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    甘藍型油菜響應干旱脅迫的轉(zhuǎn)錄組分析

    2023-06-30 12:00:49張蕾阮羽萱潘嬌陳敏劉博宇阮穎黃勇
    江蘇農(nóng)業(yè)科學 2023年5期
    關(guān)鍵詞:差異表達基因干旱脅迫

    張蕾 阮羽萱 潘嬌 陳敏 劉博宇 阮穎 黃勇

    摘要:甘藍型油菜(Brassica napus L.)是我國主要油料作物之一,為國家糧油安全提供了重要保障。干旱嚴重限制了油菜種植規(guī)模擴大、產(chǎn)量與品質(zhì)提升。為挖掘甘藍型油菜抗旱的關(guān)鍵基因,闡明油菜耐旱機制,本研究以甘藍型油菜湘油15為對象,通過實驗室模擬干旱處理后的葉片為材料進行轉(zhuǎn)錄組測序(RNA-Seq)、生物信息分析并 qRT-PCR 驗證。發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄組樣本平均Clean baseas約為9.6 G,且各樣品堿基百分比(Q30)大于93.21%,比對到參考基因組上的Reads在89%以上。干旱處理4 h后,湘油15出現(xiàn)了440個差異表達基因(DEGs),其中148個基因上調(diào),292個基因下調(diào)。隨機選取10個基因(上調(diào)與下調(diào)各5個)進行qRT-PCR驗證,其中9個基因的qRT-PCR結(jié)果與 RNA-Seq結(jié)果相符,僅1個基因表達趨勢相反,相似度可達90%,證實轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果的可靠性。結(jié)果表明甘藍型油菜湘油15主要通過光合作用、碳代謝和滲透調(diào)節(jié)等途徑調(diào)節(jié)抗旱能力,為進一步闡明油菜耐旱機制奠定了基礎。

    關(guān)鍵詞:甘藍型油菜;干旱脅迫;轉(zhuǎn)錄組分析;差異表達基因

    中圖分類號:S634.301文獻標志碼:A

    文章編號:1002-1302(2023)05-0051-05

    干旱是全球發(fā)生頻率最高、影響范圍最廣、對國民經(jīng)濟造成巨大損失的自然災害[1-2]。油菜是我國種植面積最廣、產(chǎn)量最高的油料作物之一[3],其中甘藍型油菜是廣泛種植于長江中下游區(qū)域的油菜品種,但其整個生長期對水的依賴性較強,耐旱性較差。干旱極大地影響了油菜的發(fā)育、產(chǎn)量和品質(zhì),嚴重威脅人類的糧油安全[4]。

    當遭受干旱脅迫時,植物在一定程度上能夠通過自身調(diào)節(jié)適應環(huán)境的變化。氣孔是植物散失水分的主要途徑,當植物處于干旱脅迫下,將調(diào)控葉片氣孔閉合以降低蒸騰作用,從而減少植物體內(nèi)水分流失,進而影響光合作用與碳代謝[5]。此外,植物細胞中的一些離子和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)將累積以維持細胞內(nèi)離子穩(wěn)態(tài)和滲透調(diào)節(jié)平衡,從而使自身保存水分的能力保持在較高的水平[6]。當植物處于逆境脅迫下,細胞代謝發(fā)生紊亂,大量積累的活性氧破壞了生物膜的結(jié)構(gòu),影響其功能的正常發(fā)揮,嚴重時危害細胞生長,導致植株死亡[7]。為減輕活性氧積累帶來的影響,作物進化出復雜的酶和抗氧化劑系統(tǒng),如低分子抗氧化劑和活性氧清除酶[8]。

    轉(zhuǎn)錄水平上的調(diào)控是生物基因表達的主要調(diào)控方式之一,是對生物進行研究的關(guān)鍵組成部分[9]。高通量測序技術(shù)的出現(xiàn),使研究者能夠更有效地研究不同處理條件或不同發(fā)育過程中基因的差異表達譜,篩選新的功能基因[10-12]。在本研究中,用20%聚乙二醇(PEG-6000)模擬干旱脅迫處理甘藍型油菜湘油15,借助高通量測序技術(shù)進行分析,篩選干旱處理誘導表達基因信息,初步挖掘耐旱基因和代謝通路,構(gòu)建抗旱性相關(guān)的調(diào)控網(wǎng)絡。為甘藍型油菜耐旱機制提供理論依據(jù),為培育耐旱品種提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 植物材料和干旱處理

