牛文霞
(廣州花卉研究中心,廣東 廣州 510360)
觀賞植物具有一定的觀賞價值,是改善美化生活環(huán)境的草本和木本植物的總稱。我國的觀賞植物資源非常豐富,被譽為“世界園林之母”?;ㄋ幣囵B(yǎng)是指用植物組織培養(yǎng)技術(shù),把發(fā)育到一定階段的花藥接種到人工培養(yǎng)基上,以改變花藥內(nèi)花粉粒的發(fā)育途徑,形成胚狀體或愈傷組織,隨后分化成完整的植株[1]。花藥培養(yǎng)誘導獲得的花粉植株是從減數(shù)分裂后的小孢子發(fā)育而來,因此一般為單倍體,再經(jīng)染色體加倍處理后即為純合二倍體?;ㄋ幣囵B(yǎng)具有可以在較短的時間內(nèi)獲得基因純合的植株、縮短育種年限、后代遺傳變異類型豐富、選擇效率高等優(yōu)點,因此成為觀賞植物重要的育種技術(shù)手段之一[2]。文章分析總述了觀賞植物花藥培養(yǎng)技術(shù)的研究進展和影響因素,以期為觀賞植物產(chǎn)業(yè)發(fā)展提供參考。
自1964 年Guha&Maheshwari 從毛葉曼陀羅的離體花藥中成功誘導出單倍體植株之后[3],國內(nèi)外紛紛開展花藥研究。目前,花藥離體培養(yǎng)技術(shù)已經(jīng)在許多觀賞植物上得到應(yīng)用,花藥培養(yǎng)技術(shù)也日趨完善,成為一種快速有效的育種途徑。
李艷敏等(2021)[4]用粉玉奴芍藥離體花藥,在不同濃度2,4-D 培養(yǎng)基中,研究愈傷誘導率、體胚發(fā)生和成苗發(fā)生的影響,在成苗培養(yǎng)基中得到了單倍體材料。田丹青等(2020)[5]以處于單核期的紅掌花藥為材料,經(jīng)愈傷組織途徑成功獲得紅掌單倍體新材料。段青等(2013)[6]以洋桔梗48 個品種為材料,成功得到單倍體材料。王偉光(2005)[7]以地被菊為材料研究單倍體培養(yǎng),鏡檢結(jié)果表明地被菊花藥培養(yǎng)獲得的單倍體植株所占比例為2%~3%。Jian L J&Chen XY(2005)[8]使用中國水仙的花藥作為愈傷組織誘導和植物再生的外植體,為其他水仙花的離體大量繁殖提供新思路。
花藥培養(yǎng)已經(jīng)與常規(guī)雜交育種、遠緣雜交育種、誘變育種和轉(zhuǎn)基因技術(shù)相結(jié)合,發(fā)展成了一套技術(shù)體系。經(jīng)過50 年的研究發(fā)展,花藥培養(yǎng)已經(jīng)在許多觀賞植物上取得成功。對于觀賞植物,應(yīng)用花藥培養(yǎng)獲得單倍體,進而獲得純合二倍體,再進行無性繁殖方式保持優(yōu)良的基因型,具有十分重要的價值。
目前主要有兩種獲得單倍體的途徑。一種是自然條件下發(fā)生的孤雌生殖或孤雄生殖,易受天氣等因素影響,單倍體植株的發(fā)生率非常低[9-10]。另一種是人工誘導單倍體,主要有未受精的雌核(未受精的子房和胚珠等)和雄配子體(花粉和花藥)離體培養(yǎng)。對未受精的子房和胚珠的研究較多地集中在禾本科、茄科、葫蘆科等,然而在觀賞植物中進行誘導單倍體的研究較少[11-17]?;ǚ郏ㄐ℃咦樱┡囵B(yǎng)相對來說操作較為復雜,而花藥培養(yǎng)為器官培養(yǎng),是獲得單倍體的一種重要方式[18]。
眾多花藥培養(yǎng)研究表明,同一物種的不同亞種乃至品種在誘導率上表現(xiàn)出極大的差異。
段青等(2013)研究洋桔?;ㄋ庪x體培養(yǎng)發(fā)現(xiàn),洋桔?;ㄋ幱鷤T導率與植株品種的基因型密切相關(guān),其胚狀體誘導率差異也較大。王延玲等(2006)[19]用仙客來雜交種和后代品種進行花藥離體培養(yǎng)發(fā)現(xiàn),雜交種的愈傷誘導率高于后代的誘導率,可能是由于不同的基因型導致小孢子發(fā)育的方向不同。褚云霞等(2002)[20]以6 個百合品種花藥為外植體進行組織培養(yǎng)誘導產(chǎn)生愈傷組織,研究表明,百合花藥誘導愈傷組織的能力存在顯著的基因型差異。代色平和包滿珠(2003)[21]在研究矮牽?;ㄋ庪x體培養(yǎng)中提到基因型是決定矮牽牛花藥培養(yǎng)誘導率的重要因素。
