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    產(chǎn)抗菌脂肽解淀粉芽孢桿菌wxy-b3的抑菌活性及其分離鑒定

    2022-12-01 03:37:36廖思晨王旭陽龔國利
    陜西科技大學學報 2022年6期

    廖思晨, 田 露, 王旭陽, 龔國利

    (陜西科技大學 食品科學與工程學院, 陜西 西安 710021)

    0 引言

    隨著生物技術的發(fā)展,人們開始重視生物安全及防控治理等問題.目前,化學品的廣泛使用不僅會破壞微生物的生態(tài)平衡,還會導致耐藥菌株的出現(xiàn)、污染地下水和人類健康風險.因此,迫切需要開發(fā)新的環(huán)境友好型產(chǎn)品來替代化學藥品,以防控各種有害生物[1].

    微生物脂肽是一種新型生物活性分子,主要由芽孢桿菌生產(chǎn)的分子量為700-2 000 Da的天然小分子肽.它們大多能與細胞膜互相作用,表現(xiàn)出抗菌和細胞抑制活性,具有抗微生物、抗腫瘤、表面活性強、易降解、不易誘發(fā)耐藥性、對低pH環(huán)境和高溫耐受性好等功能和特性.因此,脂肽化合物在植物生物防治、化妝品、制藥、食品、飼料和洗滌劑等領域受到高度關注[2].在農(nóng)業(yè)上可用于生物防治,具有定殖、促生長及拮抗作用,可誘導植物系統(tǒng)獲取抗性,啟動免疫反應.此外,它還可以用作抗生素、飼料添加劑、乳化劑和發(fā)泡劑等[3-5].Kumar等[6]研究了解淀粉芽孢桿菌RHNK22產(chǎn)生的化合物Iturin A,該化合物對農(nóng)業(yè)害蟲之一斜紋夜蛾(Spodopteralitura)具有很強的抑制作用.Wafa等[7]報道了由假單胞菌屬細菌(Pseudomonassp.)和伯克霍爾德氏菌(Burkholderiasp)產(chǎn)生的微生物脂肽,可以作為殺蟲劑、除草劑、殺蟲劑和殺菌劑的佐劑,能夠安全的應用到生物農(nóng)藥中.

    由于脂肽天然安全和優(yōu)異的抗菌性能,市場對其需求不斷激增,新型脂肽化合物的發(fā)現(xiàn)數(shù)量也呈指數(shù)增長,在生物安全范疇具有一定的研究價值和應用前景.本研究旨在從特殊環(huán)境堿蓬中分離具有防治致病菌潛力的脂肽wxy-b3菌株,為其進一步開發(fā)和應用提供了理論基礎.

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料及儀器

    1.1.1 植物樣品

    植物堿蓬組織取自于陜西省榆林市鹽堿地.

    1.1.2 指示菌

    大腸桿菌(Escherichiacoli)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)、小麥赤霉病菌(Fusariumgraminearum)、馬鈴薯干腐病菌(Fusariumsambucinum)、番茄灰霉病菌(Botrytiscinerea)和蘋果腐爛病菌(Cytosporamandshurica).凍存菌種保藏于-80 ℃冰箱中.

    1.1.3 主要試劑

    磷酸氫二鈉、半胱氨酸、乙酸、甘露醇、氯仿(天津市東麗區(qū)天大化學試劑廠),氯化鉀、茚三酮(天津市天力化學試劑有限公司),胰蛋白胨、牛肉浸膏(北京奧博星生物技術有限公司).

    1.1.4 主要儀器

    THZ-98A恒溫振蕩器(上海一恒科學儀器有限公司),BIS-910凝膠成像儀(北京東勝創(chuàng)新生物有限公司),DYY-11電泳儀(北京市六一儀器廠),UV-5200紫外分光光度計(上海分析儀器有限公司).

    1.2 實驗方法

    1.2.1 堿蓬內(nèi)生菌的分離

    將新鮮堿蓬的根、莖、葉以75%酒精沖洗,放入5% NaClO溶液中表面消毒5 min,隨后在Na2S2O3溶液中浸泡中和3 min,使用無菌水沖洗2-3次,并以最后一次作為沖洗對照.稱取1 g左右消毒后的堿蓬組織,加入5 mL無菌水在研缽內(nèi)研磨均勻.再吸取100 μL的上清液均勻涂布于不同鹽(NaCl)濃度(0%、3%、5%、10%)的LB固體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)18 h.挑取不同顏色、形態(tài)的菌落于相應鹽濃度的細菌培養(yǎng)基平板上進行劃線培養(yǎng),培養(yǎng)至獲得單菌落擴大培養(yǎng)后轉(zhuǎn)接于甘油凍存管中,-80 ℃凍存.

