陸旻雅,劉亞麗,張麗,徐英春
中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)院檢驗(yàn)科,侵襲性真菌病機(jī)制研究與精準(zhǔn)診斷北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100730
隨著抗菌藥物的廣泛應(yīng)用,細(xì)菌耐藥性問題逐漸成為臨床治療和防控感染性疾病的重大挑戰(zhàn),越來越多的超級(jí)細(xì)菌嚴(yán)重威脅著人類健康。2019年,美國疾病控制和預(yù)防中心(Centers for Disease Control and Prevention,CDC)耐藥報(bào)告中將碳青霉烯類耐藥不動(dòng)桿菌屬、碳青霉烯類耐藥腸桿菌目細(xì)菌、耐藥淋病奈瑟菌、艱難梭菌等耐藥菌列入“緊急威脅(urgent threats)”[1]。本文結(jié)合美國臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)、歐洲藥敏試驗(yàn)委員會(huì)(European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing,EUCAST)及我國的藥敏試驗(yàn)相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),對(duì)目前臨床主要細(xì)菌耐藥表型的分子機(jī)制、檢測(cè)方法及結(jié)果解讀進(jìn)行介紹[2~4]。
超過90%的葡萄球菌屬菌株均產(chǎn)生青霉素酶,多由blaZ基因編碼,可水解青霉素類成份,表現(xiàn)為對(duì)不耐酶青霉素類抗菌藥物耐藥,但對(duì)耐酶青霉素類(如苯唑西林)、頭孢菌素類藥物敏感[5]。
當(dāng)青霉素最低抑菌濃度(minimum inhibitory concentration,MIC)≤0.12μg/ml或紙片擴(kuò)散法的抑菌圈直徑>29mm時(shí),應(yīng)進(jìn)一步采用青霉素抑菌圈邊緣試驗(yàn)(僅用于金黃色葡萄球菌)、經(jīng)誘導(dǎo)的頭孢硝噻吩試驗(yàn)(金黃色葡萄球菌和包括路鄧葡萄球菌在內(nèi)的凝固酶陰性葡萄球菌)檢測(cè)葡萄球菌β~內(nèi)酰胺酶。β~內(nèi)酰胺酶檢測(cè)陰性提示菌株對(duì)青霉素類及其他β~內(nèi)酰胺類抗菌藥物敏感,β~內(nèi)酰胺酶檢測(cè)陽性則提示菌株對(duì)不耐酶青霉素類抗菌藥物耐藥。
代表性菌株為耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(methicillin~resistantStaphylococcus aureus,MRSA),但凝固酶陰性葡萄球菌亦可出現(xiàn)甲氧西林耐藥(methicillin~resistant coagulase negativeStaphylococci,MRCNS)。
甲氧西林耐藥與細(xì)菌攜帶的mecA基因相關(guān)。mecA基因可編碼青霉素結(jié)合蛋白2a(penicillin~binding protein 2a,PBP2a),該蛋白與β~內(nèi)酰胺類藥物的親和力很低,可導(dǎo)致菌株產(chǎn)生對(duì)于β~內(nèi)酰胺類藥物的耐藥性;攜帶mecA基因的菌株對(duì)青霉素類、頭孢菌素類等β~內(nèi)酰胺類藥物均耐藥,但對(duì)新型頭孢菌素類藥物可能敏感,如頭孢洛林[6~8]。
