增加。而尿氨氮容易揮發(fā)，且具有刺激性氣味，尿氨氮排泄量的增加不但增加了氮的損失，還會導(dǎo)致圈舍內(nèi)NH3的濃度增加，影響動物健康。

3.2 不同能氮比全價(jià)顆粒飼糧對簡州大耳羊糞便微生物區(qū)系的影響

16S rRNA 高通量測序技術(shù)可以很好地揭示肉羊糞便微生物多樣性。Shannon 指數(shù)和Simpson 指數(shù)可反映菌群的多樣性，d 組的Simpson 指數(shù)最低，說明糞便菌群的多樣性和均勻度低于前3組，這與PCA 結(jié)果一致。本研究發(fā)現(xiàn)，擬桿菌門和厚壁菌門為試驗(yàn)羊主要優(yōu)勢菌門，這與魏子維等[31]對雷州山羊及潘鋒等[32]對肉牛糞便微生物的研究結(jié)果一致。本研究結(jié)果顯示，隨著飼糧能氮比降低，d 組的厚壁菌門相對豐度顯著降低。研究表明，厚壁菌門主要與碳水化合物和蛋白質(zhì)的吸收有關(guān)[33]，厚壁菌門相對豐度越高，可能越有利于飼糧蛋白質(zhì)的消化吸收，其相對豐度降低不利于蛋白質(zhì)的消化吸收。付敏等[3]的研究表明在飼糧能氮比為0.43 時(shí)，簡州大耳羊生長性能最佳，能氮比為0.35 時(shí)，生長性能下降。因此，飼糧能氮比可能會通過影響肉羊后腸菌群的相對豐度，進(jìn)而影響生長性能。與此同時(shí)，本試驗(yàn)結(jié)果顯示，當(dāng)飼糧能氮比為0.35 時(shí)，疣微菌門和放線菌門的相對豐度顯著增加，而疣微菌門具有誘導(dǎo)和調(diào)節(jié)免疫的能力[34]，放線菌主要通過產(chǎn)生多種抗生素消滅致病菌群來保護(hù)宿主，部分放線菌還能分泌蛋白酶等幫助宿主消化分解飼糧營養(yǎng)物質(zhì)[35]，由此推斷，在能氮比降低到0.35時(shí)，肉羊后腸可能存在潛在的健康問題，誘導(dǎo)了機(jī)體產(chǎn)生免疫反應(yīng)，同時(shí)分泌抗生素抵抗致病菌。研究表明，擬桿菌屬能產(chǎn)生纖維素酶，提高動物對飼糧的消化吸收[36]，在屬水平上，本研究最主要的優(yōu)勢菌是擬桿菌屬，說明后腸仍然具有較多的待消化養(yǎng)分，需要微生物分泌更多酶幫助消化。本試驗(yàn)中，飼糧能氮比降為0.35 時(shí)，艾克曼菌屬的相對豐度顯著提高，研究認(rèn)為艾克曼菌可以改善腸道屏障功能、增厚黏膜層，其數(shù)量的增加有助于緩解炎癥性腸病癥狀[37]，因此，飼糧能氮比過低可能增加了后腸的消化負(fù)擔(dān)，可能導(dǎo)致后腸黏膜炎癥。

4 結(jié)論

（1）飼糧能氮比對試驗(yàn)羊糞便和尿液排泄參數(shù)無顯著影響。

（2）隨著飼糧能氮比降低，糞便pH和尿氮排泄量顯著提高。

（3）飼糧能氮比降低到0.35 時(shí)，糞便菌群的多樣性和相對豐度受到顯著影響，糞便菌群的結(jié)構(gòu)發(fā)生改變，不利于動物對養(yǎng)分消化吸收，進(jìn)而影響動物腸道健康。