花藥發(fā)育時期對于花藥培養(yǎng)至關(guān)重要,已在所有的花藥培養(yǎng)中得到證實。因此,花藥發(fā)育時期的確定是花藥培養(yǎng)的關(guān)鍵步驟。一般來說,植物在上午時細胞處于旺盛的分裂期,是取材的最佳時候。
田丹青等(2020)以處于單核期的紅掌花藥為材料,成功獲得紅掌單倍體。褚云霞等(2001)[22]在百合的花藥研究中發(fā)現(xiàn)小孢子最適培養(yǎng)時期為單核期。K.C.Engvild(1973)[23]研究表明,處于單核期的矮牽牛小孢子培養(yǎng)易獲得單倍體,雙核期易獲得二倍體,而雙核晚期易產(chǎn)生三倍體植株。王延玲等(2004)[24]研究仙客來花藥培養(yǎng)時,選用花粉發(fā)育時期為單核靠邊期的材料進行花藥培養(yǎng)研究。段青等(2013)研究洋桔?;ㄋ幣囵B(yǎng)時,也是采用單核靠邊期的洋桔?;ɡ龠M行花藥培養(yǎng)。朱向濤等(2010)[25]研究表明,在牡丹花藥培養(yǎng)中,處于單核期的材料愈傷誘導率較高。
不同生育期的花粉培養(yǎng)效應(yīng)差別較大。對大多數(shù)觀賞植物來說,用單核期的花粉培養(yǎng)易產(chǎn)生單倍體植株。在培養(yǎng)花粉之前,應(yīng)制片鏡檢以確定花粉發(fā)育時期,找出與花粉發(fā)育時期相應(yīng)的形態(tài)學指標,運用一些簡單可靠的植株外形、花蕾或花藥的形態(tài)特征來確定花粉發(fā)育時期。
小孢子形成和發(fā)育是一個連續(xù)的過程,有研究將紅掌小孢子形成和發(fā)育過程分為小孢子母細胞形成期、小孢子母細胞減數(shù)期、小孢子早期、小孢子中期、小孢子晚期、二胞花粉期和成熟花粉期等幾個階段。在紅掌花藥培養(yǎng)中,可以根據(jù)紅掌肉穗花序的發(fā)育特征來大致確定花藥的發(fā)育時期。四分體期的花序外部特征是苞片未展,小花呈淡紅色;小孢子時期對應(yīng)的是苞片即將展開到完全展開,小花紫紅色,此時柱頭還未伸出;當柱頭伸出后,小孢子進入二胞花粉期。小孢子發(fā)育時期與花序長度沒有必然的關(guān)系。
在花藥培養(yǎng)前,對花芽或者花藥進行預(yù)處理能有效提高花藥愈傷誘導率,其中最有效的是低溫處理[26-27]。一般耐寒植物比喜溫植物可耐受較低的溫度。低溫處理可以打破正常的有絲分裂,改變紡錘絲方向,破壞紡錘絲的蛋白,最終阻礙紡錘絲的形成,使得花粉朝著胚胎的方向發(fā)育,從而導致組織分化。低溫處理可以延緩花粉退化,維持花粉發(fā)育的生理環(huán)境[28]。低溫處理還可以明顯提高花粉愈傷組織的質(zhì)量和產(chǎn)量,例如對曼陀羅花芽進行低溫預(yù)處理后顯著提高了愈傷誘導率[29]。代色平和包滿珠(2004)[30]研究認為,低溫預(yù)處理能顯著提高矮牽?;ㄋ幍恼T導率。萬壽菊花藥培養(yǎng)低溫預(yù)處理4 ℃時處理7 d,溫度7~8 ℃時則需要處理8~10 d。但對百合低溫預(yù)處理沒有效果。因此,最佳處理溫度和時間因材料而異,溫度較低需要放置較短的時間,溫度較高需要放置較長的時間。
目前用于觀賞植物花藥培養(yǎng)的基本培養(yǎng)基有MS、N6、Nitch、White、B5 等。培養(yǎng)基的狀態(tài)有固體、液體和固液混合體。通常來說,液體培養(yǎng)基更有利于花粉啟動和誘導愈傷,也有利于消除花藥壁的抑制。在培養(yǎng)小孢子時,液體培養(yǎng)基和固液混合培養(yǎng)基更有利于小孢子的游離與培養(yǎng)。在花藥培養(yǎng)中,固體培養(yǎng)基更適合于絕大部分觀賞植物的花藥離體培養(yǎng),在固體培養(yǎng)條件下花藥愈傷誘導率明顯優(yōu)于液體培養(yǎng)[31-34]。
