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      濃香型白酒發(fā)酵過程中酒醅微生物群落結(jié)構(gòu)解析及其與風味物質(zhì)的相關(guān)性

      2023-08-08 01:05:24宋建陽梁莉瑩岑定運武思雨郭書賢許彬王春艷
      食品研究與開發(fā) 2023年14期
      關(guān)鍵詞:己酸濃香型菌門

      宋建陽,梁莉瑩,岑定運,武思雨,郭書賢,許彬,王春艷*

      (1.南陽理工學院河南省工業(yè)微生物資源與發(fā)酵技術(shù)重點實驗室,河南 南陽 473004;2.南陽理工學院土木工程學院,河南 南陽 473004)

      白酒釀造過程實質(zhì)上是微生物繁殖和代謝的過程。濃香型白酒其豐富、獨特的口感正是來自于釀酒微生物群的發(fā)酵作用,例如真菌菌群是產(chǎn)酒精、產(chǎn)香的主要功能菌,也具有很高的糖化酶及酯化酶活力[1-2],這些微生物群在釀酒周期內(nèi)不斷動態(tài)變化,與整個釀酒過程中所形成的生存環(huán)境相適應(yīng),經(jīng)過相應(yīng)的釀造工藝產(chǎn)生了白酒的獨特口味[3-4]。

      目前,隨著宏基因組測序技術(shù)在傳統(tǒng)白酒發(fā)酵中的廣泛應(yīng)用,微生物群落結(jié)構(gòu)與白酒風味物質(zhì)的相關(guān)性研究成為熱點問題[5-7]。吳成等[8]研究醬香型白酒4 輪次堆積發(fā)酵過程風味物質(zhì)與微生物群落間的相互關(guān)系,發(fā)現(xiàn)酵母菌主要與醇類物質(zhì)呈正相關(guān)顯著,絲狀真菌和細菌主要與酸類和酯類物質(zhì)呈正相關(guān)顯著。劉凡等[9]研究發(fā)現(xiàn),洋河濃香型白酒發(fā)酵過程與主要有機酸合成相關(guān)的7 個菌屬微生物;蒙德俊等[10]以醬香型白酒7 輪次發(fā)酵酒醅樣品為研究對象,分析發(fā)現(xiàn)了畢赤酵母屬和酵母菌屬與乳酸呈顯著相關(guān)。王鵬等[11]采用微生物群落與揮發(fā)性化合物輪廓關(guān)聯(lián)分析獲得功能相關(guān)的微生物群,又通過共現(xiàn)性網(wǎng)絡(luò)分析獲得共現(xiàn)微生物群,最終確定了白酒發(fā)酵過程中的核心微生物群。

      本研究以濃香型白酒不同發(fā)酵周期的酒醅樣品為研究對象,對其微生物群落結(jié)構(gòu)及其風味物質(zhì)進行解析,并對兩者之間的相關(guān)性進行預測,嘗試了解濃香型白酒發(fā)酵過程中的主要功能微生物群,為白酒生產(chǎn)的定向調(diào)控提供參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      酒醅樣品來自河南宋河酒業(yè)有限公司16 年窖池。分別采集發(fā)酵第0、3、6、9、15、21、27、33、48、60 天的窖池中心上、中、下3 層樣品,放入無菌采樣袋中,充分混勻后低溫運回實驗室,-80 ℃保存。

      1.2 主要試劑

      4-辛醇(色譜純):美國Sigma 公司;NaCl(分析純):天津市福晨化學試劑廠;E.Z.N.ATM Mag-Bind 土壤DNA 提取試劑盒:美國OMEGA 公司;Agencourt AMPure XP 核酸純化試劑盒:美國Beckman 公司;Qubit3.0 DNA 檢測試劑盒:美國Life 公司。

      1.3 試驗儀器與設(shè)備

      7890B-5975C 氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀、Agilent7697A頂空進樣系統(tǒng)、HP-INNOWAX 色譜柱(60 m×250 μm×0.5 μm):美國安捷倫科技有限公司;EC3 凝膠成像系統(tǒng):美國UVP 公司;T100 Thermal Cycler PCR 儀:美國Bio-RAD 公司;Illumina Miseq PE250 高通量測序儀:美國Illumina 公司。

