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    針刀干預(yù)對(duì)膝骨關(guān)節(jié)炎兔軟骨血管分布及CD34、CD105、VEGF表達(dá)的影響*

    2023-02-11 10:09:08陳烯琳秦露雪郭長(zhǎng)青
    中國(guó)中醫(yī)急癥 2023年1期
    關(guān)鍵詞:滑液下骨針刀

    張 典 張 茜 許 悅 陳烯琳 秦露雪 郭長(zhǎng)青

    (北京中醫(yī)藥大學(xué),北京 100029)

    膝關(guān)節(jié)骨性關(guān)節(jié)炎(KOA)是在生物力學(xué)和生物學(xué)兩者的共同因素相互影響狀態(tài)下,引起膝關(guān)節(jié)周圍結(jié)構(gòu)異常變化和功能慢性退行性改變的骨關(guān)節(jié)疾?。?],以疼痛、活動(dòng)受限為主要臨床表現(xiàn),以關(guān)節(jié)軟骨退變?yōu)樽罹邩?biāo)志性病變。正常的關(guān)節(jié)軟骨不僅無(wú)血供來(lái)源,且長(zhǎng)期處于生理性低氧環(huán)境中,KOA發(fā)病過(guò)程中的軟骨細(xì)胞表現(xiàn)為病理性缺氧,且隨著KOA病程進(jìn)展,軟骨細(xì)胞代償性啟動(dòng)血管生成反而加速軟骨退變。最新研究[2]表明,關(guān)節(jié)軟骨退變及骨關(guān)節(jié)炎臨床癥狀的嚴(yán)重程度可由軟骨血管化程度反映出來(lái)。OA病程早期可見源于軟骨下骨的微血管異常生成,侵入鈣化層軟骨,并可能隨著OA病程繼續(xù)發(fā)展,骨與軟骨交界處新生血管密度進(jìn)一步增加[3],逐步突破潮線侵入非鈣化軟骨層,最終可蔓延至表層軟骨,且骨軟骨交界處血管密度與軟骨退變嚴(yán)重程度呈正相關(guān)。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn)[4]抑制血管異常生成可有效緩解KOA關(guān)節(jié)軟骨退變,因此,抑制軟骨新生血管形成可能是治療KOA的新思路[5]。針刀治療KOA療效確切,本項(xiàng)目組前期[6]已經(jīng)證實(shí)針刀通過(guò)其力學(xué)效應(yīng)可以發(fā)揮對(duì)KOA軟骨細(xì)胞的保護(hù)作用,并在一定程度上可以延緩KOA病理進(jìn)程。本研究擬立足于觀察針刀干預(yù)對(duì)KOA兔軟骨血管分布及CD34、CD105、VEGF表達(dá)的影響,以進(jìn)一步探討針刀治療KOA的作用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    28只健康清潔級(jí),6月齡,雄性,新西蘭兔(倫理編號(hào):BUCM-4-2022010101-1097,動(dòng)物許可證號(hào):SYXK京2018-0041,北京富龍騰飛實(shí)驗(yàn)動(dòng)物研究院有限公司),體質(zhì)量2.0~2.5kg。標(biāo)準(zhǔn)動(dòng)物飼養(yǎng)籠單籠飼養(yǎng),標(biāo)準(zhǔn)飼料,自由飲食。保持室溫恒定于(20±2)℃,濕度維持在40%~60%。

    1.2 試劑與儀器

    EDTA脫鈣液(G1105,Servicebio);HE染液套裝(G1003,Servicebio);胃蛋白酶消化液(Servicebio);PBS緩沖液(G0002,Servicebio);BSA(G5001,Servicebio);蘇木素染液(G1004,Servicebio);一抗CD34(GENETEX-GTX28158-1∶100);HR-山羊抗大鼠二抗(GB23302-1∶200,Servicebio);一抗CD105(MA5-17041-1∶500,invitrogen);一抗 p-h2ax(05-636-I-1∶50,millipore);HRP山羊抗小鼠二抗(GB23301-1∶200,Servicebio);ELISA試劑盒(CSB-E08524Rb);組化試劑盒DAB顯色劑(G1211,Servicebio)。組織攤片機(jī)(KDP,浙江省金華市科迪儀器設(shè)備有限公司);染色機(jī)(Giotto,DIAPATH);脫水機(jī)(JJ-12J,武漢俊杰電子有限公司),包埋機(jī)(JB-P5,武漢俊杰電子有限公司);脫色搖床(TSY-B,Servicebio);病理切片機(jī)(RM2016,上海徠卡儀器有限公司);渦旋混合器(MX-F,Servicebio);掌上離心機(jī)(D1008E,Servicebio);顯微鏡(XSPC204,CIC);立式冷藏陳列柜(LSC-316C,星星);高速組織研磨儀(KZ-II,Servicebio);臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(D3024R,大龍);酶標(biāo)檢測(cè)儀(Epoch,BioTeK)。