部分mecA基因陽性MRSA菌株的體外藥物敏感性試驗(yàn)表現(xiàn)為苯唑西林敏感(MIC≤2μg/ml),稱為苯唑西林敏感MRSA菌株(oxacillin~susceptible methicillin~resistantStaphylococcus aureus,OS~MRSA)。有研究顯示,我國OS~MRSA菌株在MRSA菌株中檢出率為1.6%~1.8%,多位點(diǎn)序列分型(multilocus sequence typing,MLST)主要分型為ST59型[9];苯唑西林MIC為1~2μg/ml(敏感)時(shí),OS~MRSA檢出率高達(dá)33.3%,因此苯唑西林MIC為1~2μg/ml時(shí)易出現(xiàn)MRSA漏檢的情況,而頭孢西丁紙片法檢測(cè)mecA基因陽性菌株的敏感性和特異性均較好[9]。
部分MRSA菌株mecA基因陰性,但攜帶另一種mec基因,即mecC基因。該基因可編碼PBP2c蛋白,同樣因與β~內(nèi)酰胺類藥物的低親和力而導(dǎo)致菌株耐藥[7,10]。mecC基因陽性 MRSA菌株在藥敏表型上常表現(xiàn)為頭孢西丁耐藥、苯唑西林敏感[11]。
甲氧西林耐藥葡萄球菌的檢測(cè)方法包括:①5種表型檢測(cè)方法,即頭孢西丁MIC法、頭孢西丁紙片擴(kuò)散法、苯唑西林MIC法、苯唑西林紙片擴(kuò)散法及苯唑西林鹽瓊脂法。②可通過PCR技術(shù)檢測(cè)mecA基因和mecC基因的攜帶情況。③乳膠凝集法檢測(cè)PBP2a蛋白的敏感性及特異性均較高,但該法目前暫無法檢測(cè) PBP2c 蛋白[2~4]。
在藥敏檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確的前提下,對(duì)于頭孢西丁篩選試驗(yàn)陽性或苯唑西林MIC檢測(cè)為耐藥的金黃色葡萄球菌,建議均報(bào)告為MRSA菌株;對(duì)于頭孢西丁篩選試驗(yàn)陰性、苯唑西林MIC檢測(cè)為敏感但范圍在1~2μg/ml的金黃色葡萄球菌,建議補(bǔ)充頭孢西丁紙片擴(kuò)散法、檢測(cè)mecA基因或PBP2a等檢測(cè),若結(jié)果為陽性則提示該菌株為MRSA菌株;對(duì)于凝固酶陰性葡萄球菌(除表皮葡萄球菌、施氏葡萄球菌、偽中間型葡萄球菌外),苯唑西林MIC在1~2μg/ml時(shí)為苯唑西林耐藥(MIC≥1μg/ml為耐藥[3]),此時(shí)需補(bǔ)充mecA基因或PBP2a檢測(cè),若結(jié)果為陽性方可報(bào)告為MRSA菌株。
MLSB指大環(huán)內(nèi)酯類~林可酰胺類~鏈陽菌素類抗菌藥物,3種抗菌藥物結(jié)構(gòu)不同但具有相同或重疊的靶位作用點(diǎn),細(xì)菌可同時(shí)對(duì)這3類抗菌藥物交叉耐藥,稱為MLSB耐藥。
最常見的MLSB耐藥機(jī)制是erm基因編碼核糖體甲基化酶引起23S rRNA甲基化,導(dǎo)致MLSB與細(xì)菌核糖體靶位結(jié)合能力下降而產(chǎn)生耐藥[12~13]。erm基因主要包括ermA、ermB、ermC,肺炎鏈球菌的MLSB耐藥主要由ermB基因介導(dǎo),而金黃色葡萄球菌的MLSB耐藥則以ermA、ermC為主[14~16]。若erm基因穩(wěn)定表達(dá),則菌株表現(xiàn)為MLSB耐藥。但某些情況下,erm基因需要誘導(dǎo)劑(紅霉素等)誘導(dǎo)表達(dá)才能使菌株對(duì)克林霉素耐藥,這類菌株在體外表現(xiàn)為紅霉素耐藥、克林霉素敏感,稱為MLSB誘導(dǎo)表型。與甲氧西林敏感金黃色葡萄 球 菌(methicillin~sensitiveStaphylococcus aureu,MSSA)相比,MLSB誘導(dǎo)表型菌株在MRSA中占比更高[17],若臨床應(yīng)用克林霉素可導(dǎo)致治療失敗[18]。因此,當(dāng)葡萄球菌屬、肺炎鏈球菌、β~溶血性鏈球菌的菌株表現(xiàn)為紅霉素耐藥、克林霉素敏感或中介時(shí),需補(bǔ)充紅霉素誘導(dǎo)克林霉素耐藥試驗(yàn)(D~試驗(yàn))檢測(cè)MLSB誘導(dǎo)表型,D~試驗(yàn)結(jié)果陽性應(yīng)報(bào)告克林霉素耐藥。