      1.4 方法

      1.4.1 酒醅中揮發(fā)性風味物質(zhì)的測定

      采用靜態(tài)頂空氣相色譜-質(zhì)譜法(static headspace gas chromatography-mass spectrometry,SHSGC-MS)對酒醅中揮發(fā)性風味物質(zhì)進行分析。取2.0 g 酒醅樣品加入8 mL 超純水中,4 ℃過夜,冰浴超聲30 min 后,于4 ℃、1 000 r/min 離心20 min,將8 mL 已離心的酒醅提取液加入到20 mL 頂空瓶中,再加入3.0 g NaCl 和質(zhì)量濃度為125 mg/L 的內(nèi)標物4-辛醇25 μL。采用頂空進樣器處理樣品[12]。

      GC 條件:HP-INNOWAX 色譜柱;載氣為氦氣,流速1 mL/min;進樣口溫度250 ℃;升溫程序為50 ℃保持2 min,以3 ℃/min 升溫至80 ℃,保持2 min,以5 ℃/min 升溫至170 ℃,以10 ℃/min 升溫至240 ℃,保持10 min。

      MS 條件:電子電離(electronic ionization,EI);電子能量70 eV;離子源溫度230 ℃;傳輸線溫度250 ℃;質(zhì)量掃描范圍m/z 30~500[13]。

      通過質(zhì)譜解吸以及與NIST 05 a.L 標準譜庫比對,進行定性分析,采用峰面積歸一化法計算各組分的相對含量。

      1.4.2 酒醅微生物群落結(jié)構(gòu)分析

      采用DNA 提取試劑盒對酒醅樣品進行微生物基因組DNA 提取,具體步驟參見試劑盒說明,采用1%瓊脂糖凝膠電泳對所提樣本DNA 進行完整性檢測。

      以基因組DNA 為模板,采用B341F 和B785R 引物[14]對酒醅樣品中細菌16S rDNA 的V3~V4 區(qū)進行聚合酶鏈式反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴增,采用ITS1FI2 和ITS2 引物[15]對酒醅樣品中真菌的內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(internal transcribed spacer,ITS)序列進行PCR 擴增。PCR 擴增體系:10×PCR buffer 5 μL,dNTPs 2 μL,DNA 模板10 ng,正反向引物各0.5 μmol/L,Taq DNA 聚合酶0.05 U,用雙蒸水補充至50 μL。

      細菌PCR 擴增條件:95 ℃預變性3 min;95 ℃變性30 s,45 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共5 個循環(huán);然后95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共20 個循環(huán);最后72 ℃延伸5 min[14]。

      真菌PCR 擴增條件:94 ℃預變性3 min;94 ℃變性30 s,45 ℃退火20 s,65 ℃延伸30 s,共計5 個循環(huán);然后94 ℃變性20 s,45 ℃退火20 s,65 ℃延伸30 s,共計20 個循環(huán);最后72 ℃延伸5 min[15]。

      PCR 產(chǎn)物切膠純化后進行精準定量,依托生工生物工程(上海)股份有限公司進行Illumina MiSeq 高通量測序。

      1.4.3 高通量數(shù)據(jù)處理

      采用Cutadapt(v1.9.1)、Prinseq(v0.20.4)及Flash(1.2.3)軟件對高通量測序序列進行質(zhì)控,包括序列拼接、去掉含有N 的序列、去除引物和接頭、去除質(zhì)量值<20 的堿基及長度<200 bp 的序列及去除嵌合體。

      經(jīng)過質(zhì)控的序列在97%相似性水平下進行操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU)聚類分析。利用Silva 數(shù)據(jù)庫,采用Mothur(1.30.1)軟件在不同物種分類水平下統(tǒng)計每個樣本的群落組成,同時計算各個樣品的覆蓋率以及微生物α 多樣性指數(shù),包括辛普森(Simpson)指數(shù)、香農(nóng)(Shannon)指數(shù)、ACE 和Chao1指數(shù)。

