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      抑制HDAC11減輕OGD/R所致的HT22細(xì)胞損傷*

      2023-02-07 08:35:34鄭琪雪費(fèi)慧芝楊俊卿
      中國病理生理雜志 2023年1期
      關(guān)鍵詞:培養(yǎng)箱培養(yǎng)液氧化應(yīng)激

      鄭琪雪 , 楊 洋 , 費(fèi)慧芝 , 楊俊卿 △

      (1重慶醫(yī)科大學(xué),重慶 400016;2重慶醫(yī)科大學(xué)附屬婦女兒童醫(yī)院,重慶 400021;3重慶市婦幼保健院,重慶 400021)

      新生兒缺氧缺血性腦損傷(hypoxic-ischemic brain damage, HIBD)是由圍產(chǎn)期胎兒因缺乏血流或氣體交換障礙導(dǎo)致[1]。新生兒的大腦需要高水平的氧氣供應(yīng),因此對缺氧極為敏感。嚴(yán)重的HIBD導(dǎo)致諸多神經(jīng)系統(tǒng)后遺癥,包括智力遲鈍,認(rèn)知障礙,腦癱和癲癇等[2]。目前,臨床上主要采用亞低溫治療、對癥治療和營養(yǎng)支持等方法。HIBD的病理生理機(jī)制并不完全清楚,臨床治療效果并不理想,因此需深入探究其發(fā)展機(jī)制,尋找HIBD干預(yù)新靶點(diǎn)。

      組蛋白脫乙酰酶(histone deacetylases, HDACs)包含4類,家族成員眾多,發(fā)揮的功能作用并不相同。抑制Ⅰ類HDACs改善APP/PS1轉(zhuǎn)基因小鼠的β-淀粉樣蛋白沉積[3];抑制Ⅱ類HDACs調(diào)節(jié)組蛋白H2A及α-微管蛋白乙酰化水平改善腦缺血大鼠神經(jīng)元損傷[4-5];與Ⅰ類和Ⅱ類作用不同,Ⅲ類HDACs可能有神經(jīng)保護(hù)作用,抑制Sirt1(Ⅲ類)會加重小鼠腦缺血損傷,其機(jī)制與P5及P65乙酰化水平增加有關(guān)[6-7];HDAC11屬于第Ⅳ類中唯一的成員,在腦內(nèi)表達(dá)豐富,影響小鼠腦內(nèi)神經(jīng)細(xì)胞的發(fā)育,HDAC11是一種涉及多種細(xì)胞途徑的酶,但關(guān)于所涉及的分子機(jī)制仍不清晰[8],且HDAC11在不同環(huán)境中的調(diào)節(jié)作用呈現(xiàn)差異性。雖有研究表明[9],抑制HDAC11促進(jìn)抗炎因子白細(xì)胞介素10(interleukin-10,IL-10)的表達(dá),但另有研究顯示,敲除HDAC11基因會增加嗜中性粒細(xì)胞促炎因子腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor alpha, TNF-α)及IL-6的表達(dá)[10]。HDAC11在中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病的作用研究尚少,HDAC11在HIBD中是否發(fā)揮作用,是保護(hù)作用還是損傷性作用,其作用機(jī)制如何,這些均不清楚,值得研究。

      氧化應(yīng)激是氧化劑與抗氧化劑平衡的紊亂。由于新生兒的特性,更容易受到氧化應(yīng)激損傷。新生兒大腦富含脂肪酸,容易受到自由基和脂質(zhì)過氧化損傷,未成熟腦組織對自由基高度敏感且抗氧化功能不完善[11]。氧化應(yīng)激是HIBD發(fā)生后神經(jīng)元死亡的重要原因。HIBD發(fā)生后,細(xì)胞內(nèi)Ca2+、Na+和二磷酸腺苷(adenosine diphosphate, ADP)升高導(dǎo)致線粒體產(chǎn)生有害活性氧,導(dǎo)致多不飽和脂肪酸氧化成丙二醛(malondialdehyde,MDA),同時(shí)活性氧介導(dǎo)分子信號傳導(dǎo),其中轉(zhuǎn)錄因子p53激活產(chǎn)生促凋亡蛋白如BAX,促進(jìn)壞死和細(xì)胞凋亡[12]。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)及還原型谷胱甘肽(glutathione, GSH)保護(hù)細(xì)胞免受自由基的侵害,內(nèi)源性抗氧化物GSH的含量的增加減輕神經(jīng)損傷[13]。MDA,SOD,GSH是氧化應(yīng)激的標(biāo)志性物質(zhì)。

