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    CTLA4-Ig 腹腔注射對大鼠實驗性自身免疫性重癥肌無力的治療作用及其機制

    2022-11-23 11:00:42焦子洋梁培鑫薛占霞鄭立卿董曉華吳苗苗武海霞侯勇
    山東醫(yī)藥 2022年30期

    焦子洋,梁培鑫,薛占霞,鄭立卿,董曉華,吳苗苗,武海霞,侯勇

    河北北方學(xué)院藥學(xué)院,河北省神經(jīng)藥理學(xué)重點實驗室,河北 張家口 075000

    重癥肌無力(myasthenia gravis,MG)是一種慢性獲得性自身免疫性疾病,其病因及發(fā)病機制尚未闡明,地塞米松是目前臨床常用的MG 治療藥物[1]。研究[2-3]發(fā)現(xiàn),胸腺淋巴細(xì)胞的凋亡失控可能是MG的主要發(fā)病機制之一。細(xì)胞凋亡(apoptosis)又稱細(xì)胞程序化死亡(programmed cell death,PCD),是指機體為維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,由多基因嚴(yán)格控制的細(xì)胞主動死亡過程[4]。Fas、B 細(xì)胞淋巴瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)和半胱氨酸天冬氨酸特異蛋白酶(cysteinyl aspartate specific protease,Caspases)基因是調(diào)控淋巴細(xì)胞凋亡的相關(guān)基因[5-6]。凋亡相關(guān)因子Fas 能促進(jìn)胸腺細(xì)胞的陰性選擇,影響自身反應(yīng)性胸腺細(xì)胞的凋亡[7]。Bcl-2 可抑制細(xì)胞凋亡,而B細(xì)胞淋巴瘤-2相關(guān)X 蛋白(B-cell lymphoma-2 associated X protein,Bax)可促進(jìn)細(xì)胞凋亡,二者均參與胸腺細(xì)胞成熟過程中的正負(fù)選擇[8]。Bcl-2 基因表達(dá)的上調(diào)可導(dǎo)致胸腺組織T 細(xì)胞具備抗凋亡能力,最終誘發(fā)MG[9]。Bax/Bcl-2 變化與MG 的預(yù)后密切相關(guān)[10]。此外,研究[11]表明,Caspase 家族也參與MG或?qū)嶒炐宰陨砻庖咝灾匕Y肌無力(experimental autoimmune myasthenia gravis,EAMG)胸腺細(xì)胞凋亡障礙的發(fā)生。細(xì)胞毒性T 淋巴細(xì)胞抗原4(cytotoxic T lymphocyte antigen-4,CTLA4)是一種負(fù)性調(diào)控分子,可通過CD28/B7 介導(dǎo)的共刺激通路,防止細(xì)胞無序或過度活化,將免疫應(yīng)答控制在可控范圍[12]。細(xì)胞毒性T 淋巴細(xì)胞抗原4 免疫球蛋白(cytotoxic T lymphocyte antigen-4 immunolobulin,CTLA4-Ig)是由CTLA4 胞外區(qū)與IgG 的Fc 段融合構(gòu)建而成的,可有效抑制初始T 細(xì)胞的活化,誘導(dǎo)T 細(xì)胞進(jìn)入無能狀態(tài),表現(xiàn)為對特定抗原的不應(yīng)答[13]。本研究組前期研究[14]結(jié)果表明,CTLA4-Ig 可通過抑制CD28/B7 信號通路,減緩MG 的發(fā)生發(fā)展;CTLA4-Ig 可抑制EAMG大鼠淋巴細(xì)胞的增殖。CTLA4-Ig是否通過影響胸腺組織相關(guān)凋亡基因的表達(dá),發(fā)揮MG 治療作用,目前尚未有相關(guān)報道。因此,我們觀察了CTLA4-Ig 腹腔注射對大鼠EAMG 的治療作用,并探討其可能作用機制,現(xiàn)將結(jié)果報告如下。

