李前進(jìn) 王玉杰 劉 強(qiáng) 馬雙鈺 拜合提亞·阿扎提
(新疆醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院泌尿外科,烏魯木齊 830054)
腎細(xì)胞癌(renal cell carcinoma,RCC)是全球第二位高病死率的泌尿系統(tǒng)惡性腫瘤,起源于腎小管上皮細(xì)胞[1]。近年來(lái),RCC的發(fā)病率呈增長(zhǎng)趨勢(shì)[1-2]。腎透明細(xì)胞癌是常見(jiàn)的RCC組織學(xué)類型,占所有RCC病例的80%以上,并且具有高轉(zhuǎn)移和高復(fù)發(fā)的特點(diǎn)[2]。越來(lái)越多的證據(jù)表明,腎透明細(xì)胞癌可以在早期階段治愈,而發(fā)生腫瘤轉(zhuǎn)移的患者預(yù)后不良,五年生存率僅為10%[3]。因此,迫切需要探索腎透明細(xì)胞癌發(fā)生和轉(zhuǎn)移的分子機(jī)制,尋找腎透明細(xì)胞癌的新預(yù)后生物標(biāo)志物。
唾液酸化是在各種糖綴合物的末端添加唾液酸的修飾作用,涉及細(xì)胞黏附、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、免疫調(diào)節(jié)等重要生物學(xué)過(guò)程[4]。α-2,6-唾液酸轉(zhuǎn)移酶Ⅰ(α-2,6-sialyltransferaseⅠ,ST6GalⅠ)是一種糖基轉(zhuǎn)移酶,在細(xì)胞唾液酸化的水平中起到關(guān)鍵的調(diào)控作用。研究表明,腫瘤的發(fā)生發(fā)展及存活與ST6GalⅠ的異常變化密切相關(guān),例如在結(jié)直腸癌、乳腺癌、胃癌等腫瘤細(xì)胞中ST6GalⅠ呈高表達(dá)[5-7]。巨噬細(xì)胞是免疫系統(tǒng)中的主要細(xì)胞類型,可響應(yīng)各種外部刺激而被激活,可以根據(jù)系統(tǒng)中刺激類型產(chǎn)生炎癥或抗炎反應(yīng),因此該過(guò)程依賴于多種信號(hào)通路的復(fù)雜網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng)調(diào)控來(lái)發(fā)揮作用[8]。本研究通過(guò)檢測(cè)ST6GalⅠ在腎透明細(xì)胞癌中的表達(dá),探討靶向下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)THP-1細(xì)胞與腎透明細(xì)胞癌786-O細(xì)胞進(jìn)行非接觸共培養(yǎng)后,對(duì)786-O細(xì)胞存活、凋亡與轉(zhuǎn)移的影響,以闡明ST6GalⅠ在腎透明細(xì)胞癌生長(zhǎng)中的作用途徑,為腎透明細(xì)胞癌的診治提供新思路。
1.1 資料
1.1.1 一般資料 收集2018年1月至2019年12月在新疆醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院腫瘤科治療的50例腎透明細(xì)胞癌患者的腫瘤組織及其未受侵犯的癌旁組織標(biāo)本,且已經(jīng)病理證實(shí)。其中男性36例,女性14例,年齡31~72歲,平均年齡(50.62±7.36)歲。腫瘤分期根據(jù)2010年AJCC的TNM分期標(biāo)準(zhǔn)分為:Ⅰ期21例,Ⅱ期17例,Ⅲ期12例;病理分級(jí)按Fuhrman標(biāo)準(zhǔn)分為:Ⅰ級(jí)19例,Ⅱ級(jí)17例,Ⅲ級(jí)11例,Ⅳ級(jí)3例;按腫瘤直徑大小分為:直徑≤4 cm 22例,直徑>4 cm 28例。所有患者術(shù)前均未接受過(guò)任何治療,本研究已獲得所有患者及家屬知情同意。
1.1.2 主要材料與試劑 腎透明細(xì)胞癌細(xì)胞株786-O和THP-1人單核細(xì)胞由中國(guó)上??茖W(xué)院細(xì)胞庫(kù)提供。胎牛血清、青霉素-鏈霉素、RPMI1640培養(yǎng)液購(gòu)自Hyclone公司,PMA、IL-4購(gòu)自Sigma公司;TRIzol試劑、反轉(zhuǎn)錄試劑盒和SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒購(gòu)自TaKaRa公司;Transwell小室、Lipofectamine 2000試劑盒購(gòu)自Invitrogen公司;免疫組化染色試劑、MTT試劑盒、Annexin V-FITC/PI試劑盒購(gòu)自碧云天生物研究所;IL-1β、IL-6、IL-10、TNF-α、TGF-β1 ELISA試劑盒購(gòu)自北京全式金生物公司;抗體ST6GalⅠ、CD206、TIM-1、VEGF購(gòu)自Abcam公司;GAPDH購(gòu)自北京中山金橋生物技術(shù)有限公司;BCA蛋白檢測(cè)試劑盒和ECL發(fā)光液購(gòu)自江蘇凱基生物有限公司。