在培養(yǎng)基的各種成分中,植物激素是愈傷組織產(chǎn)生和分化的關(guān)鍵性因素,花粉發(fā)育成愈傷組織還是胚狀體很大程度上取決于培養(yǎng)基中的激素種類和濃度,但這些激素有哪些互作作用還沒有確定。大量研究證明,適當加入生長激素(2,4-D)和分裂素(KT 和6-BA)有利于促進愈傷誘導,而在后期植物成苗階段則需要較低的生長素和細胞分裂素。
曹曉燕等(2003)[35]研究認為,配合使用6-BA 和NAA 可以提高花藥愈傷誘導率,若單獨使用6-BA 花藥愈傷誘導率為0。朱向濤等(2010)研究認為,在牡丹花藥培養(yǎng)中,2,4-D 發(fā)揮著重要作用,其誘導愈傷組織的頻率隨著濃度的增大而增加,但誘導出的愈傷組織的分化能力顯著降低,后期可能會褐化或死亡。該結(jié)果在百合的花藥培養(yǎng)中也得到了證明。李甫等(2007)[36]研究認為,在萬壽菊花藥培養(yǎng)中,NAA 對愈傷組織的誘導率要高于2,4-D,而作為細胞分裂素的KT 和6-BA 則沒有明顯差異。
碳源是植物組培中的重要元素,蔗糖是多數(shù)植物花藥培養(yǎng)研究中最常見的碳源。近年來,葡萄糖、果糖被越來越多地應(yīng)用。蔗糖的濃度過高或過低都會影響植物愈傷組織的形成,可能與花粉細胞的滲透壓有關(guān)。在對紫荊、牡丹等植物的花藥培養(yǎng)中,蔗糖濃度在10%~15%,愈傷誘導率較高;在對毛刺槐的花藥培養(yǎng)中,蔗糖濃度從30 g/L 增加至90 g/L,愈傷誘導率也隨之增加。一般在花藥培養(yǎng)中采用蔗糖濃度3%~15%。
在花藥培養(yǎng)過程中,也會加入一些谷氨酸、水解乳蛋白等來提高胚狀體的誘導。也會給培養(yǎng)基中加入活性炭,通過調(diào)節(jié)培養(yǎng)基中元素的比例,促進胚狀體形成?;钚蕴靠梢蕴岣咧参锏某雒缏?,對植株的根長、根數(shù)、苗高、鮮重均有影響。在花藥培養(yǎng)愈傷誘導階段,花藥會不斷釋放褐色物質(zhì),導致花藥逐漸變褐死亡,從而影響愈傷組織的誘導形成。一般為防止愈傷組織褐化,通常會在培養(yǎng)基中適當加入一些維生素、椰汁等[37]。
在植物花藥培養(yǎng)中,光照、溫度對愈傷組織的形成和分化起著較大作用?;ㄋ幣囵B(yǎng)不同時期對光照的需求也不同。在花藥愈傷組織誘導階段若光照較強和溫度較高,均會提高氧化酶的活性,從而促進酚類物質(zhì)氧化而引起材料褐化。大多數(shù)研究證明,在誘導愈傷和胚胎時期適宜進行暗培養(yǎng)或者散射光培養(yǎng),在后期幼苗分化階段需進行強光培養(yǎng)。
盡管花藥培養(yǎng)已在許多觀賞植物中取得了較大進展,但仍得不到廣泛應(yīng)用。由于誘導頻率及分化率較低,花藥壁、花絲等二倍體細胞的干擾,白化苗問題,培養(yǎng)過程中污染性高、重復性差、增殖慢、容易褐化死亡,至今尚未建立一套高效的花培再生體系,對花藥培養(yǎng)中脫分化啟動機理以及花藥壁的影響還缺乏認識。在后期對花藥培養(yǎng)出的植株進行準確的倍性鑒定是至關(guān)重要的環(huán)節(jié)??赏ㄟ^分子標記對控制花培能力的基因進行組合,提高花培的誘導率,建立穩(wěn)定且可重復的培養(yǎng)體系。應(yīng)結(jié)合各種影響因素,尋找高效的組培技術(shù),將雜交育種、抗病育種、誘變育種、分子育種等相結(jié)合,拓寬花培育種的應(yīng)用領(lǐng)域,使花培技術(shù)得到廣泛應(yīng)用。