玉米SQD3 基因的克隆、生物信息學(xué)及表達模式分析

李嘉欣，邵文靜，張今杰，魏玉磊，蓋勝男，吳庚錦，劉仕緣，賀琳，李佐同，徐晶宇

（黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)農(nóng)學(xué)院/黑龍江省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)栽培技術(shù)與作物種質(zhì)改良重點實驗室/黑龍江省秸稈資源化利用工程技術(shù)研究中心，大慶 163319）

地球上各種生命活動的維持都離不開光合作用，光合作用是維持生命活動的根本化學(xué)反應(yīng)[1]。在許多植物中，類囊體膜是一種基本光合膜反射系統(tǒng)，植物在類囊體膜的光合膜上面就可以同時進行各種不同光能的連續(xù)光合吸收、傳遞和進行光能光合轉(zhuǎn)換[2]。脂質(zhì)雙層膜和（色素）蛋白復(fù)合體構(gòu)成了類囊體膜，其中最主要的就是多種構(gòu)成類囊體的雙層蛋白膜，按脂質(zhì)分為單半乳糖甘油二脂（monogalactosyldiacylglycerol、MGDG）、雙半乳糖甘油二脂（digalactosyl diacylglycerol，DGDG）、硫代異鼠李糖甘油二脂（sulfoquinovosyl diacylglycerol，SQDG）和磷脂酰甘油（phosphatidylglycerol，PG）四種[3-4]。其中，含硫陰離子糖脂硫代異鼠李糖甘油二脂（sulfoquinovosyl diacylglycerol，SQDG） 是由硫代異鼠李糖甘油二脂合酶（SQD）催化硫代異鼠李糖部分向二?；视停―AG）轉(zhuǎn)移從而生成的光合膜上唯一在生理狀況下帶負電荷的糖脂（glycolipid），對正常生長條件下的植物是必不可少的，尤其是在低磷脅迫中，它可以替代陰離子磷脂PG 維持類囊體膜的負電荷[5-6]。

目前，在模式植物擬南芥中已有2 個SQD基因被報道[5]。在擬南芥中，SQD1位于葉綠體基質(zhì)中并且可溶，而SQD2則位于葉綠體的內(nèi)膜[8-9]。在玉米基因組中，課題組鑒定出5 個SQD基因，并將擬南芥和玉米SQD基因分為TypeA 和TypeB 亞組：AtSQD1和ZmSQD1為TypeA 亞組；AtSQD2和ZmSQD2-5為TypeB 亞組[7]。在一個SQD蛋白成員家族中，A 型中的SQD蛋白成員和B 型中的SQD蛋白成員在保守結(jié)構(gòu)域上表現(xiàn)較出明顯的功能差異，這表明在A 型和B 型之間存在著潛在的蛋白質(zhì)功能分化差異[7]。

在擬南芥中，SQD2包含一個糖基轉(zhuǎn)移酶催化結(jié)構(gòu)域，并催化最終反應(yīng)步驟SQDG生物合成途徑，它參與了磷酸鹽脅迫反應(yīng)[10-11]。目前已有研究證明玉米和擬南芥TypeB 基因在低磷脅迫下葉片和根中均有較高表達[12]。同時，已有多項研究結(jié)果表明，低磷生長條件下，sqd1和sqd2突變的擬南芥植株均生長緩慢，但是只有sqd2突變的植株中的磷檢測能找到明顯的植物生長功能缺陷以及新發(fā)現(xiàn)的陰離子糖醛酸苷二酰甘油（GlcADG）[13-14]。也有學(xué)者報道，低磷條件下，相比于野生型，細菌細胞中的一些缺乏硫脂的突變體更早的出現(xiàn)停止細胞生長[15-17]。除此之外，亦有學(xué)者證明，水稻基因組包含三個SQD2基因（SQD2.1，SQD2.2和SQD2.3）[18-19]。Zhan 等[12-17]已通過水稻SQD2.1活性鑒定了一種特定的類黃酮糖苷，可減輕ROS 的氧化損傷并增強植物對鹽分和干旱脅迫的耐受性，此外，AtSQD2也參與調(diào)節(jié)水稻的糖代謝和結(jié)實。但在玉米中SQD基因功能的深入研究還未見報道。

研究通過克隆ZmSQD3基因的全長分子序列、生物信息學(xué)分析以及表達模式分析來預(yù)測該基因的主要功能，研究ZmSQD3基因功能及其在玉米生長過程中的關(guān)鍵作用，為ZmSQD3基因結(jié)構(gòu)功能探究及其他植物中SQD基因的研究奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 供試材料