    1.3 分組方法

    實(shí)驗(yàn)動(dòng)物適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d后,按照隨機(jī)分配的基本原則分為空白組、模型組、電針組、針刀組,每組7只。針刀與電針均可通過(guò)刺激穴位達(dá)到治療效果,但針刀較電針刺激強(qiáng)度更大,在發(fā)揮針刺作用基礎(chǔ)上又可通過(guò)分解粘連、延長(zhǎng)攣縮、減張減壓直接作用于膝周“經(jīng)筋”,故選取電針組作為陽(yáng)性對(duì)照組,試圖通過(guò)實(shí)驗(yàn)結(jié)果對(duì)比電針與針刀在治療兔KOA的療效差異。

    1.4 造模方法

    采用改良后Videman[7]左后肢伸直位固定制動(dòng)法制備KOA模型兔,造模前所有實(shí)驗(yàn)動(dòng)物均需經(jīng)嚴(yán)格禁食約10~16 h。兔前后肢固定于操作臺(tái),以3%戊巴比妥溶液30 mg/kg耳緣靜脈注射麻醉,左后肢腹股溝至足踝關(guān)節(jié)區(qū)域備皮,牽拉左下肢至膝關(guān)節(jié)完全伸直,以65~85℃熱水充分浸泡樹脂繃帶至軟化后,自腹股溝至足踝固定(保持膝關(guān)節(jié)完全伸直位180°,踝關(guān)節(jié)背屈約60°),留出足趾觀察血供,以無(wú)色透明膠紙于樹脂外包嚴(yán)扎以防兔撕咬。定時(shí)觀察兔足趾血供情況及模型脫落情況,及時(shí)拆除模具,待恢復(fù)正常血運(yùn)后再次制動(dòng)。有效制動(dòng)6周后,確認(rèn)模型制備成功拆除樹脂固定模具。

    1.5 干預(yù)方法

    各組動(dòng)物均在拆除樹脂固定后開始進(jìn)行干預(yù)。電針組:固定并選取KOA兔患側(cè)梁丘、血海、內(nèi)膝眼和外膝眼穴進(jìn)行電針干預(yù)治療。取穴參照《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[8],并結(jié)合動(dòng)物比較學(xué)方法,根據(jù)比較解剖取穴法結(jié)合模擬骨度取穴法,選取上述腧穴進(jìn)行治療。采用一次性無(wú)菌針灸針,規(guī)格0.2 mm×13 mm(環(huán)球牌,蘇州針灸用品有限公司)。以韓氏電針儀分別連接“梁丘-血海”“內(nèi)膝眼-外膝眼”,選用疏密波,刺激頻率2/100 Hz,強(qiáng)度3 mA,每次干預(yù)20 min,隔天1次,共3周。針刀組:固定并以龍膽紫在KOA兔膝關(guān)節(jié)股內(nèi)、外側(cè)肌腱止點(diǎn);股直肌肌腱止點(diǎn);股二頭肌肌腱止點(diǎn)及縫匠肌、股薄肌和半腱肌的聯(lián)合腱即鵝足腱;膝關(guān)節(jié)周圍結(jié)節(jié)條索狀物進(jìn)行標(biāo)記定位。選用漢章系列一次性針刀,規(guī)格0.3 mm×30 mm(北京卓越華友醫(yī)療器械有限公司)。常規(guī)步驟備皮、消毒,隨后刺入針刀,刀刃與肌腱走向平行,刀體垂直于皮膚切面,按照“四步規(guī)程”進(jìn)針刀,每處松解2~3下后出針刀并按壓片刻止血。每周治療1次,共3周。模型組:造模完成后每天1次正常抓取、捆綁固定(方法同干預(yù)組)??瞻捉M:不作任何處理,每天正常抓取、捆綁固定(方法同干預(yù)組)。

    1.6 標(biāo)本采集與檢測(cè)