PRSP的耐藥機(jī)制主要為青霉素結(jié)合蛋白(PBPs)結(jié)構(gòu)改變導(dǎo)致的其與青霉素親和力降低。肺炎鏈球菌有6種PBPs,包括PBP1a、PBP1b、PBP2x、PBP2a、PBP2b及PBP3,其中以PBP2x、PBP2b蛋白的編碼基因突變?yōu)樽畛R娔退庮愋?,可?dǎo)致苯唑西林耐藥,而PBP2x或PBP2b聯(lián)合PBP1a突變后可引起對(duì)頭孢噻肟、頭孢曲松的高水平耐藥[19]。
對(duì)于非腦膜炎分離株,若苯唑西林抑菌圈直徑≥20mm或青霉素MIC≤0.06mg/ml,提示該菌株對(duì)氨芐西林(口服或腸外制劑)、氨芐西林~舒巴坦、阿莫西林、阿莫西林~克拉維酸、頭孢克洛、頭孢地尼、頭孢妥侖、頭孢吡肟、頭孢噻肟、頭孢泊肟、頭孢丙烯、頭孢洛林、頭孢唑肟、頭孢曲松、頭孢呋辛、多利培南、厄他培南、亞胺培南、Loracarbef、美羅培南均敏感;若苯唑西林抑菌圈直徑≤19mm,則該菌株可能為青霉素敏感、中介或耐藥,建議進(jìn)行青霉素MIC測(cè)定,同時(shí)測(cè)定頭孢噻肟、頭孢曲松、美羅培南的MIC。對(duì)于腦膜炎分離株,盡快應(yīng)用MIC法檢測(cè)并報(bào)告其對(duì)青霉素、頭孢噻肟、頭孢曲松和美羅培南的敏感性。
萬古霉素可與細(xì)菌細(xì)胞壁肽聚糖前體末端的D~丙氨酰~D~丙氨酸結(jié)合,抑制細(xì)胞壁肽聚糖的合成。VRE表達(dá)9種基因型:VanA、VanB、VanC、VanD、VanE、VanG、VanL、VanM、VanN,其中VanA、VanB、VanD和VanM可合成D~丙氨?!獶~乳酸,取代正常的D~丙氨酰~D~丙氨酸,降低對(duì)萬古霉素的親和力,導(dǎo)致菌株對(duì)萬古霉素耐藥。VanC、VanE、VanG、VanL和VanN則產(chǎn)生D~丙氨?!獶~絲氨酸而導(dǎo)致耐藥[21]。VRE基因型檢測(cè)可采用PCR;表型檢測(cè)可采用紙片擴(kuò)散法,檢測(cè)結(jié)果為中介的菌株應(yīng)進(jìn)行MIC測(cè)定。不同基因型VRE的耐藥表型不同。VanC型為天然耐藥,攜帶vanC基因的鶉雞腸球菌和鉛黃腸球菌對(duì)萬古霉素呈先天性低水平耐藥;其他表型均為獲得性耐藥,如VanA型對(duì)萬古霉素、替考拉寧高水平耐藥,VanB型對(duì)萬古霉素可變水平耐藥、對(duì)替考拉寧敏感。
腸球菌對(duì)氨基糖苷類的耐藥性有2種,即中度耐藥性和高度耐藥性。中度耐藥主要與腸球菌的細(xì)胞壁屏障有關(guān),腸球菌的細(xì)胞壁較厚,氨基糖苷類藥物不易穿透,但當(dāng)氨基糖苷類與青霉素、頭孢菌素類等抑制細(xì)胞壁合成的抗菌藥物聯(lián)用時(shí)可發(fā)揮協(xié)同作用,故此類菌對(duì)青霉素或糖肽類與氨基糖苷類聯(lián)用敏感[20]。