    1.2.2 堿蓬內(nèi)生菌的抑菌活性

    (1)內(nèi)生菌菌株的發(fā)酵上清液制備:挑取內(nèi)生菌菌株的單菌落于LB液體培養(yǎng)基中37 ℃培養(yǎng)24 h,6 000 rpm離心10 min后取上清液作為樣品使用.

    (2)牛津杯法[8]測定內(nèi)生菌對細菌的抑菌活性:接種5%的細菌指示菌,37 ℃振蕩培養(yǎng)至細胞濃度為108CFU/mL (OD600 nm=0.5).待培養(yǎng)皿中水瓊脂稍凝固后放入無菌牛津杯,使指示菌液與冷卻至約45 ℃的LB固體培養(yǎng)基以3%的比例混合,倒在水瓊脂上.凝固后,吸取100 mL樣品,37 ℃培養(yǎng)18 h后察看有無抑菌圈.

    (3)濾紙片法[9]測定內(nèi)生菌對真菌的抑菌活性:用無菌棉簽蘸取孢子及菌絲,輕輕按壓至改良的馬丁固體平板上,30 ℃培養(yǎng)2~3 d,直至平板中心長出直徑約1.5~2 cm的菌落.將直徑約1 cm的無菌濾紙片浸入發(fā)酵上清液中,稍干后將濾紙片放入菌落周圍.30 ℃培養(yǎng)2~3 d觀察是否形成抑菌圈.

    1.2.3 脂肽合成基因的擴增

    根據(jù)芽孢桿菌脂肽家族的生物合成基因簇,在生物工程(上海)有限公司合成Surfacins,F(xiàn)engycins,Iturins引物,序列見表1所示.參照侯華[10]的改進方案進行PCR擴增:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性30 s;58 ℃復性60 s;72 ℃延伸90 s;循環(huán)30次;72 ℃延伸10 min.

    表1 部分脂肽基因的引物

    1.2.4 薄層色譜層析(TLC)

    內(nèi)生菌菌株的發(fā)酵上清液制備方法同1.2.2.配制10 mL配比為氯仿∶甲醇∶冰醋酸∶水=65∶30∶4∶4的溶液,靜置分層取下層清液作為展開劑[11].而后在距離TLC板底部約1 cm處畫一條直線,在直線上等間隔點四個點用毛細玻璃管吸取樣品點樣,干燥后點樣2~3次.待樣品干燥后,將TLC板傾斜放入展層缸中,吸入約5 mL展開劑沒過底部.用玻璃板蓋住頂蓋,防止溶劑揮發(fā).

    1.2.5 菌種鑒定

    (1)菌落形態(tài)學觀察

    將分離得到的單菌株wxy-b3在含3% NaCl的LB固體培養(yǎng)基上劃線,37 ℃培養(yǎng)18 h,察看wxy-b3菌落的形態(tài)、顏色、大小和透明度等外觀特征.

    (2)掃描電鏡

    參照Cai等[12]描述的方法并進行改良.按照1.2.2中所述的方法獲得菌懸液(OD600nm=0.5),離心后向菌體沉淀中加入2.5%戊二醛溶液,4 ℃靜置固定12 h,使用PBS洗濯菌體2-3次,再用30%、50%、70%、80%、90%和100%濃度的乙醇溶液脫水菌體,每次10 min.隨后重懸于乙酸異戊酯中30 min,6 000 rpm離心10 min后在烘箱中烘干2 h.最后,用牙簽移取適量樣品粘在載物臺上,渡金后進行電鏡觀察(MLA 650,FEI,Hillsboro,USA).

    (3)生理生化指標

    依據(jù)《伯杰氏細菌鑒定手冊》[13]和《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[14]中的方法進行測定.

    (4)16S rDNA鑒定

    根據(jù)邢旋等[15]的改進方法實施16S rDNA的擴增.將從細菌基因組提取試劑盒中提取各菌株的DNA為模板,用細菌16S rDNA序列的通用引物27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)以及1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)用于擴增.PCR反應體系為:2 μL100 ng/μL DNA模板、1 μL10.74 nmol上游引物、1 μL10.69 nmol下游引物、10 μL Mix酶和6 μL ddH2O.其中DNA模板為提取的菌株基因組DNA.