      1.4.4 酒醅揮發(fā)性風味物質(zhì)與微生物相關(guān)性分析

      本研究選取酒醅樣品微生物高通量測序結(jié)果中相對豐度排序在前20 的細菌屬和前20 的真菌屬信息與風味物質(zhì)進行相關(guān)性分析。首先使用RStudio 中的psych 包計算微生物與代謝物之間的spearman 相關(guān)系數(shù)(r),以r>0.5 且p<0.05 為閾值找出可視化對象,然后選用Cytoscape 3.6.1 對微生物和代謝物之間的相互作用關(guān)系進行可視化,表征微生物對風味物質(zhì)的貢獻[11]。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 揮發(fā)性風味成分的測定結(jié)果

      利用GC-MS 方法對濃香型白酒酒醅進行主要揮發(fā)性風味物質(zhì)檢測,結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),酒醅中主要風味成分為酯、醇、酚、烷、酸、烯類等化合物,其中酯類136種、醇類39 種、酸類34 種、酚類12 種、烯烴類8 種、烷類20 種、醛類6 種、酮類9 種、醚類4 種。

      白酒發(fā)酵過程酒醅樣品中主要酯含量變化見圖1。

      圖1 白酒發(fā)酵過程酒醅樣品中主要酯含量變化Fig.1 Change of main ester content in fermented grains during Baijiu fermentation

      如圖1 所示,本次采集的酒醅樣品中,檢測到豐度較高(平均濃度>0.1 μg/g)的酯類物質(zhì)有10 種,分別是己酸乙酯、乙酸乙酯、乳酸乙酯、丁酸乙酯、己酸己酯、己酸丁酯、庚酸乙酯、乙酸己酯、戊酸乙酯和辛酸乙酯。其中豐度最高的為己酸乙酯,在整個發(fā)酵周期內(nèi),己酸乙酯平均檢測值到22.45 μg/g,是濃香型白酒的主體香成分,對濃香型白酒風格的形成有重要作用[16-17],其次為辛酸乙酯、乙酸乙酯、乳酸乙酯以及己酸己酯。從發(fā)酵開始,隨著乙醇和多種有機酸的產(chǎn)生,酯類合成開始,發(fā)酵至第15 天,酯類總含量達到最高值,發(fā)酵末趨于穩(wěn)定。

      白酒發(fā)酵過程酒醅樣品中主要酸含量變化見圖2。

      圖2 白酒發(fā)酵過程酒醅樣品中主要酸含量變化Fig.2 Change of main acid content in fermented grains during Baijiu fermentation

      如圖2 所示,酒醅樣品中檢測到的有機酸主要以己酸、乙酸、丁酸、正戊酸和辛酸為主,其總和占總有機酸含量的92.4%,是酯類合成的主要前體物質(zhì)。其中己酸豐度最高,在整個發(fā)酵周期內(nèi),每克酒醅樣品中平均檢測到3.72 μg 己酸。

      2.2 酒醅微生物α 多樣性分析

      采用Illumina Miseq 測序平臺得到白酒酒醅樣品細菌有效序列數(shù)42 937~58 935,97%相似水平下的OTU數(shù)目為981~2 390;真菌有效序列數(shù)為49 546~76 613,OTU 數(shù)目為457~759。酒醅樣品微生物α 多樣性結(jié)果見表1。

      表1 酒醅樣品中細菌和真菌α 多樣性指數(shù)Table 1 The α diversity of bacteria and fungi in fermented grains

      豐富度指數(shù)Chao1 和ACE 越大,表明群落物種豐富度越高;多樣性指數(shù)Shannon 越大或Simpson 越小,表明群落物種的多樣性越高。由表1 中細菌α 多樣性指數(shù)結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),在發(fā)酵初期(3~6 d),酒醅樣品中Simpson 指數(shù)出現(xiàn)最小值,Shannon 指數(shù)、ACE 和Chao1 指數(shù)均出現(xiàn)最大值,說明在發(fā)酵初期酒醅中微生物菌群的豐富度和多樣性最高,推測可能是由于在發(fā)酵初期底物充足,來自酒曲、窖池中的多種微生物活躍,呈現(xiàn)了較為豐富的多樣性。隨后多樣性指數(shù)及豐富度指數(shù)均呈現(xiàn)不同程度下降,隨著發(fā)酵的進行,分解原料產(chǎn)生的有機酸、乙醇等物質(zhì)過多,使一部分微生物不能適應(yīng)酸度過高的發(fā)酵環(huán)境,生長受到抑制,到達發(fā)酵后期,微生物的多樣性及豐富度均達到最低。真菌α 多樣性指數(shù)結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),酒醅樣品在發(fā)酵第3 天,物種豐富度最高,在發(fā)酵第33 天,物種多樣性呈現(xiàn)最大值。細菌的豐富度和多樣性高于真菌,本研究結(jié)果與其他報道基本一致[9,18]。