    1.6.1 HE染色 治療結(jié)束后,各組動(dòng)物以3%戊巴比妥溶液麻醉過(guò)量致死后立即打開關(guān)節(jié)腔,在無(wú)菌條件下,將直徑為8 mm的環(huán)鉆垂直放置于關(guān)節(jié)軟骨面,在患側(cè)膝關(guān)節(jié)脛骨、股骨軟骨面中央負(fù)重區(qū)各截取深度為10 mm的軟骨-軟骨下骨復(fù)合體圓柱形組織塊。將組織塊放置于4%多聚甲醛充分固定后脫鈣,常規(guī)制備石蠟切片、脫蠟、核染色、脫水封片處理。在光鏡下觀察軟骨-軟骨下骨復(fù)合體中鈣化軟骨層、非鈣化軟骨層血管分布情況。

    1.6.2 免疫組織化學(xué) 將軟骨-軟骨下骨復(fù)合體組織塊放置于4%多聚甲醛充分固定后脫鈣,常規(guī)制備石蠟切片。在完成烤片、修復(fù)抗原、DAB顯色、復(fù)染細(xì)胞核、脫水封片處理等一系列常規(guī)操作后,通過(guò)免疫組化染色在光鏡下觀察鈣化軟骨層、非鈣化軟骨層CD34、CD105的表達(dá),其中DAB顯出的蛋白陽(yáng)性表達(dá)呈淺黃色或棕黃色。隨后以Weidner計(jì)數(shù)法[9]計(jì)算微血管密度,先以低倍率(100倍)掃描切片,選擇3個(gè)最高血管密度(“熱點(diǎn)”)區(qū)域,再以高倍率(200倍)定向掃描3個(gè)熱點(diǎn)區(qū)域,視野內(nèi)允許最大數(shù)量微血管。由至少2名相對(duì)獨(dú)立研究者分別對(duì)同一切片微血管的數(shù)量進(jìn)行計(jì)數(shù),取其平均值作為該切片的微血管密度(MVD),若計(jì)數(shù)差異超過(guò)10%,則需重新計(jì)數(shù)。

    1.6.3 酶聯(lián)免疫吸附檢測(cè) 獲得關(guān)節(jié)滑液及血清并置于-80℃冰箱保存,以ELISA試劑盒通過(guò)加樣、加檢測(cè)抗體、洗板,加酶、顯色和終止反應(yīng)等一系列常規(guī)操作后,檢測(cè)滑液及血清中VEGF蛋白表達(dá)水平,其濃度由計(jì)算出的標(biāo)準(zhǔn)曲線查得。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    應(yīng)用SPSS20.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以()表示。符合正態(tài)分布及方差齊的數(shù)據(jù)資料采用單因素方差分析;不符合正態(tài)分布或方差不齊的數(shù)據(jù)采用非參數(shù)檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,P<0.01為差異極具統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 各組HE染色結(jié)果

    在光學(xué)顯微鏡下可以觀察到HE染色中:空白組織胞核呈紫藍(lán)色,胞質(zhì)呈粉紅色??瞻捉M關(guān)節(jié)軟骨表面光滑平整,細(xì)胞層次排列有序,分布及染色均勻,潮線完整,無(wú)血管通過(guò),鈣化層軟骨或可見少量血管。模型組關(guān)節(jié)軟骨表面可見部分剝脫、缺損,細(xì)胞分布不均勻,潮線上移且扭曲不規(guī)則,有血管通過(guò),并到達(dá)非鈣化層軟骨。電針組關(guān)節(jié)軟骨表層或可見剝脫,細(xì)胞分布較均勻,部分出現(xiàn)凋亡,潮線略扭曲、較規(guī)則,可見少量血管通過(guò)到達(dá)非鈣化層軟骨。針刀組軟骨表層較光滑,細(xì)胞層次排列均勻,潮線較規(guī)則且清晰,偶見重復(fù)潮線,偶見少量或無(wú)血管穿過(guò)到達(dá)非鈣化層軟骨。如圖1所示。

    圖1 各組軟骨-軟骨下骨復(fù)合體組織病理觀察(HE染色,200倍)

    2.2 各組免疫組織化學(xué)檢測(cè)結(jié)果

    見表1。免疫組化檢驗(yàn)結(jié)果顯示,與空白組相比,模型組MVD值均顯著增加(P<0.01);干預(yù)后,相比模型組,電針組和針刀組MVD值均明顯降低(P<0.01),且針刀組顯著低于電針組(P<0.05)。

    表1 各組MVD表達(dá)水平比較(±s)

    表1 各組MVD表達(dá)水平比較(±s)