1.2 方法
1.2.1 免疫組織化學(xué)染色 將收集的腎透明細(xì)胞癌腫瘤組織及其癌旁組織置于4%多聚甲醛液中固定,進(jìn)行常規(guī)修剪包埋,浸于梯度乙醇脫水,二甲苯中透明,切成4μm石蠟組織切片。將切片脫蠟水化,采用2%乙二胺四乙酸(EDTA)溶液在高溫下進(jìn)行抗原修復(fù),加入滅活內(nèi)源性3%H2O2處理10 min,PBS洗滌,滴加ST6GalⅠ抗體(1∶200),4℃下孵育過(guò)夜。次日,PBS沖洗切片,再加入二抗(1∶1 000)置于室溫下孵育1 h,PBS沖洗干凈,滴加DAB染核5 min,蘇木精復(fù)染,脫水透明,采用中性樹(shù)膠封片,于電鏡下進(jìn)行觀察。
結(jié)果判定:陽(yáng)性表現(xiàn)為染色呈黃色、棕黃色至棕褐色,隨機(jī)觀察6個(gè)400倍鏡視野,以陽(yáng)性細(xì)胞比例及染色強(qiáng)度進(jìn)行綜合評(píng)定。染色強(qiáng)度無(wú)色計(jì)0分;淺黃色計(jì)1分,棕黃色計(jì)2分,棕褐色計(jì)3分。陽(yáng)性細(xì)胞比例<5%計(jì)為0分,5%~30%計(jì)為1分,31%~60%計(jì)為2分,>60%計(jì)為3分。判定結(jié)束后將染色強(qiáng)度與陽(yáng)性細(xì)胞比例的評(píng)分相乘,<2分判定為陰性(-)結(jié)果,≥2分判定為陽(yáng)性(+)結(jié)果。
1.2.2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 使用TRIzol試劑提取腫瘤組織、癌旁組織及各處理細(xì)胞中提取總RNA,紫外分光光度計(jì)檢測(cè)RNA純度、濃度,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行操作合成cDNA,以此cDNA為模板,利用SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒進(jìn)行定量,檢測(cè)各基因mRNA表達(dá),以GAPDH作為內(nèi)參基因。擴(kuò)增條件設(shè)置為:95℃3 min,1個(gè)循環(huán);95℃30 s、60℃30 s、58℃30 s,40個(gè)循環(huán),根據(jù)2-ΔΔCt法計(jì)算基因mRNA相對(duì)表達(dá)量。引物由上海生工生物有限公司合成,具體序列見(jiàn)表1。
1.2.3 細(xì)胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染 將THP-1細(xì)胞放在含10%胎牛血清和1%青霉素-鏈霉素雙抗的RPMI-1640培養(yǎng)液中培養(yǎng),且置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的THP-1細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1×106個(gè)/ml,吸取100μl接種于6孔培養(yǎng)板,并鋪板于不含抗生素的Opti-MEM中培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞融合達(dá)80%時(shí),利用脂質(zhì)體Lipofectamine2000進(jìn)行轉(zhuǎn)染,實(shí)驗(yàn)設(shè)對(duì)照組(正常培養(yǎng))、siRNA-NC組(轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照siRNA-NC質(zhì)粒)和siRNA-ST6GalⅠ組(轉(zhuǎn)染siRNA-ST6GalⅠ質(zhì)粒),根據(jù)試劑盒說(shuō)明書操作,將轉(zhuǎn)染試劑加入細(xì)胞后,在細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育6 h,棄培養(yǎng)液,更換為新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),48 h后收集細(xì)胞。采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR與Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組THP-1細(xì)胞中ST6GalⅠmRNA與蛋白表達(dá)變化,以評(píng)估轉(zhuǎn)染結(jié)果。