玉米（Zea MaysL.）自交系合344，黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)玉米育種室提供。

1.2 ZmSQD3 基因克隆試驗方法

1.2.1 玉米葉片和根系總RNA 提取及cDNA 的獲得

將大小均勻、籽粒飽滿的種子用10%次氯酸鈉消毒，30 min 后用蒸餾水沖洗干凈，浸種8 h 催芽，放置于28 ℃下避光萌發(fā)。當種子初生根根長約1.5～2 cm 后，轉(zhuǎn)移至蒸餾水中，培養(yǎng)3 d 后，轉(zhuǎn)入富磷（+P：1 000 μM/L KH2PO4）的1/2 Hoagland 營養(yǎng)液中培養(yǎng)至二葉一心時期，將其中一組幼苗進行低磷處理，即轉(zhuǎn)移到磷含量為5 μM/L KH2PO4（低磷）的營養(yǎng)液中，同時處理組的營養(yǎng)液加入與對照中KH2PO4等摩爾濃度的KCl，用以補齊K+濃度；調(diào)整營養(yǎng)液pH為6.0，每3 d 更換一次營養(yǎng)液。將處理中的玉米放置于相對濕度為65%，每天光照時間16 h，光照條件為晝/夜溫度27 ℃/18 ℃的生長條件中生長。處理時間為1，3，7 d 時，在處理組和對照組中分別取玉米葉片及根系組織，取樣后迅速放入液氮中，通過磨樣機快速研磨成粉末狀，以Trizol 法提取玉米（合344）RNA，提取RNA 的步驟按照康寧生命科技有限公司的提取試劑盒（AxyPrep 試劑盒）說明書進行操作，提取后用事先準備好的DEPC 水進行預(yù)處理，進行溶解（14 μL DEPC 水），通過1%瓊脂糖電泳對提取的RNA 進行質(zhì)量性能優(yōu)化性檢測。參照反轉(zhuǎn)錄takara試劑盒中的操作說明對提取出來的RNA 進行反轉(zhuǎn)錄，將反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA 在凝膠中驗證，將cDNA在28 S 和18 S 條帶的亮度和寬度比例為2∶1 的結(jié)果cDNA 保存于-20 ℃，備用。

1.2.2ZmSQD3基因引物設(shè)計

根據(jù)ZmSQD3基因在Phytozome 數(shù)據(jù)庫登錄號（GRMZM2G477503）找到該基因CDS 序列，退火溫度60 ℃。去掉ZmSQD3下游的終止子，再在保守區(qū)內(nèi)進行設(shè)計使其上下游基因引物在前端加入了經(jīng)過SmaI酶切的同源序列（表1）。以玉米cDNA 為模板進行ZmSQD3基因片段的擴增。

表1 引物序列Table1 Primer sequence

表2 擴增ZmSQD3 基因的PCR 反應(yīng)體系Table 2 The reaction system of PCR for amplifying ZmSQD3 gene

表3 ZmSQD3 基因克隆反應(yīng)體系Table 3 The reaction system of ZmSQD3 gene cloning

表4 重組連接體系Table 4 Restructuring the connection system

1.2.3 目的基因PCR 擴增

以玉米葉片總RNA 反轉(zhuǎn)錄成的cDNA 為模板，擴增ZmSQD3基因，結(jié)合cDNA 全長設(shè)置反應(yīng)程序，以下為PCR 的反應(yīng)序列體系：

在Eppendorf PCR 儀上設(shè)置PCR 程序如下：

4 ℃，保存PCR 產(chǎn)物。

1.2.4 TA 克隆

（1）向平末端DNA 片段3′末端加堿基A：

混勻后輕離心，72 ℃下在PCR 儀中保溫25 min；

（2）按照插入片段與載體摩爾比為6∶1 來計算DNA 的加入體積X μL，在冰上加入以下組分：

輕輕吸打，短暫離心；于16 ℃條件下過夜連接。

1.2.5 菌種保存、測序及分析

（1）保存菌種

將15 mL 離心管滅菌，在LB 液體培養(yǎng)基中加入5 mL 100 μg·mL-1Kana 抗生素，用無菌牙簽挑取少許陽性單菌落，置于抗性培養(yǎng)液中，37 ℃、170 rpm 振蕩培養(yǎng)12 h；取2 只滅過菌的1.5 mL 離心管，依次加入滅好菌的200 μL 80%甘油及800 μL 菌液，充分混合，一只用于測序，另一只液氮速凍，于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