      小鼠HT22細(xì)胞氧糖剝奪/復(fù)糖復(fù)氧(oxygen-glucose deprivation/reoxygenation, OGD/R)能夠部分模擬HIBD的病理生理過程變化[14],因此本研究旨在觀察N'-十六烷基噻吩-2-碳酰肼(N'-hexadecylthiophene-2-carbohydrazide, SIS17)特異性抑制 HDAC11對OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞損傷的作用,并從酪氨酸激酶(Mer tyrosine kinase, MerTK)調(diào)控氧化應(yīng)激損傷和凋亡通路初步探討其機(jī)制。

      材料和方法

      1 細(xì)胞

      小鼠海馬區(qū)神經(jīng)元HT22細(xì)胞系購自上海中喬新舟生物科技有限公司。

      2 主要試劑

      DMEM高糖培養(yǎng)液、DMEM無糖培養(yǎng)液及0.25%胰蛋白酶購自Gibco;青霉素-鏈霉素溶液(C0222)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;胎牛血清購自蘇州依科賽生物科技有限公司;HDAC11特異性抑制劑SIS17(HY-128918)購自MedChemExpress;LDH(A020-2),SOD(A001-3),GSH(A006-2-1)和MDA(A003-1)試劑盒均購自南京建成生物工程研究所有限公司;細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(MA0220)購自大連美侖生物技術(shù)有限公司;抗β-Tubulin抗體(10068-1-AP)購自武漢三鷹生物技術(shù)有限公司;抗HDAC11抗體(bs-2894R)及抗 caspase12抗體(bs-23014R)購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司; 抗MerTK抗體(DF7344),抗ATF6抗體(DF6009)及抗Bax抗體(AF0120)均購自Affinity;HRP標(biāo)記山羊抗兔IgG購自北京蘭杰柯科技有限公司。

      3 實(shí)驗(yàn)儀器

      細(xì)胞培養(yǎng)箱(311,Thermo Scientific);三氣培養(yǎng)箱(3423,Thermo Scientific);低溫離心機(jī)(Icen-24R,Thermo Scientific);垂直電泳儀(041BR304570,BIORAD);成像儀(VLBL00D2, BIO-RAD)。

      4 實(shí)驗(yàn)方法

      4.1 細(xì)胞培養(yǎng) 完全培養(yǎng)液:10%胎牛血清,1%青霉素鏈霉素溶液,89%DMEM高糖培養(yǎng)液。細(xì)胞傳代:HT22細(xì)胞于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),密度達(dá)到85%時(shí)進(jìn)行傳代,棄置原完全培養(yǎng)液,PBS潤洗2次后加入0.25%胰蛋白酶于培養(yǎng)箱中消化1 min,添加適量完全培養(yǎng)液終止消化,吹打細(xì)胞成均一懸液,1 000 ×g離心4 min,取新配置完全培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,接種至新的培養(yǎng)瓶中。

