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    光譜法研究Zn2+與 TEVp 之間的相互作用

    2023-06-15 00:49:06朱國飛余素鵬
    貴州農(nóng)機化 2023年2期
    關(guān)鍵詞:結(jié)構(gòu)檢測

    朱國飛,余 凱,夏 杰,余素鵬,周 安,馬 超

    (貴州理工學(xué)院食品藥品制造工程學(xué)院,貴州 貴陽 550003)

    0 引言

    煙草蝕紋病毒蛋白酶(TEVp)是一種重組C型半胱氨酸蛋白酶,來源于煙草蝕紋病毒(TEV)Nla,含氨基酸 242 個,分子量 27 kDa。TEVp 較易在工程菌中進行有效表達,反應(yīng)條件相對溫和,能夠特異性識別EXXYXQ(G/S)七氨基酸序列,因此是去除重組蛋白融合標簽的重要蛋白酶之一[1-4]。為進一步了解應(yīng)用環(huán)境對TEVp 結(jié)構(gòu)和功能的影響,在前期 Hg2+、Co2+兩種金屬離子與 TEVp 相互作用研究的基礎(chǔ)上[5-6],本實驗采用紫外光譜、內(nèi)源熒光光譜、圓二色譜等多種光譜技術(shù),探究 Zn2+與 TEVp 相互作用具體情況,通過研究金屬離子對 TEVp 結(jié)構(gòu)與功能的影響,有助于加深對 TEVp 催化機制的認識,為 TEVp 的工程化改造及應(yīng)用提供依據(jù)和幫助。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    TEVp(純度≥95%) 本實驗室純化所得;氯化鋅 分析純;磷酸鹽 分析純。

    PHS-4C+ 型pH計(成都方舟科技有限責任公司);紫外可見分光光度計UV-5500(上海元析儀器有限公司);Hitachi-F4600 型熒光分光光度計(日本日立公司);J-815 型圓二色譜儀(日本JASCO)。

    TEVp溶液:2×10-6和15×10-6mol/L(50×10-3mol/L的PBS緩沖液,pH=7.4(最適pH)),待用。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 紫外可見光譜檢測

    向石英比色杯中加入3 mL的TEVp 溶液(2×10-6mol/ L),再依次定量添加Zn2+溶液,在維持總體積幾乎不變前提下使Zn2+的終作用濃度為0~10×10-6mol/L,每次加入混勻平衡10 min。常溫掃描200~700 nm。

    1.2.2 熒光光譜檢測

    樣品處理同紫外可見光譜(1.2.1)。檢測參數(shù):激發(fā)電壓=400 V,激發(fā)狹縫= 5 nm,發(fā)射狹縫=5 nm,分別在293、298和303 K三個恒溫條件檢測。內(nèi)源熒光光譜:激發(fā)波長為278 nm和295 nm,掃描范圍設(shè)置為300~450 nm。同步熒光光譜:檢測波長差Δλ(Δλ= 激發(fā)光波長 - 發(fā)射光波長)分別為15 nm和 60 nm時的同步熒光光譜,檢測范圍設(shè)置為250~350 nm。三維熒光光譜:激發(fā)間隔 = 5 nm,激發(fā)波長設(shè)置為200~350 nm,發(fā)射波長設(shè)置為250~460 nm。

    1.2.3 圓二色譜檢測

    向 TEVp樣品(15×10-6mol/ L)中分次定量加入 Zn2+溶液(使終作用濃度分別為0,15,45,75 μmol/ L),每次加入混勻平衡10 min。激發(fā)光狹縫 = 1 nm,發(fā)射光狹縫 = 1 nm,檢測范圍200~260 nm,開啟光譜校正,掃描速度中速。

    所有光譜實驗重復(fù)3次,并扣除緩沖液背景。

    1.2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

    實驗均重復(fù)設(shè)3組,采用Origin V7.0軟件進行繪圖。采用SAS 8.0軟件的一般線性模型進行方差分析,Duncan多重檢驗確定數(shù)據(jù)間的差異性,P值<0.05,差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 紫外可見光譜