但有約30%的腸球菌為高水平氨基糖苷類耐藥腸球菌(high~level aminoglycoside~resistantEnterococci,HLARE),其耐藥機(jī)制主要是通過產(chǎn)氨基糖苷類修飾酶(aminoglycoside modifying enzymes,AME)或通過核糖體靶位修飾介導(dǎo),對(duì)青霉素和糖肽類與氨基糖苷類聯(lián)用呈現(xiàn)耐藥,其中AME主要包括乙酰轉(zhuǎn)移酶(acetyltransferases,AAC)、 磷 酸 轉(zhuǎn) 移 酶(phosphotransferases,APH)及核苷轉(zhuǎn)移酶(nucleotidyl transferases,ANT)3 類[20],此類菌對(duì)青霉素或糖肽類與氨基糖苷類聯(lián)用耐藥。
臨床可選用紙片擴(kuò)散法、微量肉湯稀釋法或瓊脂稀釋法對(duì)高水平慶大霉素及鏈霉素耐藥性進(jìn)行檢測(cè)。高水平慶大霉素及鏈霉素檢測(cè)敏感株提示慶大霉素等氨基糖苷類藥物與β~內(nèi)酰胺類/糖肽類藥物聯(lián)用可有效抗菌;耐藥菌株則提示上述藥物聯(lián)用耐藥。
ESBLs是由質(zhì)粒介導(dǎo)合成,能水解青霉素類、頭孢菌素類和氨曲南等β~內(nèi)酰胺類藥物,對(duì)碳青霉烯類和頭霉素類水解能力弱,可被β~內(nèi)酰胺酶抑制劑(如克拉維酸)抑制的一類β~內(nèi)酰胺酶[22]。ESBLs主要由腸桿菌目細(xì)菌產(chǎn)生,常見于肺炎克雷伯菌、大腸埃希菌、變形桿菌。根據(jù)編碼基因同源性,ESBLs可分為TEM型、SHV型、CTX~M型、OXA型和其他型[23]。
2007年以來,我國產(chǎn)ESBLs大腸埃希菌檢出率為50%~60%,其中90%以上菌株的基因型為CTX~M型;2021年我國肺炎克雷伯菌的ESBLs檢出 率 為 41.5%,同 樣 以CTX~M型 為主[24]。CTX~M型可分為34個(gè)亞型,不同地區(qū)、不同菌種亞型分布不同。我國接近70%的大腸埃希菌及90%的奇異變形桿菌為CTX~M~9組,超過60%肺炎克雷伯菌則以CTX~M~1組為主?;蛐偷牟煌瑢?dǎo)致菌株的耐藥表型有一定差異,表現(xiàn)為CTX~M~1組菌株對(duì)頭孢他啶、頭孢吡肟和氨曲南的耐藥率較CTX~M~9組菌株更高[25]。臨床需報(bào)告大腸埃希菌、肺炎克雷伯菌、產(chǎn)酸克雷伯菌及奇異變形桿菌是否產(chǎn)ESBLs,其檢測(cè)方法有表型篩選試驗(yàn)(雙紙片協(xié)同試驗(yàn))、確證試驗(yàn)(紙片擴(kuò)散法、微量肉湯稀釋法)。其他腸桿菌目細(xì)菌(如陰溝腸桿菌、產(chǎn)氣克雷伯菌)也產(chǎn)ESBLs,但由于可能合并產(chǎn)頭孢菌素酶(AmpC酶)而影響ESBLs檢出,因此目前CLSI推薦的ESBLs表型篩選方法不適用。產(chǎn)ESBLs菌株感染建議選用β~內(nèi)酰胺類抗菌藥物/β~內(nèi)酰胺酶抑制劑復(fù)方制劑或碳青霉烯類等抗菌藥物治療。
AmpC酶主要存在于革蘭陰性桿菌中,屬Ambler分類法中的C類酶或Bush分類法中的I類酶,通常由染色體介導(dǎo),可導(dǎo)致細(xì)菌對(duì)三代頭孢菌素、單環(huán)β~內(nèi)酰胺類及頭霉素類抗菌藥物耐藥,且多數(shù)不能被β~內(nèi)酰胺酶抑制劑所抑制,但對(duì)碳青霉烯類及第四代頭孢菌素的水解能力較弱[22]。