    1 材料與方法

    1.1 動物、試劑及儀器 45 只雌性Lewis 大鼠(7~8 周齡,體質(zhì)量140~160 g)購自南京大學(xué)模型動物研究中心,在無特定病原體(no specific pathogen,SPF)環(huán)境中飼養(yǎng),室溫(24±2)℃,12 h 光/暗循環(huán),40%~70%相對濕度,自由獲得食物和水。本研究期間動物實驗均嚴(yán)格遵守動物倫理要求。乙酰膽堿受體(AchR)α97-116肽序列、完全弗氏佐劑(CFA)、不完全弗氏佐劑(IFA)、AChRab 及AChR ELISA 試劑盒購于美國Sigma 公司;磷酸鹽緩沖液(PBS)購于湖北武漢華東生物科技有限公司;地塞米松購于中國天津醫(yī)藥集團有限公司;CTLA4-Ig 購于美國BD公司;TRIzol 購于美國Invitrogen 公司;TaKaRa RNA PCR Kit(AMV)Ver. 3.0 購于中國大連寶生物工程有限公司。Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9 活性檢測試劑盒購于南京凱基生物發(fā)展有限公司產(chǎn)品。PCR擴增儀(德國),低溫超速離心機(北京安亭儀器設(shè)備廠,中國)。

    1.2 EAMG 模型構(gòu)建 取35 只大鼠,用AchR α 97-116 肽免疫法構(gòu)建EAMG 大鼠模型。50 μg 的AChR α97-116 肽和CFA 混合制備200 μL 乳液,然后將其皮下注射至大鼠的頸部、背部和足墊區(qū)域(注射當(dāng)天為第1 天)。第30、60 天分別在初次免疫注射部位等劑量進(jìn)行強化免疫。另外10 只大鼠為正常對照(對照組),于同期予等量生理鹽水。在第74 天評估EAMG 模型是否成功。依據(jù)大鼠臨床表現(xiàn)判斷EAMG 造模是否成功。與對照組比較,EAMG 模型大鼠造模2 周后出現(xiàn)爬行無力、背頸部皮毛松弛等MG 癥狀,4 周后癥狀明顯加重,包括呼吸困難,頭部震顫,背部出現(xiàn)腫塊,毛發(fā)倒豎,行走困難,奄奄一息。最終30 只大鼠造模成功。

    1.3 大鼠分組及CTLA4-Ig 給予方法 將30 只EAMG 模型大鼠隨機分為CTLA4-Ig 組、EAMG 組及地塞米松組,每組各10 只。第74 天時CTLA4-Ig 組大鼠用2 mg/kg 的CTLA4-Ig 腹腔注射,地塞米松組用1 mg/kg的地塞米松腹腔注射,EAMG組及對照組大鼠腹腔注射同體積PBS,1 天1 次(間隔24 h),持續(xù)至第130 天。CTLA4-Ig 給予期間,EAMG 組大鼠死亡1只,對照組麻醉死亡1只。因此每組選取9只大鼠進(jìn)行后續(xù)實驗。

    1.4 各組大鼠體質(zhì)量及肌力觀察 分別于第74、102、130 天記錄各組大鼠體質(zhì)量,觀察并記錄大鼠肌力。Lennon 評分0 級:沒有顯著的MG 癥狀,計0分;1 級:活動減少、輕微抓撓或哭聲減少,計1 分;2級:前肢屈曲、低頭、駝背、動作不協(xié)調(diào),計2分;3級:嚴(yán)重的MG 表現(xiàn),無哭無爬,震顫,處于垂死狀態(tài),計3分。如果大鼠的癥狀在上述4級之間,評分為0.5、1.5和2.5分。