    在CTEVp=2.0×10-6mol/L,曲線a~k分別代表CZn2+為0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10 μmol/L時,紫外可見光譜實驗結(jié)果,如圖1所示。由圖1可知:隨著Zn2+濃度增加,TEVp 位于218 nm及280 nm附近的紫外吸收強度均開始降低,暗示Zn2+與 TEVp 發(fā)生了結(jié)合,TEVp 芳香族氨基酸殘基的微環(huán)境發(fā)生了改變[7]。

    圖1 TEVp與Zn2+相互作用的紫外可見光譜

    2.2 Zn2+與 TEVp 相互作用對內(nèi)源熒光的影響

    當pH值為7.4,溫度為303 K時,內(nèi)源熒光實驗結(jié)果如圖2所示。

    (a)λex= 278 nm (b)λex=295 nm圖2 TEVp與 Zn2+相互作用的內(nèi)源熒光光譜

    由圖2可知,當激發(fā)波長分別是278 nm(圖a)和295 nm(圖b)時,逐漸提高Zn2+濃度, TEVp 的熒光強度均呈現(xiàn)規(guī)律性的降低(Zn2+自身沒有熒光),且最大發(fā)射峰明顯藍移,暗示Zn2+和 TEVp 間發(fā)生了明顯作用,Trp 和 Tyr 殘基周圍微環(huán)境發(fā)生變化,導(dǎo)致疏水性升高,極性降低[7]。

    根據(jù)Stern-Volmer方程,則有

    F0/F=Kqτ0[Q] +1=Ksv[Q] +1

    (1)

    其中,F0為添加Zn2+前TEVp熒光強度;F為添加 Zn2+后TEVp的熒光強度;[Q]為對應(yīng)Zn2+濃度;Kq為動態(tài)熒光淬滅速率常數(shù);τ0為生物大分子熒光平均壽命(約為10-8s);Ksv為Stern-Volmer動態(tài)淬滅常數(shù)[8-9]。

    當溫度為293、298、303 K時,淬滅常數(shù)Kq分別為(2.692 0±0.000 9)×1012、(2.330 0±0.001 3)×1012、(2.126 0±0.001 0)×1012L/(mol·s),遠大于淬滅劑對生物大分子的最大擴散碰撞淬滅速率常數(shù)2.0×1010L/(mol·s),且隨著作用溫度的升高Kq逐漸降低,表明 Zn2+與TEVp 的相互作用機制為靜態(tài)淬滅[10],如圖3和表1所示。

    圖3 λex=278 nm時,不同溫度條件下TEVp與Zn2+ 相互作用的Stern-Volmer曲線

    表1 Zn2+與 TEVp 相互作用的動態(tài)淬滅常數(shù)Ksv與動態(tài)熒光淬滅速率常數(shù)Kq

    2.3 同步熒光測定 Zn2+對 TEVp 構(gòu)象的影響

    當T=299 K,pH = 7.4,CTEVp= 3.0×10-6mol/ L;同步熒光實驗是在熒光掃描過程中激發(fā)波長與發(fā)射波長保持恒定的波長差(Δλ),當 Δλ=15 nm 時,能夠高選擇性地呈現(xiàn)酪氨酸(Tyr)的光譜學(xué)特征,而當 Δλ=60 nm時則呈現(xiàn) 色氨酸(Trp) 的光譜學(xué)特征[11],如圖4所示。

    (a)△λ=15 nm (b)△λ=60 nm圖4 Zn2+- TEVp 的同步熒光光譜

    由圖4可知,當 Δλ分別為15 nm和60 nm時,保持 TEVp 濃度不變,逐漸增加 Zn2+濃度,二者熒光強度均呈現(xiàn)規(guī)律性降低,且 Trp 基團的熒光波峰明顯藍移,表明Zn2+的加入影響了 TEVp 酪氨酸和色氨酸殘基的微環(huán)境,尤其是對色氨酸(Trp)影響更大,導(dǎo)致色氨酸殘基的疏水性逐漸升高,極性逐漸降低[12]。