染色體介導(dǎo)的AmpC酶根據(jù)產(chǎn)酶水平的高低可分為誘導(dǎo)高產(chǎn)酶、持續(xù)高產(chǎn)酶和持續(xù)低產(chǎn)酶,而根據(jù)是否具有誘導(dǎo)性可分為誘導(dǎo)型AmpC 酶和結(jié)構(gòu)型AmpC 酶。除大腸埃希菌、肺炎克雷伯菌及志賀菌屬外,多數(shù)革蘭陰性桿菌表現(xiàn)為誘導(dǎo)高產(chǎn)酶,即自然狀態(tài)下產(chǎn)酶較少、β~內(nèi)酰胺類誘導(dǎo)下產(chǎn)酶量明顯增加。該誘導(dǎo)合成依賴ampR基因調(diào)節(jié),當(dāng)其發(fā)生突變后,可導(dǎo)致ampC基因的持續(xù)高表達(dá)[26~27]。與之相對(duì),大腸埃希菌的ampC基因表達(dá)不受ampR基因調(diào)節(jié),表現(xiàn)為結(jié)構(gòu)型低水平表達(dá)AmpC 酶[26]。AmpC 酶也可通過質(zhì)粒介導(dǎo),質(zhì)粒介導(dǎo)的AmpC酶與染色體介導(dǎo)的結(jié)構(gòu)型AmpC 酶類似,不受AmpC 酶調(diào)節(jié)基因調(diào)節(jié),表現(xiàn)為持續(xù)高水平表達(dá),主要在大腸桿菌、肺炎克雷伯菌、奇異變形桿菌等中檢出[26,28]。
目前CLSI尚無統(tǒng)一的AmpC酶檢測(cè)方法,可采用雙紙片法、三維試驗(yàn)等方法檢測(cè)菌株的耐藥表型。對(duì)可能產(chǎn)生誘導(dǎo)型AmpC酶菌株所致感染應(yīng)嚴(yán)格掌握頭孢菌素類抗菌藥物的適應(yīng)癥,并在治療中監(jiān)測(cè)細(xì)菌耐藥性變化。
CRE是指對(duì)至少1種碳青霉烯類藥物耐藥(亞胺培南、美羅培南、厄他培南或多利培南)或產(chǎn)碳青霉烯酶的腸桿菌目細(xì)菌。碳青霉烯酶可水解碳青霉烯類在內(nèi)的所有β~內(nèi)酰胺類抗菌藥物,產(chǎn)碳青霉烯酶是CRE最常見的耐藥機(jī)制。碳青霉烯酶包括A類、B類和D類酶:①A類酶為絲氨酸酶,多數(shù)由質(zhì)粒介導(dǎo),可被阿維巴坦抑制、部分被克拉維酸抑制,產(chǎn)酶菌株通常僅對(duì)替加環(huán)素、多黏菌素、頭孢他啶/阿維巴坦敏感[22]。A類酶中,產(chǎn)KPC酶為腸桿菌目細(xì)菌、尤其是肺炎克雷伯菌對(duì)碳青霉烯類耐藥的最主要機(jī)制,其中KPC~2型為我國腸桿菌目中的流行類型,在產(chǎn)碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌中占比超過70%[24]。② B類酶為金屬酶,多數(shù)由染色體介導(dǎo),可水解青霉素類、頭孢菌素類和碳青霉烯類,但對(duì)氨曲南水解活性弱;不能被β~內(nèi)酰胺酶抑制劑(如阿維巴坦)抑制,可被EDTA抑制;產(chǎn)酶株通常僅對(duì)替加環(huán)素、多黏菌素敏感,少數(shù)對(duì)氨曲南敏感[22]。B類酶包括NDM、IMP、VIM、GIM、SPM酶等,其中NDM酶為我國大腸埃希菌、肺炎克雷伯菌(患兒分離株)中的流行類型,以NDM~1型、NDM~5型最為常見[29]。③D類酶為OXA酶,同樣為絲氨酸酶,多由質(zhì)粒介導(dǎo),對(duì)苯唑西林水解活性強(qiáng),其活性難以被大部分酶抑制劑抑制,但可被阿維巴坦抑制[22]。我國D類酶在兒童患者分離肺炎克雷伯菌中占比更為突出,常見亞型包括OXA~48型、OXA~23型等。在產(chǎn)碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌中,OXA~48樣碳青霉烯酶檢出率為 13.3%[29]。
CRE的表型檢測(cè)方法包括Carba NP試驗(yàn)、改良碳青霉烯失活試驗(yàn)(mCIM、eCIM)、碳青霉烯酶抑制劑增強(qiáng)試驗(yàn)等,基因型檢測(cè)方法包括酶免疫層析技術(shù)、GeneXpert檢測(cè)技術(shù)、FlimArray技術(shù)等[2~4]。