      2.3 酒醅微生物群落結(jié)構(gòu)分析

      基于門水平酒醅中細菌群落結(jié)構(gòu)分析見圖3。

      圖3 基于門水平酒醅中細菌群落結(jié)構(gòu)分析Fig.3 Analysis of bacterial community structure of fermented grains based on phylum level

      如圖3 所示,基于細菌OTU 注釋分析,酒醅樣品中共得到16 個門,優(yōu)勢菌門(任一樣品相對豐度≥1%)7 個,非優(yōu)勢菌門和未注釋(unclassified)門的OTU 歸為其它。其中所有樣品中平均相對含量大于1%的有厚壁菌門(Firmicutes)、菌擬桿菌門(Bacteroidetes)、變形菌門(Proteobacteria)、綠彎菌門(Chloroflexi)和放線菌門(Actinobacteria)。整個發(fā)酵過程中厚壁菌門是豐度最高的優(yōu)勢門,其相對豐度為27.54%~93.65%。菌擬桿菌門、變形菌門和綠彎菌門在發(fā)酵前期豐度較高,隨著發(fā)酵的進行相對豐度呈波動式降低,至發(fā)酵第60 天相對豐度均低于1%。

      基于門水平酒醅中真菌群落結(jié)構(gòu)分析見圖4。

      圖4 基于門水平酒醅中真菌群落結(jié)構(gòu)分析Fig.4 Analysis of fungi community structure of fermented grains based on phylum level

      如圖4 所示,基于真菌OTU 注釋分析,酒醅樣品共得到8 個真菌門,優(yōu)勢菌門3 個,其中所有樣品中平均相對含量大于1%的有子囊菌門(Ascomycota)和毛霉門(Mucoromycota)。整個發(fā)酵過程中子囊菌門是豐度最高的優(yōu)勢門,其相對豐度在入料樣品(0 d)中達到91.09%,最后緩慢降低,發(fā)酵結(jié)束穩(wěn)定在48.41%。高含量的Ascomycota 對驅(qū)動酒醅活性微生物群落變化起重要作用[18]。

      基于屬水平酒醅中細菌群落結(jié)構(gòu)分析見圖5。

      圖5 基于屬水平酒醅中細菌群落結(jié)構(gòu)分析Fig.5 Analysis of bacterial community structure of fermented grains based on genus level

      如圖5 所示,細菌屬水平上,酒醅樣品共檢測到169 種,優(yōu)勢菌屬(任一樣品相對豐度≥1%)有29 種。其中所有樣品中平均相對含量大于1%的有乳桿菌屬(Lactobacillus)、蚤蠅屬(Levilinea)、普雷沃菌屬(Prevotella)、擬桿菌屬(Bacteroides)、牦牛瘤胃菌(Proteiniclasticum)和Macellibacteroides。未分類菌(unclassified)和未注釋到屬的未知菌在發(fā)酵過程中所占比例較高(16.82%~84.61%),表明白酒發(fā)酵過程中微生物種屬復雜。

      基于屬水平酒醅中真菌群落結(jié)構(gòu)分析見圖6。

      圖6 基于屬水平酒醅中真菌群落結(jié)構(gòu)分析Fig.6 Analysis of fungi community structure of fermented grains based on genus level

      如圖6 所示,酒醅樣品檢測到真菌屬43 種,優(yōu)勢菌屬有15 種。其中所有樣品中平均相對含量大于1%的有酵母菌目的未分類屬(unclassified Saccharomycetales)、嗜熱真菌屬(Thermomyces)、曲霉屬(Aspergillus)、Naumovozyma、假絲酵母屬(Candida)、酵母屬(Saccharomyces)、青霉菌屬(Penicillium)和鐮刀霉(Fusarium),這與我國其它濃香型白酒產(chǎn)區(qū)相關(guān)研究中優(yōu)勢屬種類一致性較高[9,19]。