1.2.4 誘導(dǎo)THP-1細(xì)胞分化 取轉(zhuǎn)染后生長(zhǎng)狀態(tài)良好的THP-1細(xì)胞,調(diào)整密度為1×106個(gè)/ml,吸取100μl接種于6孔培養(yǎng)板,加入終濃度為50 ng/ml的PMA誘導(dǎo)24 h,棄培養(yǎng)液,PBS清洗后,加入終濃度為20 ng/ml的IL-4誘導(dǎo)48 h,以不進(jìn)行誘導(dǎo)處理的THP-1細(xì)胞作為對(duì)照組。采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)巨噬細(xì)胞相關(guān)標(biāo)志物Arg-1和iNOS蛋白的表達(dá),檢測(cè)各處理組THP-1細(xì)胞極化情況。
1.2.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)巨噬細(xì)胞表面標(biāo)記物表達(dá) 收集誘導(dǎo)后的細(xì)胞,采用PBS洗滌并重懸細(xì)胞,取適量細(xì)胞懸液,并加入等體積的小鼠血清,置于室溫下封閉30 min,去除非特異性結(jié)合,加入PECD206抗體,置于4℃暗室中反應(yīng)30 min,PBS洗滌細(xì)胞后將其再次重懸,通過(guò)流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞表面巨噬細(xì)胞標(biāo)記物的表達(dá)。
1.2.6 巨噬細(xì)胞與786-O細(xì)胞共培養(yǎng) 在24孔Transwell小室的上室接種轉(zhuǎn)染后的THP-1細(xì)胞,密度為1×104個(gè)/孔,按照1.2.4的方法進(jìn)行誘導(dǎo),誘導(dǎo)完成前1 d,在Transwell小室的下室均接種786-O細(xì)胞,密度為1×104個(gè)/孔,置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。共培養(yǎng)72 h后收集下室中的786-O細(xì)胞,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)研究。實(shí)驗(yàn)分組具體設(shè)置為786-O組(上室:細(xì)胞培養(yǎng)液,下室:786-O細(xì)胞)、M2+786-O組(上室:對(duì)THP-1細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)處理,下室:786-O細(xì)胞)、M2+NC 786-O組(上室:對(duì)轉(zhuǎn)染siRNA-NC質(zhì)粒的THP-1細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)處理,下室:786-O細(xì)胞)、M2+ST6GalⅠ786-O組(上室:對(duì)轉(zhuǎn)染siRNA-ST6GalⅠ質(zhì)粒的THP-1細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)處理,下室:786-O細(xì)胞)。
1.2.7 MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖 收集處理72 h后的786-O細(xì)胞,PBS洗滌細(xì)胞,每孔加入500μl用無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋的MTT試劑(0.5 mg/ml)混合均勻,置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱培養(yǎng),4 h后棄去培養(yǎng)液,加入600μl DMSO,搖床振蕩至結(jié)晶物完全溶解,通過(guò)酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm處吸光度值(A值),檢測(cè)細(xì)胞存活情況。