部分腸桿菌目細(xì)菌表現(xiàn)為對(duì)亞胺培南的天然高水平耐藥,如變形桿菌屬、摩根菌屬、普羅威登斯菌屬,臨床需進(jìn)一步檢測(cè)美羅培南、多利培南和厄他培南的MIC以判斷該菌株是否為CRE菌株。陰溝腸桿菌復(fù)合體中可見厄他培南單耐藥菌株,但多數(shù)不是由產(chǎn)碳青霉烯酶引起[30]。
產(chǎn)不同碳青霉烯酶菌株所致感染的治療方案不同。產(chǎn)絲氨酸酶(A類、D類酶)菌株通常對(duì)替加環(huán)素、多黏菌素、頭孢他啶/阿維巴坦敏感;產(chǎn)金屬酶(B類酶)菌株通常僅對(duì)替加環(huán)素、多黏菌素敏感,少數(shù)對(duì)氨曲南敏感,而均對(duì)頭孢他啶/阿維巴坦耐藥[22,29]。
銅綠假單胞菌的藥物外排系統(tǒng)對(duì)其天然耐藥和多重耐藥的發(fā)生至關(guān)重要。銅綠假單胞菌至少存在10種外排系統(tǒng),基本上屬于RND家族,主要包括 Mex AB~OprM、Mex CD~OprJ、Mex EF~OprN和Mex XY~OprM[31]。細(xì)菌外膜上存在多種孔蛋白,為親水性抗菌藥物通道。銅綠假單胞菌外膜上的特異性通道蛋白有OprC~H。其中OprC、OprD、OprE 的相對(duì)分子質(zhì)量較小,可以讓一部分相對(duì)分子質(zhì)量較小的親水性碳青霉烯類抗菌藥物通過,如OprD2為亞胺培南的特異性通道,其丟失可導(dǎo)致菌株對(duì)亞胺培南耐藥、對(duì)頭孢他啶仍敏感[31]。編碼孔蛋白的基因發(fā)生突變可下調(diào)孔蛋白表達(dá),是銅綠假單胞菌對(duì)碳青霉烯類、氨基糖苷類、黏菌素和氟喹諾酮類耐藥的機(jī)制之一[31]。
銅綠假單胞菌可產(chǎn)生多種β~內(nèi)酰胺酶,包括ESBLs、AmpC酶、碳青霉烯酶、青霉素酶等,以染色體介導(dǎo)的酶最為多見。銅綠假單胞菌所產(chǎn)的AmpC酶為誘導(dǎo)型酶,頭孢西丁、亞胺培南等β~內(nèi)酰胺酶類、β~內(nèi)酰胺酶抑制劑(克拉維酸)均可誘導(dǎo)AmpC酶產(chǎn)生,因此不推薦采用含克拉維酸制劑治療產(chǎn)AmpC 酶銅綠假單胞菌所致感染[32];銅綠假單胞菌所產(chǎn)的碳青霉烯酶以金屬酶IMP、VIM為主,但有研究發(fā)現(xiàn)攜帶NDM~1型酶的超級(jí)細(xì)菌對(duì)目前所有β~內(nèi)酰胺類均耐藥、對(duì)多黏菌素耐藥[31,33]。
與銅綠假單胞菌類似,鮑曼不動(dòng)桿菌可通過改變外膜通透性及外排系統(tǒng)活性介導(dǎo)對(duì)氟喹諾酮類、氨基糖苷類、四環(huán)素類及多黏菌素類耐藥。OmpA蛋白為鮑曼不動(dòng)桿菌的主要非特異性通道,其中的碳青霉烯類耐藥相關(guān)外膜蛋白(CarO)突變與美羅培南、亞胺培南耐藥相關(guān)[34]。
鮑曼不動(dòng)桿菌可產(chǎn)生多種β~內(nèi)酰胺酶,包括ESBLs、碳青霉烯酶和AmpC酶等。鮑曼不動(dòng)桿菌所產(chǎn)ESBLs以TEM型為主,碳青霉烯酶則以O(shè)XA酶、金屬酶為主,常見酶型包括OXA~23、OXA~24、OXA~40、OXA~48、OXA~58 和OXA~51型等,我國主要流行酶型為 OXA~23[22,34~36]。