      4.2 OGD/R模型建立及實(shí)驗(yàn)分組 培養(yǎng)HT22細(xì)胞至85%密度時(shí),除對照(control)組,其他各組棄去培養(yǎng)液后用PBS潤洗2次,添加工作體積DMEM無糖培養(yǎng)液并置于三氣培養(yǎng)箱(95% N2,1%O2,4% CO2)中進(jìn)行氧糖剝奪4 h,再更換為DMEM高糖完全培養(yǎng)液于普通培養(yǎng)箱復(fù)糖復(fù)氧24 h。根據(jù)本實(shí)驗(yàn)對HDAC11特異性抑制劑SIS17安全范圍篩查以及文獻(xiàn)報(bào)道SIS17具有劑量依賴性[15],本研究對SIS17劑量 的 設(shè) 置 為(SIS17-L:3×10-6mol/L,SIS17-M:1×10-5mol/L,SIS17-H:3×10-5mol/L)。本次研究中細(xì)胞實(shí)驗(yàn)分為5組:對照(control)組,模型(OGD/R)組,OGD/R+L組,OGD/R+M組和OGD/R+H組。

      4.3 MTT法檢測細(xì)胞活力 HT22細(xì)胞以每孔3 000個(gè)接種于96孔板,高中低劑量SIS17處理24 h后進(jìn)行OGD/R,每孔加入20 μL MTT溶液(5 g/L),37 ℃孵育4 h,低速離心,棄去培養(yǎng)液,每孔加入150 μL DMSO溶解甲瓚,于水平搖床避光震蕩15 min充分溶解,酶標(biāo)儀490 nm處測定吸光度(A)值,根據(jù)公式計(jì)算細(xì)胞活力,細(xì)胞活力(%)=[A值(實(shí)驗(yàn)組)-A值(空白組)]/[A值(對照組)-A值(空白組)]×100%,實(shí)驗(yàn)組:OGD/R,OGD/R+L,OGD/R+M,OGD/R+H;對照組:control;空白組:含完全培養(yǎng)液無細(xì)胞。

      4.4 細(xì)胞LDH測定 收集各組細(xì)胞培養(yǎng)液,依次加入雙蒸水,0.2 mol/L丙酮酸標(biāo)準(zhǔn)液,待測樣本,基質(zhì)緩沖液,輔酶I,混勻。37 ℃溫浴15 min,加入2,4-二硝基苯肼,混勻,37 ℃溫浴15 min,加入0.4 mol/L NaOH溶液混勻,室溫放置5 min,波長450 nm,酶標(biāo)儀測定吸光度值。

      4.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡率 將HT22細(xì)胞用不含EDTA的胰酶消化,1 000 ×g離心5 min,收集細(xì)胞,加入預(yù)冷PBS溶液洗滌離心2次,在細(xì)胞沉淀中加入結(jié)合緩沖液重懸細(xì)胞,加入5 μL Annexin VFITC和10 μL碘化丙碇(PI)染色液并混勻,室溫避光孵育15 min,使用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡率。

      4.6 TUNEL染色 用PBS潤洗HT22細(xì)胞,4%多聚甲醛室溫固定15 min,PBS潤洗,0.3% Triton X-100室溫反應(yīng)30 min,PBS潤洗,加入平衡緩沖液,室溫反應(yīng)40 min,倒掉液體加入緩沖液,37 ℃孵育1.5 h,PBS潤洗后,加入DAPI溶液復(fù)染10 min,PBS潤洗后,熒光顯微鏡下成像。200倍下選擇4個(gè)具有代表性的視野,計(jì)數(shù)陽性細(xì)胞數(shù)和陰性細(xì)胞數(shù),陽性細(xì)胞百分率%=陽性細(xì)胞總數(shù)/(陽性細(xì)胞總數(shù)+陰性細(xì)胞總數(shù))×100%,取平均值。

      4.7 SOD,GSH和MDA測定 收集各組細(xì)胞培養(yǎng)液,根據(jù)試劑盒說明書,參考文獻(xiàn)方法[16],于孔板加入相應(yīng)試劑,分別于450 nm和405 nm處測定SOD及GSH吸光度值。TBA法測定MDA,PBS潤洗并收集細(xì)胞,破碎細(xì)胞后根據(jù)試劑盒步驟操作,于532 nm處測定MDA吸光度值。