1.2.8 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞遷移 收集處理72 h后的786-O細(xì)胞,在6孔培養(yǎng)板大約每隔0.5 cm劃一道橫線,然后在每孔中加入5×105個(gè)各處理組的786-O細(xì)胞,置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中過(guò)夜培養(yǎng)。次日,利用移液槍槍頭比對(duì)直尺,沿著垂直于細(xì)胞培養(yǎng)孔背后橫線劃痕,采用PBS洗去劃痕下的細(xì)胞,加入無(wú)血清RPMI1640培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng),分別于0 h、24 h取樣觀察各處理組細(xì)胞劃痕愈合情況。
1.2.9 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡 收集處理72 h后的786-O細(xì)胞,消化離心,制成細(xì)胞懸液,根據(jù)Annexin V-FITC/PI細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒進(jìn)行操作,檢測(cè)各處理組細(xì)胞凋亡情況。在細(xì)胞中加入500μl
1×binding buffer輕輕混勻,得到細(xì)胞懸液,在細(xì)胞懸浮液加入5μl Annexin V-FITC和10μl PI,混勻后,置于室溫下避光孵育15 min,采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)各處理組細(xì)胞凋亡情況。
1.2.10 Western blot 在各處理組細(xì)胞中加入RIPA裂解液裂解并離心取上清液,BCA試劑盒檢測(cè)蛋白質(zhì)量,取各組等量蛋白樣品上樣,經(jīng)過(guò)10%SDS-PAGE分離后轉(zhuǎn)移到PVDF膜,TBST緩沖液洗膜,加入5%脫脂奶粉液,室溫下封閉1 h。然后加入稀釋 的 一抗ST6GalⅠ(1∶1 000)、TIM-1(1∶1 000)、VEGF(1∶1 000),以GAPDH(1∶1 000)作為內(nèi)參蛋白,4℃下孵育過(guò)夜。次日,TBST緩沖液清洗后,滴加對(duì)應(yīng)的二抗,置于室溫下繼續(xù)孵育2 h,TBST緩沖液再次洗膜,ECL發(fā)光液曝光,Image J軟件檢測(cè)各蛋白條帶灰度值。
1.2.11 ELISA檢測(cè) 786-O細(xì)胞經(jīng)過(guò)不同處理后培養(yǎng)72 h,收集各處理組細(xì)胞培養(yǎng)上清,ELISA檢測(cè)培養(yǎng)上清中細(xì)胞炎癥因子IL-1β、IL-6、IL-10、TNF-α、TGF-β1的含量,實(shí)驗(yàn)步驟嚴(yán)格按照ELISA試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 SPSS23.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料均采用±s表示,兩組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 腎透明細(xì)胞癌組織及癌旁組織中ST6GalⅠ表達(dá)比較 免疫組化染色結(jié)果顯示,在腎透明細(xì)胞癌組織中ST6GalⅠ陽(yáng)性表達(dá)率為84.0%(42/50);在癌旁組織中,ST6GalⅠ陽(yáng)性表達(dá)率為14.0%(7/50)。與癌旁正常組織比較,腎透明細(xì)胞癌組織中ST6GalⅠ陽(yáng)性表達(dá)率明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01,圖1A)。實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)腎透明細(xì)胞癌組織與癌旁組織中ST6GalⅠmRNA表達(dá)水平,結(jié)果顯示,腎透明細(xì)胞癌組織中ST6GalⅠmRNA相對(duì)表達(dá)量明顯高于癌旁組織中ST6GalⅠmRNA相對(duì)表達(dá)量(P<0.01,圖1B)。