    所獲取的PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,并送至生物(上海)公司測序.利用NCBI比對得到菌株16S rDNA序列,以及相似序列的其他菌株序列.MEGA 7.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)進化樹.

    2 結(jié)果與討論

    2.1 堿蓬內(nèi)生菌菌種庫的構(gòu)建

    將耐鹽植物堿蓬的根、莖和葉置于含0%、3%、5%、10% NaCl的LB固體培養(yǎng)基中,分別分離得到了21株內(nèi)生細菌和24株內(nèi)生真菌.其中,從0% NaCl的LB固體培養(yǎng)基中篩選出9株內(nèi)生細菌,命名為wxy-b(1~5、18~21),如圖1(a)~(e)、(r)~(u)所示.從3% NaCl的LB固體培養(yǎng)基中篩選得到6株內(nèi)生細菌,命名為wxy-b(6~11),如圖1(f)~(k)所示.從5% NaCl的LB固體培養(yǎng)基中篩選出4株內(nèi)生細菌,命名為wxy-b(12~13、16~17),如圖1(l)~(m)、(p)~(q)所示.從10% NaCl的LB固體培養(yǎng)基中篩選得到2株內(nèi)生細菌,命名為wxy-b(14~15),如圖1(n)~(o)所示.

    圖1 堿蓬內(nèi)生細菌

    另外,從0% NaCl改良的馬丁培養(yǎng)基中篩選得到一株內(nèi)生真菌,命名為wxy-f22,如圖2(v)所示.從3% NaCl的改良馬丁培養(yǎng)基中篩選出10株內(nèi)生真菌,命名為wxy-f(1~9、23),如圖2(a)~(i)、(w)所示.從5% NaCl的改良馬丁培養(yǎng)基中篩選出7株內(nèi)生真菌,命名為wxy-f(10~17),如圖2(j)~(q)所示.從10% NaCl的改良馬丁培養(yǎng)基中篩選得到6株內(nèi)生細菌,命名為wxy-f(18~21、24),如圖2(r)~(u)、(x)所示.

    圖2 堿蓬內(nèi)生真菌

    2.2 堿蓬內(nèi)生菌抑菌活性

    為了檢測內(nèi)生菌株的次生代謝產(chǎn)物是否具有抑菌活性,本文利用部分指示菌對21株內(nèi)生細菌和24株內(nèi)生真菌的代謝產(chǎn)物進行抑菌檢測.結(jié)果發(fā)現(xiàn)4株內(nèi)生細菌和7株內(nèi)生真菌的代謝產(chǎn)物均具備抑菌作用,但大多菌株只有窄譜的抑菌活性.如表2所示,細菌wxy-b10和12只抗蘋果腐爛病菌,真菌wxy-f2、3和9只抗番茄灰霉病菌,真菌wxy-f18和19僅有馬鈴薯干腐病菌抑制活性.細菌wxy-b4對小麥赤霉病菌和蘋果腐爛病菌有抑制活性,真菌wxy-f16和22對番茄灰霉病菌和馬鈴薯干腐病菌有抑制作用.這些菌株大多具備抑制植物病原真菌生長的活性.其中,細菌wxy-b3表現(xiàn)出較廣譜的抗菌活性,對大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、小麥赤霉病菌、馬鈴薯干腐病菌和蘋果腐爛病菌等均具有抑制作用.

    表2 堿蓬內(nèi)生菌抑菌譜

    2.3 脂肽合成基因的PCR擴增結(jié)果

    對上述具有抑菌活性的菌株進行脂肽合成基因的PCR擴增結(jié)果顯示,只有菌株wxy-b3含有脂肽生物合成相關基因,見圖3所示.該菌株含有Iturin家族的ituD和bamC生物合成基因,擴增片段大小為750~1 000 kb,而Fengycin家族的fenA、fenB、fenD基因和Surfacin家族的srfA基因未擴增出.依據(jù)脂肽生物合成基因擴增結(jié)果,推斷出菌株wxy-b3可能產(chǎn)生Iturin家族的脂肽Iturin A和Bacillomycin D.