    1.5 標(biāo)本留取及指標(biāo)檢測 分別于第74、102、130天采集各組大鼠尾靜脈血,第130 天同時采集大鼠后肢肌肉組織和胸腺組織。

    1.5.1 各組大鼠血清AChR IgG、AChR IgG 2b 及后肢肌肉組織AChR 含量檢測 ①采用ELISA 法檢測血清AChR IgG、AChR IgG 2b。所有操作均嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行,采用酶標(biāo)儀測定450 nm 處的光密度(OD)值,重復(fù)測定3 次取平均值。②取各組大鼠后肢肌肉組織,0.01 mol/L PBS 勻漿后離心20 min。棄上清,將沉淀物重新懸浮含有2% Triton X-100 的緩沖液中。根據(jù)說明書,使用大鼠AChR ELISA 試劑盒檢測上清液AChR 含量,重復(fù)測定3 次取平均值。

    1.5.2 各組大鼠胸腺組織凋亡相關(guān)基因mRNA 檢測 采用RT-PCR 法檢測各組大鼠胸腺組織Fas、FasL、Bcl-2、Bax、Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9基因mRNA 表達(dá)。取各組大鼠胸腺組織,提取總RNA,紫外分光光度測定RNA濃度,參考文獻(xiàn)[15]測定凋亡相關(guān)基因mRNA,以TATA 盒式蛋白編碼基因(Tbp)為內(nèi)參。根據(jù)試劑盒說明書加入各反應(yīng)試劑進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄及cDNA 擴增。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)程序:30 ℃、10 min,50 ℃、30 min,99 ℃、5 min,5 ℃、5 min;PCR擴增:94 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性40 s;51 ℃~57.5 ℃,復(fù)性40 s;72 ℃延伸40 s,循環(huán)35~40次,72 ℃延伸加時10 min。瓊脂糖凝膠電泳,F(xiàn)luorochem 5500成像系統(tǒng)采集圖像,以各凋亡相關(guān)基因mRNA吸光度和Tbp吸光度比值表示其mRNA相對表達(dá)量。凋亡相關(guān)基因和Tbp的引物序列見表1。

    表1 凋亡相關(guān)基因和Tbp引物序列

    1.5.3 各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9 活性檢測 采用紫外分光法檢測各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9活性。所有操作均嚴(yán)格按照檢測試劑盒說明書進(jìn)行。測定405 nm時的最大吸收峰值即為Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9 活性值,重復(fù)測定3 次,取平均值。

    1.6 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS21.0 統(tǒng)計軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。采用Shapiro-Wilk 檢驗進(jìn)行正態(tài)性檢驗,正態(tài)分布的計量資料以±s表示,多組間比較采用方差分析,如組間比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義則采用LSD-t檢驗進(jìn)行兩兩比較;非正態(tài)分布的計量資料以M(P25,P75)表示,組間比較采用秩和檢驗。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 第74、102、130天各組大鼠體質(zhì)量及Lennon評分比較 第74、102、130 天各組大鼠體質(zhì)量及Lennon評分比較見表1、2。

    表1 第74、102、130天各組大鼠體質(zhì)量及Lennon評分比較(g,±s)

    表1 第74、102、130天各組大鼠體質(zhì)量及Lennon評分比較(g,±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    體質(zhì)量組別CTLA4-Ig 組EAMG組地塞米松組對照組第74天151.66±4.72 150.43±3.32 149.76±4.31 147.21±4.52第102天222.15±11.68#176.44±10.87*221.34±9.01#212.43±13.71第130天230.28±11.46#184.32±12.43*232.06±10.52#222.73±12.09

    表2 第74、102、130天各組大鼠Lennon評分比較(分,±s)

    表2 第74、102、130天各組大鼠Lennon評分比較(分,±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別CTLA4-Ig 組EAMG組地塞米松組對照組Lennon評分第130天1.56±0.38#2.76±0.39*1.45±0.26#0第74天1.32±0.23*1.08±0.12*1.26±0.17*0第102天1.43±0.21#2.14±0.34*1.37±0.15#0