（2）測序及分析

選擇若干陽性克隆的甘油菌送到上海生工有限公司進行測序。進行雙向測通的基因測序；得到測序結(jié)果后，通過DNAMAN 等軟件比較陽性克隆序列與目標序列的一致性，并確認酶切位點與引物是否存在錯位，挑選序列信息完全正確的陽性克隆進行下一步試驗。

1.3 生物信息學(xué)分析

供試基因在不同環(huán)境脅迫中的表達數(shù)據(jù)來自于山東農(nóng)業(yè)大學(xué)轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫。測序在BMK 測序平臺完成。主要分析方法見表5：

表5 生物信息學(xué)分析方法Table 5 Bioinformatics analysis method

1.4 表達模式分析

1.4.1 樣品處理及取樣

樣品處理見1.2.1，分別取鹽和低磷處理1，3，7 d的玉米幼苗葉片和根系相同部位，將樣品送至北京市百邁克公司進行轉(zhuǎn)錄組測序。

1.4.2 轉(zhuǎn)錄組測序后數(shù)據(jù)分析

為了確定轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)是否可以進行后續(xù)的分析，對數(shù)據(jù)進行質(zhì)控（QC），去掉原始數(shù)據(jù)中質(zhì)控不合格的低質(zhì)量序列。然后將過濾后的clean reads 與玉米參考基因組（B73_RefGen_v3）進行比較，對數(shù)據(jù)進行第二次質(zhì)控（QC of alignment），通過比對率的統(tǒng)計分析和reads 在參考序列上的分布的方法來判斷是否通過第二次檢驗。

2 結(jié)果與分析

2.1 目的基因的克隆鑒定

依據(jù)ZmSQD3基因ORF 的序列擴展設(shè)計特異引物，用PCR 產(chǎn)物序列檢測引物特異性，結(jié)果表明，ZmSQD3基因擴增后可產(chǎn)出序列大小為1 314 bp 的單一清晰特異性基因條帶（圖1），與預(yù)期克隆結(jié)果相符，且通過CDS 及其所編碼的氨基酸序列可知，Zm－SQD3基因共編碼437 個氨基酸（圖2）。

圖1 ZmSQD3 基因的PCR 擴增Fig.1 PCR product of ZmSQD3 gene

圖2 ZmSQD3 基因的CDS 及其所編碼的氨基酸序列Fig.2 Complete CDS of maize SQD3 gene and its encoding amino acid sequence

2.2 生物信息學(xué)分析

2.2.1 物種間氨基酸序列比對

將玉米（Z.mays）的SQD3基因與通過NCBI 網(wǎng)站上下載得到的擬南芥（A.thaliana），水稻（O.sativa），高粱（S.bicolor），大豆（G.max）和短柄草（B.sylvaticum Beauv）SQD基因共15 個基因作系統(tǒng)進化樹分析（圖3），結(jié)果發(fā)現(xiàn)：ZmSQD3基因序列與高粱SQD3基因序列高度相似，相似度為92.62%，親緣關(guān)系最近。

圖3 ZmSQD3 基因同源進化樹比對Fig.3 Comparison of homologous evolutionary trees of ZmSQD3 gene

2.2.2ZmSQD3基因編碼蛋白質(zhì)一級結(jié)構(gòu)分析

通過NCBI 網(wǎng)站中的BLAST 對全長為1 314 bp的ZmSQD3基因進行CDS 序列結(jié)構(gòu)及編碼蛋白質(zhì)的功能分析，結(jié)果表明，ZmSQD3基因?qū)儆赑LN02871家族成員（圖4），對該基因編碼蛋白質(zhì)產(chǎn)物一級結(jié)構(gòu)分析預(yù)測顯示ZmSQD3基因編碼蛋白質(zhì)氨基酸數(shù)量為437 個aa，相對分子量為49.23 kDa，等電點在6.85，分析ZmSQD3的氨基酸組成、正負電荷殘基、平均疏水性、脂肪系數(shù)、不穩(wěn)定系數(shù)和半衰期，發(fā)現(xiàn)該蛋白質(zhì)不穩(wěn)定系數(shù)40.33，超過閾值40。ZmSQD3蛋白為不穩(wěn)定堿性親水蛋白（表6、7）。