2.2 轉(zhuǎn)染后THP-1細(xì)胞中ST6GalⅠ表達(dá)檢測(cè) 通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR和Western blot檢測(cè)各組THP-1細(xì)胞中ST6GalⅠmRNA和蛋白表達(dá)水平,檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,siRNA-ST6GalⅠ組細(xì)胞中ST6GalⅠmRNA和蛋白相對(duì)表達(dá)量均顯著下降(P<0.05),而siRNA-NC組和對(duì)照組ST6GalⅠmRNA和蛋白表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),表明轉(zhuǎn)染成功,見(jiàn)圖2。
圖2 轉(zhuǎn)染后THP-1細(xì)胞中ST6GalⅠmRNA和蛋白表達(dá)檢測(cè)Fig.2 Detection of ST6GalⅠmRNA and protein expressionsin THP-1 cells after transfection
2.3 誘導(dǎo)后THP-1細(xì)胞形態(tài)及巨噬細(xì)胞相關(guān)標(biāo)記物表達(dá)變化 通過(guò)倒置相差顯微鏡觀察各組細(xì)胞形態(tài),如圖3A所示,THP-1細(xì)胞邊緣清晰,呈規(guī)則的圓形或類圓形。經(jīng)誘導(dǎo)后,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生明顯改變,呈不規(guī)則的多邊形,胞體伸出尾足。
實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,PMA+IL-4誘導(dǎo)后,細(xì)胞中Arg-1 mRNA表達(dá)顯著升高,iNOS mRNA表達(dá)顯著下降(P<0.05);與PMA+IL-4組比較,轉(zhuǎn)染siRNA-ST6GalⅠ后進(jìn)行誘導(dǎo)處理的細(xì)胞Arg-1 mRNA表達(dá)顯著下降,iNOS mRNA表達(dá)顯著升高(P<0.05,圖3B)。
圖3 誘導(dǎo)后THP-1細(xì)胞形態(tài)變化及巨噬細(xì)胞相關(guān)標(biāo)志物表達(dá)檢測(cè)Fig.3 Morphological changes of THP-1 cells and expression of macrophages related markers after induction
流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果表明,與對(duì)照組比較,PMA+IL-4誘導(dǎo)后細(xì)胞中M2型巨噬細(xì)胞表面標(biāo)志物CD206的表達(dá)顯著升高(P<0.05);與PMA+IL-4組比較,轉(zhuǎn)染siRNA-ST6GalⅠ后進(jìn)行誘導(dǎo)處理的細(xì)胞中CD206表達(dá)顯著下降(P<0.05),見(jiàn)圖4。以上結(jié)果均說(shuō)明下調(diào)ST6GalⅠ可抑制IL-4誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞向M2型極化。
圖4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)M 2型巨噬細(xì)胞標(biāo)志物CD206表達(dá)Fig.4 Flow cytometry to detect expression of M 2 macrophage marker CD206
2.4 下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)的巨噬細(xì)胞對(duì)786-O細(xì)胞存活率的影響 MTT檢測(cè)結(jié)果顯示,與786-O組比較,M2+786-O組786-O細(xì)胞的存活率顯著升高(P<0.05);M2+ST6GalⅠ786-O組細(xì)胞存活率較M2+786-O組則顯著下降(P<0.05),而M2+NC786-O組與M2+786-O組的細(xì)胞存活率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖5。
圖5 MTT法檢測(cè)各處理組786-O細(xì)胞存活率Fig.5 MTT method to detect survival rate of 786-O cells in each treatment group