    2.2 各組大鼠血清AChR IgG、AChR IgG 2b 及后肢肌肉組織AChR含量比較 第74、102、130天各組大鼠血清AChR IgG、AChR IgG 2b 水平比較見表3、4。第130天CTLA4-Ig 組、EAMG組、地塞米松組及對照組大鼠后肢肌肉組織中AChR 含量分別為(4.84 ±0.37)、(2.54 ± 0.24)、(5.69 ± 0.48)、(7.43 ±0.87)μg/L,與對照組比較,EAMG 組大鼠后肢肌肉組織中AChR 含量降低(P<0.05);與EAMG 組比較,地塞米松組和CTLA4-Ig組大鼠后肢肌肉組織AChR含量增加(P<0.05)。

    表3 第74、102、130天各組大鼠血清AChR IgG水平比較(μg/L,±s)

    表3 第74、102、130天各組大鼠血清AChR IgG水平比較(μg/L,±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別AChR IgG CTLA4-Ig 組EAMG組地塞米松組對照組第130天0.17±0.04#0.64±0.08*0.15±0.04#0.17±0.02第74天0.27±0.04*0.26±0.02*0.25±0.03*0.12±0.03第102天0.12±0.01#0.42±0.05*0.11±0.02#0.17±0.04

    2.3 各組大鼠胸腺組織Fas、FasL、Bcl-2、Bax、Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9 mRNA 相對表達(dá)量比較 各組大鼠胸腺組織Fas、FasL、Bcl-2、Bax、Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9 的mRNA 相對表達(dá)量比較見表5、6。CTLA4-Ig 組、EAMG 組、地塞米松組及對照組Bax/Bcl-2 分別為(1.88±0.08)、(0.60±0.02)、(1.65±0.09)、(0.99±0.08),與對照組比較,EAMG 組大鼠Bax/Bcl-2 降低(P<0.05);與EAMG 組比較,地塞米松組和CTLA4-Ig 組大鼠Bax/Bcl-2 增加(P<0.05)。

    表4 第74、102、130天各組大鼠血清AchR IgG 2b水平比較(μg/L,±s)

    表4 第74、102、130天各組大鼠血清AchR IgG 2b水平比較(μg/L,±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別CTLA4-Ig 組EAMG組地塞米松組對照組AchR IgG 2b第130天0.14±0.02#0.58±0.07*0.11±0.03#0.09±0.02第74天0.19±0.02*0.18±0.01*0.20±0.03*0.06±0.01第102天0.12±0.04#0.35±0.02*0.13±0.02#0.11±0.03

    表5 各組大鼠胸腺組織Fas、FasL、Bcl-2、Bax的mRNA相對表達(dá)量比較(±s)

    表5 各組大鼠胸腺組織Fas、FasL、Bcl-2、Bax的mRNA相對表達(dá)量比較(±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別CTLA4-Ig 組EAMG 組地塞米松組對照組Bax mRNA 0.79±0.01#0.44±0.02 0.73±0.03#0.43±0.01 Fas mRNA 0.59±0.04*0.57±0.03*0.61±0.02*0.35±0.01 FasL mRNA 0.82±0.06#0.56±0.03 0.83±0.05#0.54±0.01 Bcl-2 mRNA 0.42±0.04#0.73±0.02*0.44±0.03#0.44±0.01

    表6 各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9的mRNA相對表達(dá)量比較(±s)

    表6 各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9的mRNA相對表達(dá)量比較(±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別CTLA4-Ig 組EAMG 組地塞米松組對照組Caspases-9 mRNA 0.88±0.07#0.52±0.02*0.86±0.05#0.84±0.06 Caspases-3 mRNA 0.68±0.03#0.43±0.01*0.72±0.03#0.71±0.02 Caspases-8 mRNA 0.88±0.07#0.51±0.01*0.87±0.06#0.83±0.05

    2.4 第130 天時各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9 活性比較 第130 天各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8 和Caspases-9活性比較見表7。

    表7 第130天各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9活性比較(±s)

    表7 第130天各組大鼠胸腺組織Caspases-3、Caspases-8和Caspases-9活性比較(±s)