    圖3 菌株wxy-b3脂肽生物合成基因的PCR產(chǎn)物電泳圖

    2.4 TLC分析

    菌株wxy-b3發(fā)酵上清液的TLC分析見圖4所示.結(jié)果顯示,品層析后硅膠板上出現(xiàn)4個淡黃色斑點.根據(jù)氨基酸或肽與茚三酮在加熱條件下產(chǎn)生紫紅色或黃色的原理[16],可以得知菌株wxy-b3的發(fā)酵上清液中至少含4種蛋白質(zhì)或肽類產(chǎn)物,證明菌株wxy-b3有產(chǎn)生蛋白質(zhì)或肽的能力.由于菌株wxy-b3具有Iturin A和Bacillomycin D的合成基因,因此可能含脂肽化合物.此外,茚三酮與脯氨酸和羥脯氨酸反應生成了黃色物質(zhì),這表明菌株wxy-b3產(chǎn)生的蛋白質(zhì)或肽的氨基酸組成中含有脯氨酸.

    圖4 wxy-b3菌株發(fā)酵上清液的薄層色譜層析結(jié)果

    2.5 菌種鑒定結(jié)果

    菌落的形態(tài)特征和細胞形態(tài)見圖5所示.根據(jù)菌落形態(tài)和掃描電鏡可以看出菌株wxy-b3為桿狀菌體,大小為0.6~0.7 μm×3~4 μm.LB培養(yǎng)基上出現(xiàn)白色菌落,有裂紋,邊緣粗糙,表面干燥不透明.

    生理生化特征見表3所示.結(jié)果顯示,過氧化氫酶試驗、淀粉酶試驗、MR試驗、明膠水解均為陰性,氧化酶試驗、脲酶試驗、酯酶試驗、酪素降解試驗、吲哚產(chǎn)生試驗、硫化氫產(chǎn)生試驗、硝酸鹽還原試驗、V-P試驗結(jié)果均為陽性.說明菌株wxy-b3能分解利用甘露糖、甘露醇、蔗糖、葡萄糖、可溶性淀粉等糖醇類物質(zhì)生長.這表明菌株wxy-b3具備《伯杰細菌鑒定手冊》和《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》中常見芽孢桿菌屬的特征.

    圖5 wxy-b3菌株的菌落及掃描電鏡

    表3 菌株wxy-b3的生理生化特征

    通過PCR擴增菌株wxy-b3的16S rDNA,獲得大小為1 000~1 500 kb的條帶,見圖6所示.公司測序后獲得長度為1 488 bp的16S rDNA序列,其NCBI數(shù)據(jù)庫登錄號為:SUB 10918382 Bacillus OM189446,見圖7所示.經(jīng)BLAST比對后構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,發(fā)現(xiàn)菌株wxy-b3與芽孢桿菌屬成簇,與B.amyloliquefaciens(IMA10)的同源性最高,達到100%,如圖8所示.其構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹所用序列信息如表4所示.

    圖6 菌株wxy-b3 16S rDNA的PCR產(chǎn)物電泳圖

    圖7 菌株wxy-b3的16S rDNA 堿基序列

    圖8 菌株wxy-b3的系統(tǒng)進化發(fā)育樹

    表4 構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹所用序列信息

    因此,菌株wxy-b3為解淀粉芽孢桿菌B.amyloliquefaciens.

    3 結(jié)論

    本研究從植物堿蓬組織中分離得到具有產(chǎn)脂肽能力的植物內(nèi)生菌株,對其發(fā)酵產(chǎn)物進行了抑菌活性測定,發(fā)現(xiàn)其對大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、小麥赤霉病菌、番茄灰霉病菌、馬鈴薯干腐病菌和蘋果腐爛病菌等均具有抑制活性,并對其進行脂肽合成基因的PCR擴增,其中菌株wxy-b3含有Iturin家族脂肽的合成基因.繼而對菌株wxy-b3進行了TLC分析,發(fā)現(xiàn)能產(chǎn)生4種含有脯氨酸的蛋白質(zhì)或肽類組分.因此,菌株wxy-b3可確定具有產(chǎn)生抗菌脂肽的能力,推測其可以產(chǎn)生Iturin家族脂肽.并經(jīng)過形態(tài)學察看、生理生化實驗、16S rDNA鑒定,將菌株wxy-b3歸類為解淀粉芽孢桿菌(B.amyloliquefaciens).本文為菌株wxy-b3的進一步開發(fā)和應用提供了理論基礎.

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