      4.8 Western blot檢測蛋白表達(dá)水平 收集細(xì)胞總蛋白,加入蛋白裂解液(RIPA∶PMSF∶磷酸酶抑制劑=100∶1∶2)經(jīng)破碎后低溫離心(4 ℃,12 000 ×g)15 min,取上清測蛋白濃度,按1∶4的比例加入5×蛋白上樣緩沖液,98℃變性15 min,取30 μg進(jìn)行上樣。蛋白經(jīng)電泳(90V,30 min;120 V,60 min)轉(zhuǎn)膜(250 mA,100 min)后經(jīng)5%脫脂奶粉封閉2 h,孵育Ⅰ抗4 ℃過夜,TBST洗3次每次5min,室溫孵育Ⅱ抗(1∶2 000),TBST洗3次,ECL發(fā)光液用于成像。抗體稀釋倍數(shù):兔多克隆抗體:HDAC11(1∶1 000),MerTK(1∶1 000),Bax(1∶1 000),caspase-12(1∶1 000)和 β-Tubulin(1∶1 000),HRP 標(biāo)記山羊抗兔 IgG(1∶4 000),Image Lab對圖像進(jìn)行灰度值分析。

      5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      使用GraphPad Prism7.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示。多組間比較采用單因素方差分析。P<0.05具備統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

      結(jié) 果

      1 HDAC11特異性抑制劑SIS17在HT22細(xì)胞上的安全范圍

      MTT法篩選HDAC11特異性抑制劑SIS17的安全范圍。在10-4~10-13mol/L范圍內(nèi),SIS17對HT22細(xì)胞活力的影響不顯著(P>0.05),見圖1A。OGD/R處理HT22細(xì)胞后,細(xì)胞數(shù)量減少,呈現(xiàn)損傷狀態(tài);不同濃度SIS17處理OGD/R細(xì)胞后,細(xì)胞數(shù)量增加,細(xì)胞狀態(tài)得到改善,見圖1B。

      Figure 1. Effect of HDAC11 inhibitor on viability and morphological of HT22 cells treated with OGD/R. A: cell viability detected by MTT assay; B: morphological alterations of HT22 cells. Mean±SEM. n=4.圖1 抑制HDAC11對小鼠HT22細(xì)胞活力及形態(tài)學(xué)的影響

      2 抑制HDAC11對OGD/R處理小鼠HT22細(xì)胞的存活率及LDH影響

      MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,相比于control組,OGD/R組小鼠HT22細(xì)胞的活力顯著降低(P<0.05);相比于OGD/R組,OGD/R+L組細(xì)胞活力有上升趨勢但無顯著性差異(P>0.05),OGD/R+M及OGD/R+H組細(xì)胞活力顯著升高(P<0.05),見圖2A。如圖2B所示,相比于control組,OGD/R組HT22細(xì)胞LDH活力顯著升高(P<0.01);相比于 OGD/R 組,OGD/R+L組,OGD/R+M組及OGD/R+H組HT22細(xì)胞LDH活力均顯著降低(P<0.05,P<0.01)。

      Figure 2. Effect of inhibiting HDAC11 on viability and LDH of HT22 cells treated with OGD/R. A: cell viability; B: LDH activity of HT22 cells; Mean±SEM. n=4. *P<0.05, **P<0.01 vs control group; #P<0.05, ##P<0.01 vs OGD/R group.圖2 抑制HDAC11對小鼠HT22細(xì)胞活力及LDH活力的影響

      3 抑制HDAC11對OGD/R處理的HT22細(xì)胞凋亡的影響

      為探究HDAC11特異性抑制劑SIS17對OGD/R處理小鼠HT22細(xì)胞凋亡的影響,流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,相比于control組(凋亡率6.71%),OGD/R組細(xì)胞凋亡率升高(凋亡率37.14%),相比于OGD/R組,OGD/R+L,OGD/R+M及OGD/R+H組細(xì)胞凋亡率降低(分別為:26.69%,16.64%,15.78%)(P<0.05,P<0.01,見圖3A)。如圖3B,TUNEL染色結(jié)果顯示,相比于control組,OGD/R組細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.01);相比于OGD/R組,OGD/R+H組細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。