    注:與對照組比較,*P<0.05;與EAMG組比較,#P<0.05。

    組別CTLA4-Ig 組EAMG 組地塞米松組對照組Caspases-9 10.58±0.44#9.72±0.64*10.36±0.49#13.78±0.92 Caspases-3 5.39±0.48#2.38±0.15*5.73±0.37#4.63±0.62 Caspases-8 9.22±0.46#4.83±0.42*9.57±0.63#9.37±0.54

    3 討論

    CD28/B7 介導(dǎo)的共刺激是淋巴細(xì)胞活化的重要輔助信號,并在MG 初次免疫反應(yīng)中起著至關(guān)重要的作用[16]。CTLA4是B7分子的另一種天然受體,其介導(dǎo)的共刺激信號可防止細(xì)胞無序或過渡活化,將免疫應(yīng)答控制在可控的范圍內(nèi)[12]。研究[13]證明,CTLA4 以比CD28 更大的親和力結(jié)合B7-1 和B7-2,從而使其能比CD28 競爭其配體,最終將抑制信號傳遞給T 細(xì)胞。CTLA4 作為負(fù)性調(diào)控分子,其在自身免疫性疾病發(fā)生發(fā)展中的作用受到廣泛關(guān)注[17]。將CTLA4 作為免疫靶點來治療自身免疫性疾病的新途徑已漸成趨勢[14]。 CTLA4-Ig 是由CTLA4 其胞外區(qū)與IgG 的Fc 段融合構(gòu)建而成。本研究結(jié)果表明,CTLA4-Ig 腹腔注射可明顯改善EAMG 大鼠臨床癥狀,并顯著降低AChR IgG 和AChR IgG 2b 血清水平同時恢復(fù)后肢肌肉中AChR 含量。CTLA4-Ig發(fā)揮MG 治療作用的機制可能與細(xì)胞凋亡機制密切相關(guān)。

    研究[18]證實,F(xiàn)as 及FasL 基因突變可導(dǎo)致T 細(xì)胞凋亡障礙,使某些自身反應(yīng)性淋巴細(xì)胞無法被清除,從而導(dǎo)致Fas 及FasL 基因缺陷的大鼠易感EAMG。合并胸腺瘤的MG 患者胸腺組織Fas 表達(dá)升高[19];但另有研究[20]報道,MG 患者胸腺淋巴樣濾泡組織中Fas 抗原表達(dá)降低。MG 患者胸腺組織Fas表達(dá)異常已達(dá)成共識,但其表達(dá)水平至今仍有爭議,尚需進(jìn)一步研究證實。該研究結(jié)果顯示,與對照組比較,EAMG 組大鼠胸腺Fas mRNA 表達(dá)上調(diào),但FasL mRNA表達(dá)無顯著變化;Caspases-3和Caspases-8的mRNA 表達(dá)均下調(diào)且活性下降;與EAMG 組比較,CTLA4-Ig 組和地塞米松組FasL mRNA 表達(dá)上調(diào);Caspases-3 和Caspases-8 的mRNA 表達(dá)均上調(diào)且活性增加。Caspases-8 是由Fas/FasL 家族介導(dǎo),參與外源性細(xì)胞凋亡信號的傳導(dǎo)[21]。研究[22]報道,F(xiàn)as與FasL 結(jié)合,F(xiàn)as 通過胞內(nèi)區(qū)的死亡結(jié)構(gòu)域(death domain,DD)招募有死亡結(jié)構(gòu)域的Fas 相關(guān)蛋白(Fas-associated protein with death domain,F(xiàn)ADD),F(xiàn)ADD 氨基端的死亡效應(yīng)域(death effector domain,DED)與Caspase-8氨基端原域(prodomain)中的DED相互作用,把Caspase-8 酶原募集到Fas 區(qū)域,形成死亡誘導(dǎo)信號復(fù)合體(death-inducing signal complex,DISC)。從而導(dǎo)致Caspases-8 自身水解活化,活化的Caspases-8 進(jìn)一步激活其下游Caspases-3[23]。本研究結(jié)果顯示,EAMG大鼠胸腺Fas mRNA表達(dá)上調(diào),F(xiàn)asL mRNA 表達(dá)無顯著變化,Caspases-8 mRNA表達(dá)下調(diào),活性下降。推測Fas mRNA 表達(dá)以可溶型Fas(soluble Fas,sFas)表達(dá)上調(diào)為主。sFas 是由細(xì)胞膜表面Fas 分子從膜表面脫落而形成,sFas 與Fas 競爭結(jié)合FasL,干擾Fas/FasL 途徑,導(dǎo)致“凋亡缺損”,其下游基因Caspases-8 因無激活信號而表達(dá)下調(diào),活性下降[24]。CTLA4-Ig 干預(yù)后重新激活Fas/FasL 介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡通路,進(jìn)而Caspases-8 和Caspases-3的mRNA表達(dá)上調(diào),活性增加。