    注:與空白組比較,*P<0.01;與模型組比較,#P<0.01;與電針組比較,△P<0.05。下同。

    組別n CD34CD105空白組模型組電針組針刀組7 7 7 7 0.77±0.34 23.02±2.27*12.19±0.90#8.51±0.61#△0.97±0.48 25.34±2.38*12.31±1.43#7.61±0.75#△

    2.3 各組血清及滑液中VEGF表達(dá)比較

    見表2。與空白組相比,模型組血清及滑液中VEGF表達(dá)均明顯升高(P<0.01);干預(yù)3周后,與模型組相比,電針組與針刀組血清及滑液中VEGF表達(dá)水平均有所降低(P<0.01),且針刀組顯著低于電針組(P<0.05)。

    表2 各組血清、滑液中VEGF表達(dá)水平比較(pg/mL,±s)

    表2 各組血清、滑液中VEGF表達(dá)水平比較(pg/mL,±s)

    組別空白組模型組電針組針刀組n 7 7 7 7血清VEGF 6.50±1.22 14.15±1.11*10.61±0.65#7.61±0.90#△滑液VEGF 6.69±0.85 12.99±1.35*10.27±0.37#8.14±0.47#△

    3 討 論

    中醫(yī)學(xué)認(rèn)為,KOA屬于“骨痹”范疇,“膝者,筋之府也”“筋者,肉之力也”“宗筋主束骨而利機(jī)關(guān)”,膝關(guān)節(jié)處筋為全身之最,發(fā)揮著包繞、約束骨骼和關(guān)節(jié),絡(luò)系肌肉皮膚以及維持動(dòng)態(tài)及靜態(tài)穩(wěn)定的功能?,F(xiàn)代解剖學(xué)認(rèn)為,KOA的病理表現(xiàn)“筋傷”是由于膝關(guān)節(jié)周圍生物力學(xué)失衡所導(dǎo)致的一系列病變,針刀松解法是在傳統(tǒng)中醫(yī)“經(jīng)筋”理論指導(dǎo)下,結(jié)合現(xiàn)代解剖學(xué)理念,通過(guò)改善膝關(guān)節(jié)周圍生物力學(xué)環(huán)境,恢復(fù)膝關(guān)節(jié)周圍的正常力學(xué)平衡,發(fā)揮對(duì)軟骨細(xì)胞的保護(hù)作用、延緩關(guān)節(jié)軟骨退變[10],以獲得更加持續(xù)的治療作用,從而豐富針刀“調(diào)筋治骨”內(nèi)涵。生理?xiàng)l件下,軟骨及軟骨下骨是一個(gè)整體的功能單元,軟骨下骨為其分散過(guò)度集中的應(yīng)力。近年多項(xiàng)研究證實(shí),膝關(guān)節(jié)周圍異常的生物力學(xué)環(huán)境會(huì)直接影響到軟骨下骨病變[11],使關(guān)節(jié)軟骨和軟骨下骨過(guò)早變性,啟動(dòng)了骨重塑。Suri等[12]認(rèn)為,在軟骨下骨重塑過(guò)程中,軟骨下骨異常增加的破骨細(xì)胞活動(dòng)使得軟骨下骨板與非鈣化軟骨層之間形成通道,同時(shí)裂隙自軟骨表面向下延伸至軟骨下板,被異常的新生血管占據(jù)同時(shí)深入至軟骨鈣化層。研究表明,軟骨-軟骨下骨復(fù)合體組織中的異常血管生成可能激發(fā)軟骨內(nèi)骨化,出現(xiàn)軟骨細(xì)胞肥大、X型膠原表達(dá)升高[13]等表現(xiàn),進(jìn)而加速關(guān)節(jié)軟骨鈣化及退變。因此可以明確,膝關(guān)節(jié)周圍異常生物力學(xué)環(huán)境會(huì)啟動(dòng)骨重塑,骨重塑過(guò)程中異常的血管生成又會(huì)加速軟骨退變,針刀干預(yù)可以通過(guò)糾正膝關(guān)節(jié)周圍力學(xué)失衡,減緩骨重塑,緩解異常血管生成,從而發(fā)揮軟骨保護(hù)作用。