通過產(chǎn)β~內(nèi)酰胺酶而對(duì)氨芐西林、阿莫西林耐藥的株被稱為β~內(nèi)酰胺酶陽性氨芐西林耐藥(β~lactamase~positive ampicillin~resistant,BLPAR)流感嗜血桿菌,目前已知的β~內(nèi)酰胺酶基因型包括TEM和ROB型,以TEM~1型為主[37~38]。部分氨芐西林耐藥菌株β~內(nèi)酰胺酶檢測(cè)陰 性(β~lactamase~negative ampicillin resistant,BLNAR),2014年我國BLNAR菌株檢出率為8.6%[39],且呈現(xiàn)升高趨勢(shì)。 BLNAR菌株的主要機(jī)制為ftsI基因點(diǎn)突變導(dǎo)致PBP3蛋白的空間構(gòu)象改變,對(duì)β~內(nèi)酰胺類親和力降低,導(dǎo)致菌株對(duì)第一、二代頭孢菌素及氨基青霉素/β~內(nèi)酰胺酶抑制劑復(fù)合制劑類抗菌藥物(如阿莫西林/克拉維酸、氨芐西林/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦)耐藥[37]。部分產(chǎn)酶株可合并ftsI基因突變,表現(xiàn)為對(duì)阿莫西林/克拉維酸耐藥,被稱為β~內(nèi)酰胺酶陽性阿莫西林/克拉維酸 耐 藥 株(β~lactamase~positive amoxicillin/clavulanate~resistant,BLPACR)。臨床可采用頭孢硝噻吩紙片法檢測(cè)β~內(nèi)酰胺酶:若檢測(cè)結(jié)果為β~內(nèi)酰胺酶陽性,提示菌株對(duì)阿莫西林、氨芐西林和哌拉西林耐藥;若檢測(cè)結(jié)果為β~內(nèi)酰胺酶陰性且對(duì)氨芐西林耐藥,提示菌株對(duì)氨芐西林、阿莫西林、阿莫西林/克拉維酸、氨芐西林/舒巴坦、哌拉西林、哌拉西林/他唑巴坦、頭孢克洛、頭孢呋辛酯耐藥;若檢測(cè)結(jié)果為β~內(nèi)酰胺酶陽性且阿莫西林/克拉維酸耐藥,提示菌株對(duì)氨芐西林、阿莫西林、阿莫西林/克拉維酸、氨芐西林/舒巴坦、頭孢克洛、哌拉西林、哌拉西林/他唑巴坦、頭孢呋辛、頭孢呋辛酯耐藥[2~4]。
淋病奈瑟菌對(duì)青霉素耐藥的主要機(jī)制為產(chǎn)生β~內(nèi)酰胺酶,產(chǎn)酶株對(duì)青霉素、氨芐西林和阿莫西林耐藥[40~41],臨床可采用頭孢硝噻吩紙片法檢測(cè)β~內(nèi)酰胺酶;淋病奈瑟菌對(duì)頭孢菌素類耐藥的主要機(jī)制為penA基因突變導(dǎo)致PBP2蛋白改變,與頭孢菌素類親和力降低,導(dǎo)致菌株對(duì)頭孢曲松、頭孢克肟等抗菌藥物耐藥[40,42]。淋病奈瑟菌對(duì)阿奇霉素耐藥的主要原因是藥物作用靶位的改變(如23S rRNA突變),且藥物外排增加也是其耐藥機(jī)制之一[40]。
90%以上的卡他莫拉菌產(chǎn)β~內(nèi)酰胺酶,以BRO型為主,其中BRO~1型約占90%。產(chǎn)酶株對(duì)青霉素、氨芐西林及阿莫西林耐藥,β~內(nèi)酰胺酶抑制劑可抑制其活性[43]。臨床可采用頭孢硝噻吩紙片法檢測(cè)β~內(nèi)酰胺酶。卡他莫拉菌通常對(duì)阿莫西林/克拉維酸、第二及三代頭孢菌素、大環(huán)內(nèi)酯類、四環(huán)素類、利福平、氟喹諾酮類和磺胺類等藥物敏感。
細(xì)菌耐藥性問題的出現(xiàn)給感染性疾病的治療和防控帶來了挑戰(zhàn)。依據(jù)不同細(xì)菌耐藥表型的不同分子機(jī)制,針對(duì)其耐藥機(jī)制的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法也逐步推廣,為耐藥菌的治療和防控提供了極大的助力。了解臨床重要細(xì)菌耐藥表型的分子機(jī)制有助于更好地開展藥物敏感性檢測(cè)、快速而準(zhǔn)確地發(fā)布臨床報(bào)告。