      4 抑制HDAC11減輕OGD/R處理的HT22細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷

      Figure 3. Inhibition of HDAC11 ameliorate apoptosis of HT22 cells damaged by OGD/R. A: the apoptosis rate of HT22 cells was detected by flow cytometry; B: TUNEL staining, blue DAPI, red TUNEL (scale bar=100 μm). Mean±SEM. n=3. **P<0.01 vs control group; #P<0.05 vs OGD/R group.圖3 抑制HDAC11改善小鼠HT22細(xì)胞凋亡

      為探究HDAC11特異性抑制劑SIS17對OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞氧化應(yīng)激的影響。如圖4所示,相比于control組,OGD/R組超氧化物歧化酶(SOD)及谷胱甘肽(GSH)含量顯著降低(P<0.01,P<0.05),丙二醛(MDA)顯著升高(P<0.01),細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷明顯。相比于OGD/R組,OGD/R+L組和OGD/R+M組細(xì)胞的SOD及GSH含量有上升趨勢,MDA有降低趨勢但無統(tǒng)計(jì)學(xué)(P>0.05);相比于OGD/R組,OGD/R+H組SOD及GSH含量顯著升高(P<0.05),MDA含量顯著降低(P<0.05)。

      Figure 4. Inhibition ofHDAC11 ameliorate oxidative stress injury in HT22 cells damaged by OGD/R.A: SOD level; B: GSH level;C: MDA level. Mean±SEM. n=4.*P<0.05,**P<0.01 vs control group; #P<0.05 vs OGD/R group.圖4 抑制HDAC11改善小鼠HT22細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷

      5 抑制HDAC11對OGD/R處理的小鼠HT22細(xì)胞蛋白表達(dá)的影響

      如圖5所示,相比于control組,OGD/R組HDAC11,MerTK,caspase-12及Bax蛋白表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05,P<0.01)。相較于OGD/R組,OGD/R+L組及OGD/R+M 組Bax表達(dá)顯著降低(P<0.05,P<0.01),而HDAC11,MerTK和caspase-12蛋白表達(dá)水平 均 無 顯 著 性 差 異(P>0.05);OGD/R+H 組HDAC11,caspase-12及 Bax顯著降低(P<0.05,P<0.01),而MerTK蛋白表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05)。

      討 論

      Figure 5. Effect of HDAC11 inhibitor on protein expression of HDAC11, MerTK, caspase12, BAX in OGD/R treated with HT22 cells. Mean±SEM. n=3. *P<0.05, **P<0.01 vs control group; #P<0.05, ##P<0.01 vs OGD/R group.圖5 抑制HDAC11對小鼠HT22細(xì)胞蛋白表達(dá)的影響

      新生兒缺氧缺血性腦損傷是(HIBD)導(dǎo)致死亡和終身殘疾的主要原因,急需尋求新的治療靶點(diǎn)。小鼠HT22細(xì)胞是一種原代小鼠海馬神經(jīng)元培養(yǎng)物中永生化的親本HT4細(xì)胞的亞系,可以很好的體外模擬神經(jīng)元功能。HDACs抑制劑多為非選擇性抑制多個(gè)HDAC,不能針對性抑制特定的靶標(biāo)。而SIS17是一種靶向性HDAC11抑制劑,并不影響其他HDACs的活性及表達(dá)量[14]。本研究在小鼠HT22細(xì)胞上模擬HIBD疾病模型,并初步探討抑制HDAC11對HIBD的作用及機(jī)制。