表6 ZmSQD3 氨基酸組成分析Table 6 Amino acid composition of ZmSQD3

表7 ZmSQD3 基因編碼蛋白質(zhì)產(chǎn)物一級結(jié)構(gòu)預(yù)測分析Table 7 Predictive analysis of the primary structure of the protein product encoded by the ZmSQD3 gene

2.2.3ZmSQD3基因編碼的蛋白質(zhì)磷酸化位點及親/疏水性分析

蛋白質(zhì)磷酸化轉(zhuǎn)移位點的基因預(yù)測主要以一種神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)分析算法作為預(yù)測基礎(chǔ)，預(yù)測ZmSQD3基因編碼蛋白質(zhì)的磷酸化位點。如圖5A，ZmSQD3蛋白存在36、84、97、101、106、120、157、166、174、208、217、225、245、294、307、319、322、347、381、392 共19 個絲氨酸磷酸化位點；5 個蘇氨酸磷酸化位點（分別是66、284、351、367、378）；4 個潛在酪氨酸磷酸化位點（分別是40、91、150、400）。相應(yīng)的磷酸化勢位點如圖5B，分析表明3 種主要氨基酸結(jié)合激酶磷酸化且激活一個ZmSQD3蛋白最終調(diào)控整個基因組的表達。ZmSQD3基因預(yù)測編碼蛋白質(zhì)中的親、疏水性結(jié)果顯示親水性最大峰值是位于多肽鏈第343 位的甲基谷氨酸（對應(yīng)峰值：-2.444），疏水性最大峰值是位于第127 位的甲基脯氨酸（對應(yīng)峰值：2.767）。根據(jù)氨基酸分值的高低對應(yīng)親疏水性強弱的變化規(guī)律，親水性最強的氨基酸是該基因序列第127 位的脯氨酸，疏水性最強的氨基酸是該基因序列第343 位的谷氨酸，在氨基酸數(shù)量比對上，親水性氨基酸比疏水性氨基酸多，并且在肽鏈中是均勻分布的；研究證明Zm－SQD3基因編碼蛋白質(zhì)為親水性結(jié)合蛋白（圖6）。

圖5 ZmSQD3 蛋白潛在磷酸化位點預(yù)測結(jié)果Fig.5 Prediction results of potential phosphorylation sites of ZmSQD3 protein

圖6 ZmSQD3 蛋白質(zhì)親水和疏水性分析Fig.6 Hydrophilic and hydrophobic analysis of ZmSQD3 protein

2.2.4ZmSQD3基因編碼蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)分析

由圖7，通過對蛋白質(zhì)產(chǎn)物二級結(jié)構(gòu)的分析得知，ZmSQD3蛋白二級結(jié)構(gòu)由α 螺旋、不規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)、β 折疊以及β 轉(zhuǎn)角組成。其中α 螺旋占46.00%，不規(guī)則卷曲占14.19%，β 折疊占6.18%，β 轉(zhuǎn)角占33.64%。

圖7 ZmSQD3 基因編碼的蛋白產(chǎn)物二級結(jié)構(gòu)Fig.7 The secondary structure of the protein product encoded by the ZmSQD3 gene

2.2.5ZmSQD3基因編碼蛋白質(zhì)產(chǎn)物三級結(jié)構(gòu)分析

運用Phyre2 數(shù)據(jù)庫在線分析ZmSQD3基因編碼的蛋白質(zhì)產(chǎn)物并預(yù)測分析蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)，運用Rasmol 軟件分析玉米ZmSQD3基因編碼的蛋白質(zhì)產(chǎn)物三級結(jié)構(gòu)。由圖8 可見，建?？尚哦确秶℅MQE）為0.52，大于0.4，區(qū)間（QMEAN）為-3.66 ，證明建模結(jié)果可信。

圖8 ZmSQD3 基因編碼蛋白質(zhì)產(chǎn)物的三級結(jié)構(gòu)Fig.8 Tertiary structure of ZmSQD3 encoded protein