2.5 下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)的巨噬細(xì)胞對(duì)786-O細(xì)胞遷移的影響 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖6所示,細(xì)胞培養(yǎng)24 h后,與786-O組比較,M2+786-O組786-O細(xì)胞劃痕面積減小,劃痕愈合率顯著升高(P<0.05);與M2+786-O組比較,M2+ST6GalⅠ786-O組劃痕面積增加,劃痕愈合率顯著降低(P<0.05),M2+NC 786-O組與M2+786-O組的細(xì)胞劃痕愈合率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
圖6 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各處理組786-O細(xì)胞遷移Fig.6 Cell scratch test to detect migration of 786-O cells in each treatment group
2.6 下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)的巨噬細(xì)胞對(duì)786-O細(xì)胞凋亡的影響 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,M2+786-O組786-O細(xì)胞凋亡率與786-O組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);而與M2+786-O組比較,M2+ST6GalⅠ786-O組細(xì)胞凋亡率顯著增加(P<0.05),M2+NC 786-O組與M2+786-O組的細(xì)胞凋亡率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖7。
圖7 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各處理組786-O細(xì)胞凋亡Fig.7 Flow cytometry to detect 786-O cell apoptosis in each treatment group
2.7 下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)的巨噬細(xì)胞對(duì)786-O細(xì)胞上清液炎癥因子分泌的影響 ELISA檢測(cè)結(jié)果顯示,與786-O組比較,M2+786-O組細(xì)胞上清液中促炎因子IL-1β、IL-6、TNF-α的含量顯著下降,抑炎因子IL-10、TGF-β1含量顯著升高(P<0.05);與M2+786-O組比較,M2+ST6GalⅠ786-O組細(xì)胞上清液中IL-1β、IL-6、TNF-α的含量顯著升高,同時(shí),IL-10、TGF-β1含量顯著下降(P<0.05),而M2+NC 786-O組與M2+786-O組細(xì)胞上清液中各因子含量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)表2。
表2 各處理組786-O細(xì)胞上清中炎癥因子含量比較(±s,ng/L)Tab.2 Comparison of inflammatory factors in supernatant of 786-O cells in each treatment group(±s,ng/L)
表2 各處理組786-O細(xì)胞上清中炎癥因子含量比較(±s,ng/L)Tab.2 Comparison of inflammatory factors in supernatant of 786-O cells in each treatment group(±s,ng/L)
Note:1)P<0.05 vs786-Ogroup;2)P<0.05 vs M2+786-Ogroup.
Groups 786-O M2+786-O M2+NC 786-O M2+ST6GalⅠ786-O F P IL-1β 32.13±3.08 20.82±1.761)21.45±1.80 27.82±2.332)220.03 0.000 IL-6 26.53±1.67 12.82±1.711)11.92±0.84 22.67±1.862)318.98 0.000 IL-10 8.24±1.58 24.19±1.591)22.80±1.72 12.35±1.052)288.67 0.000 TNF-α 56.75±5.57 24.47±1.591)25.01±1.45 42.82±3.722)109.12 0.000 TGF-β1 358.65±27.89 560.23±44.341)557.38±38.56 416.38±31.952)1052.09 0.000