      研究表明,HIBD的發(fā)生導(dǎo)致神經(jīng)遞質(zhì)釋放異常,小膠質(zhì)細(xì)胞受到刺激產(chǎn)生大量氧自由基,這些物質(zhì)通過氧化還原信號破壞血腦屏障完整性,啟動細(xì)胞凋亡,凋亡的細(xì)胞得不到及時(shí)清除會釋放細(xì)胞因子引起更強(qiáng)的級聯(lián)反應(yīng),從而導(dǎo)致神經(jīng)元的進(jìn)一步損傷[17-18]。新生兒因自身特性,更易受到凋亡及氧化應(yīng)激損傷,MerTK通路可抑制先天免疫反應(yīng)并促進(jìn)凋亡細(xì)胞的清除,緩解神經(jīng)元的進(jìn)一步損傷,因此針對MerTK調(diào)控凋亡及氧化應(yīng)激通路或可改善HIBD。本次實(shí)驗(yàn)研究中,我們顯示OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞活力顯著降低,LDH漏出及細(xì)胞凋亡率明顯增加的同時(shí),HDAC11及MerTK表達(dá)升高,凋亡蛋白caspase-12和Bax顯著上調(diào)。HDAC11特異性抑制能明顯增強(qiáng)細(xì)胞活力、降低細(xì)胞凋亡率,顯著下調(diào)caspase-12及Bax,而進(jìn)一步上調(diào)MerTK表達(dá)。有報(bào)道,HIBD發(fā)生后,小膠質(zhì)細(xì)胞通過TREM2上調(diào)吞噬功能介導(dǎo)突觸丟失,但適當(dāng)?shù)耐淌勺饔糜欣诰S持穩(wěn)態(tài)[19]。已有研究表明,局灶性腦缺血后,小膠質(zhì)細(xì)胞MerTK瞬時(shí)上調(diào)促進(jìn)凋亡細(xì)胞的清除維持腦內(nèi)穩(wěn)態(tài),而敲除MerTK導(dǎo)致凋亡碎片累積加重細(xì)胞損傷[20]。結(jié)合這些實(shí)驗(yàn)結(jié)果,我們認(rèn)為,OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞MerTK表達(dá)增加是一種保護(hù)性機(jī)制,而特異性抑制HDAC11可明顯改善OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞損傷,其機(jī)制可能通過進(jìn)一步上調(diào)MerTK,促進(jìn)凋亡細(xì)胞的清除,減輕凋亡細(xì)胞釋放細(xì)胞因子引發(fā)更激烈的級聯(lián)反應(yīng)。

      HIBD發(fā)生時(shí),細(xì)胞內(nèi)的活性自由基氧化生物分子破壞細(xì)胞脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和核酸,并在HIBD發(fā)生后啟動相關(guān)信號通路,導(dǎo)致細(xì)胞死亡和組織損傷[21]。MDA是脂質(zhì)過氧化的終產(chǎn)物之一,SOD和GSH具有協(xié)同抗氧化作用。有研究表明MerTK通路的激活能促進(jìn)小鼠原代巨噬細(xì)胞在氧化應(yīng)激損傷中存活[22]。敲除HDAC11基因調(diào)控HO-1及Nrf-2改善果糖誘導(dǎo)的小鼠心肌細(xì)胞凋亡,減少活性氧產(chǎn)生,改善氧化應(yīng)激損傷[23]。本次實(shí)驗(yàn)研究中,我們還發(fā)現(xiàn),OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞損傷、HDAC11及MerTK表達(dá)上調(diào)的同時(shí),細(xì)胞MDA含量顯著升高,SOD及GSH顯著降低;抑制HDAC11顯著降低OGD/R處理小鼠HT22細(xì)胞MDA含量,顯著升高SOD及GSH水平。綜合我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果及文獻(xiàn)報(bào)道,抑制HDAC11明顯改善OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞損傷的機(jī)制,可能還涉及通過進(jìn)一步升高M(jìn)erTK水平,進(jìn)而減輕氧化應(yīng)激損傷。

      總之,本實(shí)驗(yàn)研究表明,HDAC11上調(diào)MerTK表達(dá),進(jìn)而抑制細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激反應(yīng),參與OGD/R致小鼠HT22細(xì)胞損傷。但是需要進(jìn)一步的體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)加以深入闡明,并明確HDAC11對MerTK是直接或間接調(diào)控的作用。

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