2.2.6ZmSQD3基因啟動子序列分析

通過NCBI 數(shù)據(jù)庫下載ZmSQD3基因ATG 上游5 000 bp 啟動子序列，將啟動子序列提交至Plant－CARE 應(yīng)用程序中，預(yù)測ZmSQD3基因啟動子區(qū)域所含主要啟動子序列元件。由表8 可知，植物基因啟動子響應(yīng)區(qū)域不僅分別存在ABA 逆境響應(yīng)調(diào)控元件，例如ABRE（abscisic acid responsive element）和元件W-box，而且分別存在干旱、鹽和堿等低溫逆境響應(yīng)調(diào)控元件，例如DRE1（dehydration-responsiveelement）等植物環(huán)境脅迫應(yīng)激響應(yīng)調(diào)控元件，同時也包括能夠參與脫落酸響應(yīng)的順式作用元件，茉莉酸甲酯響應(yīng)的順式作用調(diào)控元件；厭氧感應(yīng)順勢元件、應(yīng)激響應(yīng)元件。此外，還有與分生組織表達相關(guān)的順式作用調(diào)控元件等細胞特異性表達元件。此外，玉米、棉花和擬南芥的SQD基因均存在順式逆境響應(yīng)調(diào)控元件，例如STRE、ABRE、TGACGmotif，說明Zm－SQD3基因響應(yīng)應(yīng)激響應(yīng)、脫落酸等生物逆境信號。通常認為植物激素（水楊酸、脫落酸、茉莉酸甲酯等）在植物生長發(fā)育過程和逆境響應(yīng)中具有重要功能[20-21]。

表8 ZmSQD3 基因啟動子元件Table 8 Promoter elements of ZmSQD3

2.3 ZmSQD3 基因的表達模式分析

2.3.1 玉米組織中SQD3基因的表達譜

為了研究不同發(fā)育階段的玉米的SQD3基因表達譜，通過玉米eFP 和TAIR 兩種權(quán)威數(shù)據(jù)庫中收集相關(guān)的數(shù)據(jù)信息并進行基因表達分析。如圖9，SQD3基因在玉米營養(yǎng)生長和生殖生長各階段的各組織中均有表達，且觀察到在營養(yǎng)生長階段的早期葉片和在生殖生長階段的初期種子中表達量較高。

圖9 ZmSQD3 基因在不同組織或不同生長階段的表達譜的熱圖Fig.9 Heat map of expression profiles of ZmSQD3 gene in different tissues or different growth stages

2.3.2 環(huán)境脅迫下ZmSQD3基因的表達分析

為了研究ZmSQD3基因在環(huán)境脅迫中的作用，分析在鹽和低磷脅迫下的表達模式。通過對鹽和低磷脅迫下玉米葉片和根系在不同時間點的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析發(fā)現(xiàn)，與0 d 對照相比，在兩種環(huán)境脅迫下的1、3 和7 d 中，葉片與根系中的ZmSQD3基因均有響應(yīng)。鹽脅迫下，無論是1、3 d 還是7 d 時間點根中的ZmSQD3基因都下調(diào)表達，而葉中的都上調(diào)表達，3 d時根中表達量最高，7 d 時葉中表達量最高（圖10A）。低磷脅迫下，無論是在根中還是葉片中均呈現(xiàn)出上調(diào)表達趨勢，但在根中1 d 的表達量低，在7 d的根中下調(diào)表達（圖10B）。

圖10 ZmSQD3 基因在不同環(huán)境脅迫下的表達分析Fig.10 Expression analysis of ZmSQD3 gene under different environment stress

3 討論

研究以玉米自交系合344 為供試材料，克隆ZmSQD3基因，測序結(jié)果表明克隆的SQD3基因序列與玉米基因組中的相應(yīng)序列一致。生物信息學(xué)技術(shù)可以通過對基因序列所含的遺傳信息分析，研究被基因控制而形成的蛋白產(chǎn)物，并以此揭示其基因表達的重要生物學(xué)特征意義[22]。近年來測序技術(shù)已經(jīng)得到了很大的發(fā)展，越來越多的物種全基因組已經(jīng)成功完成了測序工作。研究主要利用生物信息學(xué)分析方法，對ZmSQD3基因編碼蛋白的磷酸化位點結(jié)構(gòu)分析、親疏水性、理化性質(zhì)、蛋白質(zhì)的一級、二級、三級結(jié)構(gòu)等分析，SQD3蛋白由437 個氨基酸組成，不穩(wěn)定系數(shù)為40.33（>40），半衰期為30 h，半衰期與穩(wěn)定性之間也存在著一定的聯(lián)系，通常來講半衰期長的蛋白質(zhì)比較穩(wěn)定，所以該基因編碼的蛋白是一種不穩(wěn)定型蛋白[23]。平均疏水系數(shù)為-0.117，表明Zm－SQD3蛋白具有一定的水溶性。