    植物材料為甘藍型油菜湘油15,先將其種子進行表面消毒,后播種于含有霍格蘭營養(yǎng)液的蛭石中,溫室條件下正常生長45 d(25 ℃,16 h/8 h 光照/黑暗,光照強度為10 000 lx,濕度為40%~60%),長出3~4片真葉后小心洗去蛭石,置于霍格蘭營養(yǎng)液中并充氣,光照培養(yǎng)箱中預培養(yǎng)3 d,根據(jù)營養(yǎng)液體積,加入20%聚乙二醇(PEG-6000)模擬干旱脅迫,處理時間為4 h。選取生長狀態(tài)基本一致的5株植株進行混合取樣,處理前的樣品編號為C1、C2、C3,處理后的樣品編號為T1、T2、T3。樣本于液氮中速凍,保存于-80 ℃中,用于后續(xù)試驗。

    1.2 試驗時間與地點

    2021年7月21日于湖南省作物表觀遺傳與發(fā)育重點實驗室進行。

    1.3 轉(zhuǎn)錄組測序

    樣品由百邁克生物科技(長沙)有限公司進行RNA提取、質(zhì)量分析、cDNA文庫構(gòu)建和轉(zhuǎn)錄組測序分析[13]。

    1.4 差異表達基因的篩選和分析

    首先對樣品中Mapped Reads數(shù)目與轉(zhuǎn)錄本長度歸一化,以FPKM方法作為檢測轉(zhuǎn)錄本或基因表達水平的指標[14]。時間和空間特異性是基因表達的2個特性,當處于不同的條件下,表達水平具有顯著差異的基因或轉(zhuǎn)錄本稱為差異表達基因(DEGs)。根據(jù)不同樣品間的相對表達水平,可將DEGs劃分為下調(diào)基因和上調(diào)基因。利用R語言 DESeq2 程序包對過濾后的數(shù)據(jù)進行篩選來獲得DEGs,篩選標準為:差異倍數(shù)(fold change,簡稱FC)大于2,即|log2FC|≥1;錯誤發(fā)現(xiàn)率(false discovery rate,簡稱FDR)小于0.01[15],F(xiàn)DR是通過對差異顯著性P值(p-value)進行校正得到的,即p-value<0.01。使用 Blast2GO軟件對差異基因進行基因功能注釋。

    1.5 通過qRT-PCR驗證差異表達

    隨機選取10個DEGs(上、下調(diào)基因各5個)進行實時熒光定量分析(qRT-PCR)驗證轉(zhuǎn)錄組測序中差異基因表達的準確性。通過Trizol法提取轉(zhuǎn)錄組測序備份樣品的總RNA,每樣品取1 ng RNA通過擎科生物cDNA合成試劑盒反轉(zhuǎn)錄,最終cDNA體積為20 μL。qPCR引物設計見表1。qRT-PCR使用Applied Biosystems 7300實時PCR系統(tǒng),設置3次技術(shù)重復,使用2-ΔΔCT法計算相對定量數(shù)據(jù)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 轉(zhuǎn)錄組測序質(zhì)量分析

    轉(zhuǎn)錄組測序分析對照組和干旱處理試驗組各3個樣本。高通量測序后,為保證數(shù)據(jù)分析的質(zhì)量,對原始數(shù)據(jù)進行過濾得到clean reads。整體上分析,干旱處理組和對照組的3個重復平均reads數(shù)分別約為34 094 369、30 190 757,樣本平均堿基數(shù)約為9.6 G,且各樣品Q30堿基百分比在93.21%及以上,GC含量為47.57%~48.8%。使用 HISAT2比對系統(tǒng)分析得到,各樣品reads與參考基因組的比對效率在89.18%~91.65%(表2)。整體測序數(shù)據(jù)質(zhì)量良好,可用于后續(xù)分析。

    2.2 差異表達基因分析

    利用DESeq2對甘藍型油菜各樣本的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進行分析,以P值<0.01且差異倍數(shù)|log2FC|≥1作為顯著差異表達基因的篩選條件。從圖1可知,對照組和試驗組(C vs T)中鑒定到DEGs共有440個,其中148個DEGs表達上調(diào),292個DEGs表達下調(diào)。

    2.3 差異表達基因GO分析

    以P≤0.01為標準將差異表達基因進行GO注釋。根據(jù)差異基因?qū)纳镞^程、分子功能和細胞組分的不同,分別進行 GO 富集分析。數(shù)據(jù)結(jié)果統(tǒng)計發(fā)現(xiàn),生物過程主要集中在韌皮部蔗糖的裝載、

    應對鎘離子、磷酸戊糖分流、糖酵解、葉綠體移動等(圖2-A);分子功能主要集中在果糖二磷酸醛縮酶活性、磷酸核酮糖激酶活性、吡哆醛磷酸的結(jié)合等(圖2-B);細胞組分主要集中在胞質(zhì)核糖體、質(zhì)膜、質(zhì)外體、葉綠體被膜等(圖2-C)。結(jié)果表明,甘藍型油菜在干旱脅迫下的差異表達基因主要與植物生長發(fā)育如光合作用和糖代謝過程有關(guān)。甘藍型油菜可以通過體內(nèi)細胞全方位的協(xié)調(diào)作用來減少外部惡劣環(huán)境對植物體所造成的傷害,同時調(diào)節(jié)內(nèi)部代謝活動以保證植物的基本生長。