2.8 下調(diào)ST6GalⅠ表達(dá)的巨噬細(xì)胞對(duì)786-O細(xì)胞中免疫相關(guān)蛋白表達(dá)的影響 Western blot檢測(cè)各處理組786-O細(xì)胞中TIM-1、VEGF蛋白表達(dá)情況,結(jié)果顯示,與786-O組比較,M2+786-O組細(xì)胞中TIM-1蛋白表達(dá)下降,VEGF蛋白表達(dá)升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與M2+786-O組比較,M2+ST6GalⅠ786-O組TIM-1蛋白表達(dá)升高,而VEGF蛋白表達(dá)下降,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);M2+NC 786-O組與M2+786-O組兩個(gè)蛋白表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖8。
圖8 Western blot檢測(cè)各處理組786-O細(xì)胞中TIM-1、VEGF蛋白表達(dá)Fig.8 Western blot detection of TIM-1 and VEGF protein expressions in 786-O cells in each treatment group
腎透明細(xì)胞癌是一種高度侵入性的泌尿外科惡性腫瘤,對(duì)于局部性腎透明細(xì)胞癌可以通過(guò)手術(shù)切除與放化療等手段進(jìn)行治療,而這些常規(guī)的治療方法對(duì)于轉(zhuǎn)移性腎透明細(xì)胞癌的治療效果不佳,治療后復(fù)發(fā)率高,這也是RCC相關(guān)死亡的主要原因[3]。盡管在過(guò)去幾十年中,關(guān)于轉(zhuǎn)移性腎透明細(xì)胞癌的治療研究取得了顯著進(jìn)展,靶向酪氨酸激酶抑制劑或免疫療法已得到了批準(zhǔn)。但,參與腎透明細(xì)胞癌進(jìn)展的潛在靶標(biāo)以及確切的分子機(jī)制仍不清楚,需要進(jìn)一步深入探討以發(fā)掘診治腎透明細(xì)胞癌的新策略。
蛋白質(zhì)糖基化是一個(gè)復(fù)雜的翻譯后修飾過(guò)程,涉及將糖基部分轉(zhuǎn)移到蛋白質(zhì)的特定氨基酸殘基上,通過(guò)糖基轉(zhuǎn)移酶(GTs)形成糖苷鍵。在各種糖基化類型中,唾液酸化能夠?qū)⑼僖核峒拥教堑鞍谆蛱侵暇厶擎湹哪┒?,唾液酸參與信號(hào)識(shí)別、神經(jīng)發(fā)育、免疫反應(yīng)、腫瘤轉(zhuǎn)移等多種生物學(xué)過(guò)程[9]。一般而言,細(xì)胞中唾液酸水平的平衡由兩組酶調(diào)節(jié),即唾液酸轉(zhuǎn)移酶和唾液酸酶。目前的研究已經(jīng)揭示ST6GalⅠ水平異常與多種疾病有關(guān),如微生物感染、神經(jīng)系統(tǒng)疾病和癌癥。WATTANAVISES等[10]研究報(bào)道指出膽管癌中ST3GalI和ST6GalⅠ的水平上調(diào),且ST6GalⅠ與患者生存期密切相關(guān);WICHERT等[11]研究分析了ST6GalⅠ在預(yù)測(cè)卵巢癌預(yù)后中的作用,表明ST6GalⅠmRNA高水平表達(dá)與淋巴管浸潤(rùn)有關(guān),而ST6GalⅠ蛋白高水平表達(dá)與遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移和晚期階段相關(guān);SCHULTZ等[12]研究發(fā)現(xiàn)在卵巢癌細(xì)胞系OVCAR3中過(guò)表達(dá)ST6GAL1后,腫瘤細(xì)胞呈較高的存活力和遷移能力,并且降低的Caspase-3活化從而抑制了細(xì)胞的凋亡,從而表明ST6GalⅠ誘導(dǎo)的唾液酸化可能對(duì)卵巢癌細(xì)胞具有保護(hù)作用。本研究結(jié)果顯示,ST6GalⅠ在腎透明細(xì)胞癌組織中呈現(xiàn)高表達(dá),由此推測(cè)ST6GalⅠ參與了腫瘤細(xì)胞的發(fā)生發(fā)展。