    2.4 三維熒光光譜

    三維熒光光譜是用于研究生物大分子與藥物小分子相互作用后結(jié)構(gòu)變化的一種常用方法。實驗結(jié)果分別如圖5和表2所示,未添加Zn2+前和添加Zn2+后相比,熒光峰1(主要是Tyr 和 Trp 殘基引起的)和峰2(主要表現(xiàn)多肽鏈的熒光特征)的強度都有所減少(峰a為瑞利散射峰,λex=λem),并且發(fā)生了藍移(峰1藍移9 nm,峰2藍移12 nm),表明 Zn2+與 TEVp 結(jié)合導(dǎo)致蛋白多肽鏈收緊,Tyr 和 Trp 殘基微環(huán)境疏水性升高,極性降低[13]。

    (a)CZn2+∶CTEVp=0∶1三維光譜圖 (b)CZn2+∶CTEVp=0∶1等高線圖

    (c)CZn2+∶CTEVp=1∶1三維光譜圖 (d)CZn2+∶CTEVp=1∶1等高線圖圖5 Zn2+與TEVp 相互作用的三維熒光光譜圖

    表2 Zn2+與TEVp 相互作用的三維熒光光譜參數(shù)

    2.5 Zn2+對 TEVp 二級結(jié)構(gòu)及其功能的影響

    圓二色譜能夠較為精準地檢測蛋白二級結(jié)構(gòu)的改變[14]。T=299 K,pH = 7.4,CTEVp=15×10-6mol/ L,CZn2+分別為 0、15×10-6、45×10-6、75×10-6mol/ L時,遠紫外圓二色譜如圖6所示。由圖6可知,隨著 Zn2+濃度的增加, TEVp 在208~222 nm處的吸收強度逐漸增加,暗示 Zn2+的加入,導(dǎo)致 TEVp 二級結(jié)構(gòu)發(fā)生了變化。通過 CDNN 軟件對二級結(jié)構(gòu)進行估算,結(jié)果如表3所示:未加入 Zn2+時, TEVp 含有約 15.27%α-螺旋,37.10%β-折疊,16.06%β-轉(zhuǎn)角以及31.57% 無規(guī)則卷曲,與先前的研究結(jié)果高度一致[5]。隨著 Zn2+加入,β-轉(zhuǎn)角及無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)未發(fā)生較大變化,但α-螺旋結(jié)構(gòu)明顯增加,而β-折疊結(jié)構(gòu)明顯減少。

    圖6 遠紫外圓二色譜分析Zn2+與TEVp的結(jié)合作用

    表3 Zn2+ 對 TEVp 的二級結(jié)構(gòu)的改變

    3 結(jié)語

    本文利用紫外、熒光等多種光譜方法研究了 Zn2+與 TEVp 的相互作用。內(nèi)源熒光光譜研究結(jié)果顯示, TEVp與Zn2+發(fā)生靜態(tài)淬滅作用,引起內(nèi)源熒光發(fā)生淬滅。同步熒光和三維熒光光譜等研究結(jié)果表明,Zn2+與 TEVp 結(jié)合導(dǎo)致蛋白多肽鏈收緊,酪色氨和酸氨酸殘基的微環(huán)境產(chǎn)生相應(yīng)變化,其中色氨酸殘基微環(huán)境變化較大,親水性降低,非極性增強。圓二色譜試驗結(jié)果表明,Zn2+與 TEVp 的結(jié)合,導(dǎo)致 TEVp 的α-螺旋結(jié)構(gòu)增多,β-折疊結(jié)構(gòu)減少。

    通過本實驗的研究,初步闡明了Zn2+與 TEVp 的相互作用的基本信息,為 TEVp 的推廣和應(yīng)用提供了重要理論依據(jù)。

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