      2.4 微生物與風味物質(zhì)的相關(guān)性分析

      酒醅樣品微生物與主要風味物質(zhì)的相關(guān)性分析如圖7 所示。

      圖7 酒醅樣品主要微生物與風味物質(zhì)相關(guān)性分析Fig.7 Correlation network between main microbial genera and volatile compounds

      如圖7 所示,相關(guān)性分析中共有238 個有效連接點,其中真菌Thermomyces、Naumovozyma 和Saccharomyces 是連接度最大的3 個真菌屬(26,20,17),細菌Lactobacillus、醋酸桿菌(Acetobacte)和梭狀芽孢桿菌XlVa(Clostridium XlVa)是連接度最大的3 個細菌屬(18,10,10)。濃香型白酒四大酯類物質(zhì)分別為己酸乙酯、乳酸乙酯、丁酸乙酯和乙酸乙酯,相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)Naumovozyma、Aspergillus、Thermomyces、Saccharomyces和Candida 與己酸乙酯(V24)具有較強相關(guān)性;擬桿菌屬(Bacteroides)和Lactobacillus 與乙酸乙酯(V5)具有較強相關(guān)性;Aspergillus 與丁酸乙酯(V4)強相關(guān);Naumovozyma、Thermomyces、Fusarium、根毛霉屬(Rhizomucor)、孢圓酵母(Torulaspora)、Acetobacter 和梭狀芽孢桿菌IV(Clostridium IV)與乳酸乙酯(V16)具有較強相關(guān)性。Naumovozyma、Thermomyces、Saccharomyces、Candida 和Lactobacillus 與醇類物質(zhì)有關(guān)聯(lián),Lactobacillus和Thermomyces 與酸類物質(zhì)呈正相關(guān)。

      綜上,Spearman 相關(guān)性結(jié)果顯示,在濃香型白酒發(fā)酵過程中,Thermomyces、Naumovozyma、Saccharomyces、Lactobacillus、Acetobacte、Clostridium、Candida和Aspergillus 對酯、醇等主要風味物質(zhì)的產(chǎn)生具有顯著貢獻作用。Saccharomyces 和Lactobacillus 同樣是劉凡等[9]和王鵬等[11]的研究中與濃香型白酒主要風味物質(zhì)相關(guān)的核心和關(guān)鍵酒醅微生物。

      3 結(jié)論

      采用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法和高通量測序技術(shù)檢測濃香型白酒連續(xù)發(fā)酵的酒醅樣品中揮發(fā)性風味物質(zhì)變化和微生物群落結(jié)構(gòu)組成。結(jié)果顯示,發(fā)酵過程中共檢測到揮發(fā)性風味成分268 種,其中酯類136 種、醇類39 種、酸類34 種、酚類12 種、烯烴類8 種、烷類20 種、醛類6 種、酮類9 種、醚類4 種。己酸乙酯是豐度最高的酯類物質(zhì),構(gòu)成了濃香型白酒的主體香成分。高通量測序結(jié)果結(jié)果表明,發(fā)酵過程中酒醅樣品細菌的豐富度和多樣性高于真菌,厚壁菌門(Firmicutes)和子囊菌門(Ascomycota)分別是豐度最高的優(yōu)勢細菌門和真菌門。平均相對豐度大于1%的優(yōu)勢細菌屬有乳桿菌屬(Lactobacillus)、蚤蠅屬(Levilinea)和普雷沃菌屬(Prevotella)等;優(yōu)勢真菌屬有酵母菌目的未分類屬(unclassified Saccharomycetales)、嗜熱真菌屬(Thermomyces)和曲霉屬(Aspergillus)等。主要微生物與揮發(fā)性風味物質(zhì)的相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)連接圖顯示,Thermomyces、Naumovozyma、酵母屬(Saccharomyces)、Lactobacillus、醋酸桿菌(Acetobacte)、梭狀芽孢桿菌屬(Clostridium)、假絲酵母屬(Candida)和Aspergillus 是濃香型白酒揮發(fā)性風味物質(zhì)產(chǎn)生的主要貢獻微生物。

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