遷移和細(xì)胞死亡導(dǎo)致機(jī)體內(nèi)常駐巨噬細(xì)胞數(shù)量減少時(shí),生長(zhǎng)因子和促炎細(xì)胞因子的刺激使血液中單核細(xì)胞分化為巨噬細(xì)胞并遷移到組織中以維持免疫系統(tǒng)穩(wěn)態(tài),并通過(guò)吞噬作用,抗原呈遞確保適當(dāng)?shù)难装Y反應(yīng)和細(xì)胞因子的產(chǎn)生[13]。因此,單核細(xì)胞向巨噬細(xì)胞的分化是生物過(guò)程的重要組成部分。在體外實(shí)驗(yàn)中,THP-1巨噬細(xì)胞由于具有穩(wěn)定的敏感性與均一遺傳的背景而常用于各項(xiàng)研究[14]。作為腫瘤微環(huán)境中重要的免疫細(xì)胞,巨噬細(xì)胞受多種趨化因子的影響可分化為M1型和M2型。M1型巨噬細(xì)胞響應(yīng)IFN、Toll樣受體配體、病原體相關(guān)分子復(fù)合物的作用而極化,分泌IL-1β、IL-6和TNF-α等促炎因子。M2型巨噬細(xì)胞因子IL-4和IL-13誘導(dǎo)所激活,并分泌IL-10和TGF-β等抗炎因子[15-16]。本實(shí)驗(yàn)選取腎透明細(xì)胞癌786-O細(xì)胞和THP-1源巨噬細(xì)胞共培養(yǎng)構(gòu)建腎透明細(xì)胞癌相關(guān)巨噬細(xì)胞模型,驗(yàn)證ST6GalⅠ在巨噬細(xì)胞上的表達(dá)對(duì)腎透明細(xì)胞癌的作用,發(fā)現(xiàn)下調(diào)ST6GalⅠ的THP-1細(xì)胞經(jīng)誘導(dǎo)后再與腎透明細(xì)胞癌細(xì)胞共培養(yǎng),對(duì)腎透明細(xì)胞癌細(xì)胞具有抑制作用,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的凋亡并減少其遷移。此外,本研究發(fā)現(xiàn)抑制ST6GalⅠ表達(dá)可逆轉(zhuǎn)巨噬細(xì)胞向M2型極化,由此推測(cè)ST6GalⅠ可能通過(guò)調(diào)控巨噬細(xì)胞極化參與腎透明細(xì)胞癌的進(jìn)程。
慢性炎癥和免疫反應(yīng)是腫瘤微環(huán)境的兩個(gè)核心要素。腫瘤微環(huán)境中存在大量的免疫/炎癥細(xì)胞,包括腫瘤相關(guān)的巨噬細(xì)胞、嗜中性粒細(xì)胞和髓樣來(lái)源抑制性細(xì)胞,以及細(xì)胞因子如IL-6、IL-10、TGF-β等,這種既有慢性炎癥狀態(tài)又有免疫抑制的作用共同調(diào)節(jié)了腫瘤細(xì)胞遷移、侵襲、轉(zhuǎn)移和抗癌藥物的敏感性[17]。一方面,分泌的細(xì)胞因子改變了細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞和抗原呈遞細(xì)胞的功能,從而抑制了腫瘤特異性的免疫反應(yīng),從而為腫瘤細(xì)胞誘導(dǎo)了特殊的免疫抑制性微環(huán)境;另一方面,腫瘤細(xì)胞通過(guò)相關(guān)信號(hào)通路改變了腫瘤微環(huán)境中免疫/炎癥細(xì)胞的分化和功能,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖[18]。研究表明,在一些因素的影響下,可降低腫瘤的免疫抑制引發(fā)腫瘤細(xì)胞的免疫原性死亡。而腫瘤微環(huán)境中分泌的免疫抑制因子,如VEGF是引起腫瘤免疫逃逸的一個(gè)主要原因,而TIM-1可調(diào)節(jié)多種效應(yīng)性T細(xì)胞的表達(dá),影響Th1/Th2細(xì)胞平衡[19]。本研究結(jié)果顯示,下調(diào)ST6GalⅠ的THP-1細(xì)胞經(jīng)誘導(dǎo)后,腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)液上清中促炎因子IL-1β、IL-6、TNF-α的含量升高,同時(shí),TIM-1蛋白表達(dá)升高而VEGF蛋白表達(dá)下降,由此推測(cè)ST6GalⅠ可能與腎透明細(xì)胞癌細(xì)胞免疫相關(guān)分子表達(dá)相關(guān),進(jìn)而參與調(diào)控腫瘤細(xì)胞免疫功能。
綜上所述,ST6GalⅠ促使腎透明細(xì)胞癌惡化的途徑可能是通過(guò)促進(jìn)巨噬細(xì)胞向M2型極化,增加促腫瘤生長(zhǎng)因子等的分泌來(lái)調(diào)控免疫相關(guān)功能,而誘發(fā)腎透明細(xì)胞癌細(xì)胞的惡性生物學(xué)行為。但具體調(diào)控過(guò)程尚未闡明,還需后續(xù)進(jìn)行深入的探索,以期為腎透明細(xì)胞癌治療的潛在靶點(diǎn)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。