    軟骨退變作為KOA的根本病理表現(xiàn),新生血管異常增生是軟骨破壞的始動(dòng)環(huán)節(jié),缺氧誘導(dǎo)的軟骨血管異常生成是KOA最早出現(xiàn)的病理特征之一,與KOA病程發(fā)展密切相關(guān)。最新研究[2]支持關(guān)節(jié)軟骨異常血管生成水平可反映關(guān)節(jié)軟骨退變及關(guān)節(jié)炎臨床癥狀的嚴(yán)重程度。前期研究已經(jīng)證實(shí)[14]KOA模型兔異常的關(guān)節(jié)應(yīng)力環(huán)境改變會(huì)加速軟骨退變。本課題組已從KOA軟骨細(xì)胞凋亡、軟骨細(xì)胞增殖、軟骨細(xì)胞合成及分解代謝等幾個(gè)方面證實(shí)了,針刀可以通過(guò)其力學(xué)效應(yīng)發(fā)揮對(duì)KOA軟骨細(xì)胞的保護(hù)作用。近年研究發(fā)現(xiàn),KOA患者關(guān)節(jié)軟骨間隙可見骨軟骨連接處存在異常血管生成并延伸至關(guān)節(jié)軟骨內(nèi),同時(shí)伴有軟骨細(xì)胞退變、軟骨基質(zhì)鈣化,由此可以明確抑制軟骨中血管生成可以成為治療KOA的新靶點(diǎn)[12,15]。

    本實(shí)驗(yàn)通過(guò)HE染色觀察到KOA發(fā)生時(shí),軟骨細(xì)胞代償性啟動(dòng)血管生成,軟骨下骨微血管侵入鈣化軟骨層,并隨著KOA病程發(fā)展,骨與軟骨交界處新生血管密度增加,同時(shí)潮線出現(xiàn)重復(fù)、結(jié)構(gòu)趨于紊亂甚至消失,部分新生血管逐漸突破潮線,侵入非鈣化軟骨層,最終蔓延至表層軟骨,這與Pesesse等[16]的發(fā)現(xiàn)相一致。與此同時(shí),骨軟骨交界處血管密度與軟骨退變嚴(yán)重程度直接相關(guān)。CD34作為最敏感的血管內(nèi)皮標(biāo)志物[16],其含量變化直接反映了骨關(guān)節(jié)炎軟骨組織血管的多少;CD105直接參與血管生成,其特異性極好[17]。MVD計(jì)數(shù)作為標(biāo)記血管生成的基本方法,MVD標(biāo)志著血管形成活動(dòng)效應(yīng)。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)免疫組化染色觀察鈣化軟骨層和非鈣化軟骨層CD34、CD105表達(dá),分別計(jì)算MVD值發(fā)現(xiàn),模型組、電針組和針刀組MVD值均依次遞減,且針刀干預(yù)療效顯著優(yōu)于電針,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。因此可以認(rèn)為針刀干預(yù)通過(guò)抑制CD34、CD105的表達(dá)以達(dá)到減少血管重建的效果。

    VEGF作為與血管生成關(guān)系最密切的細(xì)胞因子,可誘導(dǎo)新血管形成[18],直接參與KOA軟骨血管化,在關(guān)節(jié)炎發(fā)病機(jī)制研究中最為廣泛且最具靶向性。除了促進(jìn)KOA軟骨新血管形成外,VEGF還抑制軟骨中聚蛋白多糖和Ⅱ型膠原表達(dá)加速軟骨基質(zhì)降解[19],而軟骨基質(zhì)最主要的組成成分——聚蛋白多糖和Ⅱ型膠原的表達(dá)減少將導(dǎo)致軟骨退變。Saetan等[20]通過(guò)采集并檢測(cè)KOA患者的組織液證實(shí),其軟骨中VEGF表達(dá)水平顯著升高。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)酶聯(lián)免疫吸附檢測(cè)觀察血清及滑液中VEGF的表達(dá),發(fā)現(xiàn)KOA兔模型中血清及滑液VEGF表達(dá)量均顯著上調(diào),與模型組相比,針刀和電針干預(yù)可以顯著減少血清、滑液中VEGF含量,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,且針刀組VEGF表達(dá)水平顯著低于電針組。故可以認(rèn)為針刀干預(yù)是通過(guò)抑制血清及滑液中VEGF的表達(dá),從而達(dá)到減緩新血管生成的目的。

    因此,通過(guò)上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以認(rèn)為針刀干預(yù)可以通過(guò)“調(diào)筋”恢復(fù)關(guān)節(jié)良性應(yīng)力環(huán)境,有效抑制KOA軟骨血管異常生成,發(fā)揮軟骨保護(hù)作用從而“治骨”。

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