蛋白質(zhì)的二級空間結(jié)構(gòu)模型是其多肽鏈本身的折疊，是在一維結(jié)構(gòu)上可以利用氫鍵排列組合起來的結(jié)構(gòu)。但是到目前為止，由于很難對一個蛋白質(zhì)的二級空間結(jié)構(gòu)模型進行精確生物化學(xué)預(yù)測分析，為了逐步加深對蛋白質(zhì)二級空間結(jié)構(gòu)的科學(xué)理解，使用理論計算法和生物信息學(xué)法來進行結(jié)構(gòu)預(yù)測。一般只有認為當一個蛋白質(zhì)二級空間結(jié)構(gòu)的化學(xué)預(yù)測結(jié)果精確率能夠達到80%，才可以準確地進行預(yù)測蛋白質(zhì)組成分子的三級空間結(jié)構(gòu)[24]。經(jīng)過分析，Zm－SQD3基因編碼產(chǎn)物由46.00%的α 螺旋、14.19%的不規(guī)則卷曲、6.18%的β 折疊和33.64%的β 轉(zhuǎn)角組成，預(yù)測可信度超過80%，所以推斷通過此分析方法可以準確分析該基因編碼序列，繼而進行了ZmSQD3蛋白質(zhì)的三級結(jié)構(gòu)預(yù)測。

通過對物種間SQD3蛋白的氨基酸序列同源性分析，玉米與高粱的SQD3基因同源性最高為92.62%，與其他幾個物種的同源性也比較高，表明不同物種間SQD3蛋白質(zhì)非常相似，這與王楓的報道結(jié)果相同[7]。

通過對ZmSQD基因啟動子上游5 000 bp 進行啟動子上游基因研究分析，發(fā)現(xiàn)ZmSQD基因啟動子含有多個與玉米植物逆境響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件，包括響應(yīng)環(huán)境脅迫表達作用抑制元件、與分生組織表達相關(guān)的細胞特異性表達元件等，此外，Zm－SQD3基因的表達可能受到水楊酸、脫落酸、茉莉酸甲酯等激素的調(diào)節(jié)。這些基因研究分析結(jié)果表明，SQD3基因可能正是通過這些響應(yīng)環(huán)境脅迫的順式作用元件參與玉米對脅迫信號傳導(dǎo)途徑的應(yīng)答，在植物響應(yīng)脅迫過程中發(fā)揮作用[25]。

基因表達模式通常是其具有生物學(xué)功能的一種具體表現(xiàn)形式之一[26]。研究通過qrt-pcr 表達譜熱圖分析，SQD3基因在玉米各組織中均有所表達，并且在早期葉片發(fā)育階段觀察到B 型的SQD3基因的表達，這表明它在葉綠體和光合作用中發(fā)揮功能，與前人證明一致[7]。在低磷脅迫下根和葉片的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析顯示，ZmSQD3基因在低磷處理下均有顯著表達，且在不同時期的根和葉片中表達不同，推測這可能是因為低磷酸鹽存在的情況下B 型SQD基因發(fā)揮功能[27]。已有前人研究證明，植物光合作用、滲透調(diào)節(jié)、鹽分脅迫和干旱脅迫等都有SQD基因的參與，尤其在磷酸鹽脅迫條件下，AtSQD2被認為與植物對磷酸鹽脅迫的反應(yīng)直接相關(guān)[23，28]。在磷酸鹽高度脅迫的生長條件下，擬南芥植物的一個sqd1或多個sqd2基因突變體表現(xiàn)出生長擴張性，盡管僅在一個sqd2突變體中基因檢測可看到明顯的生長缺陷和功能缺乏新型陰離子糖酯葡糖苷酸二酰基甘油（GlcADG）[29-31]。

4 結(jié)論

（1）ZmSQD3與低磷脅迫和非生物脅迫響應(yīng)有關(guān)，ZmSQD3在低磷脅迫下的玉米幼苗葉片和根系中均顯著表達。在磷酸鹽饑餓下的玉米葉片和根部組織中，B 型的ZmSQD表達顯著，在植物抵御磷脅迫中起重要作用。

（2）在植物中，SQDG脂類不僅響應(yīng)干旱脅迫、ABA 誘導(dǎo)、激素等，也響應(yīng)磷脅迫。通過SQD基因的克隆和信息分析得出SQDG脂類在低磷脅迫下起到抗逆的作用，為植物抗逆基因工程育種研究提供幫助。