    2.4 差異表達基因KEGG分析

    為分析在干旱脅迫下甘藍型油菜發(fā)育過程中體內(nèi)代謝途徑的變化,對差異基因進行 KEGG 分類統(tǒng)計(P<0.01)。這些差異基因主要富集通路包括碳代謝、乙醛酸和二羧酸代謝、氨基酸生物合成和代謝、磷酸戊糖途徑(圖3)。代謝途徑分析表明,干旱脅迫對甘藍型油菜的碳代謝、氨基酸代謝有影響。

    2.5 差異表達基因的qRT-PCR驗證

    隨機選取上調(diào)與下調(diào)各5個差異表達基因驗證轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果的可靠性,通過qRT-PCR驗證干旱處理前后的表達水平,將所選基因的相對表達與RNA-seq分析的相對表達進行比較,結(jié)果表明,qRT-PCR結(jié)果的相對趨勢與RNA-seq數(shù)據(jù)基本一致,證明本研究RNA-seq結(jié)果的可靠性(圖4)。

    3 討論與結(jié)論

    光合作用直接影響作物生長發(fā)育及產(chǎn)量,干旱環(huán)境中光合作用強度是衡量作物抗旱能力的重要依據(jù)[16-17]。筆者發(fā)現(xiàn),差異表達基因GO和KEGG注釋到的結(jié)果與光合作用、碳代謝、滲透調(diào)節(jié)有關(guān),研究結(jié)果與前人在不同物種的發(fā)現(xiàn)較為一致。研究發(fā)現(xiàn),棉花[18-19]和蘇丹草[20]干旱轉(zhuǎn)錄組的KEGG代謝通路顯著富集于光合作用中。對梭梭[21]和甘藍型油菜[22]的干旱轉(zhuǎn)錄組分析表明,其KEGG富集于碳代謝等過程。碳水化合物可以為逆境下的植物提供基本能量以維持正常生命活動,同時還可以作為體內(nèi)信號分子調(diào)節(jié)一系列代謝反應以適應不利環(huán)境[23]。植物受到水分脅迫時,滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)會改變植物的物質(zhì)代謝過程,一些大分子物質(zhì)如蛋白質(zhì)、淀粉等會分解成小分子有機物如可溶性糖和氨基酸等[24],它們能作為滲透調(diào)節(jié)因子保持植物體內(nèi)滲透壓的平衡,保護逆境環(huán)境中的植物細胞。對干旱脅迫棉花的轉(zhuǎn)錄組分析顯示,差異表達基因顯著富集在滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)上[13]。

    在干旱脅迫期間,為通過調(diào)節(jié)細胞過程在干旱條件下生存,植物中的基因表達發(fā)生了顯著變化[25]。通過差異基因表達方法闡明植物的耐旱性,為確定可能的耐旱機制提供了有價值的信息。對低溫脅迫下云霧貢茶進行轉(zhuǎn)錄組分析,篩選并鑒定了差異基因CsPPO具有提高植物耐寒性的功能[26]。對鹽堿脅迫下的紫花苜蓿轉(zhuǎn)錄組分析篩選到差異基因MsNAC47,對其功能研究發(fā)現(xiàn)MsNAC47通過調(diào)控鈣離子的轉(zhuǎn)運使植物抵御鹽堿脅迫[27]。在本研究中,PEG-6000模擬干旱處理前后湘油15共有440個DEGs,其中148個表達上調(diào),292個表達下調(diào), 并隨機對其中10個DEGs進行qRT-PCR進行驗證。

    雖然結(jié)果與RNA-seq檢測的基因表達量上調(diào)或下調(diào)的倍數(shù)存在差異,但這兩者的趨勢基本一致,表明轉(zhuǎn)錄組測序富集到DEGs數(shù)據(jù)是準確的,推測此DEGs對于甘藍型油菜抗旱有調(diào)控作用,可以進行基因克隆與功能驗證等深入研究。

    項目有效地篩選了甘藍型油菜湘油15干旱脅迫響應基因,這些基因主要調(diào)控光合作用、碳代謝和滲透調(diào)節(jié)等過程,研究結(jié)果為闡明甘藍型油菜的耐旱機制提供了參考。

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    收稿日期:2022-06-21

    基金項目:國家自然科學基金面上項目(編號:31971834);湖南省教育廳優(yōu)秀青年項目(編號:19B266)。

    作者簡介:張 蕾(1998—),女,湖南衡陽人,碩士研究生,從事植物分子生物學研究。E-mail:zl8398@163.com。

    通信作者:黃 勇,博士,教授,從事分子生物學研究。E-mail:yonghuang@hunau.edu.cn。

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