    生理條件下,胸腺組織T 淋巴細(xì)胞的陽性選擇過程中Bcl-2 表達(dá)下降,促進(jìn)CD4+CD8+雙陽性細(xì)胞凋亡,而CD4+及CD8+單陽性T 淋巴細(xì)胞中的Bcl-2表達(dá)水平上升,抑制細(xì)胞凋亡,促進(jìn)T淋巴細(xì)胞的進(jìn)一步發(fā)育成熟,從而建立穩(wěn)定的人體正常免疫系統(tǒng)[25]。Caspases-9是由Bcl-2家族介導(dǎo)的線粒體凋亡通路的啟始因子。當(dāng)細(xì)胞受到一些體內(nèi)外信號刺激時,Bcl-2 家族相關(guān)蛋白活化,使線粒體膜通透性增加,細(xì)胞色素C(cytochrome c,Cytc)釋放增加,其與Caspases-9 及凋亡活化因子-1(apoptosis activating factor -1,Apaf-1)結(jié)合,形成凋亡體,凋亡體再水解并釋放Cytc,后者使Apaf-1進(jìn)一步聚集,形成七聚復(fù)合物,具有較強的Caspase-9 激活活性,最終促進(jìn)Caspase-9 自我剪切并活化?;罨腃aspase-9 啟動Caspase 級聯(lián)反應(yīng)激活Caspase-3,從而啟動細(xì)胞調(diào)亡,Caspase-3 是執(zhí)行細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵因子[26-27]。研究[28]證明,Bax 與Bcl-2 的比例決定了線粒體膜的完整性及細(xì)胞凋亡的易感性。本研究結(jié)果顯示,與對照組比較,EAMG 組大鼠胸腺Bcl-2 mRNA 表達(dá)上調(diào),Bax mRNA 表達(dá)無明顯變化,Bax/Bcl-2 顯著降低;Caspases-3 和Caspases-9 的mRNA 表達(dá)均下調(diào)且活性下降;與EAMG 組比較,CTLA4-Ig 組和地塞米松組Bax mRNA 表達(dá)上調(diào),Bcl-2 mRNA 表達(dá)下調(diào),Bax/Bcl-2 升 高,Caspases-3 和Caspases-9 的mRNA表達(dá)均上調(diào)且活性增加。ALAKOU 等研究[6]表明,在接受胸腺切除術(shù)的MG 患者Bax/Bcl-2 增加,進(jìn)而上調(diào)Caspase-3表達(dá),最終調(diào)節(jié)與疾病進(jìn)展相關(guān)的細(xì)胞凋亡,且Bax/Bcl-2 的大小可以預(yù)測MG 患者病情改善的情況,可視為一個獨立的預(yù)后因素[6]。

    綜上所述,CTLA4-Ig 腹腔注射可改善EAMG 大鼠的臨床癥狀。CTLA4-Ig 可能通過上調(diào)胸腺組織FasL mRNA、Bax mRNA 、Bcl-2mRNA、Caspases-3 mRNA、Caspases-8 mRNA 和Caspases-9 mRNA 表達(dá),發(fā)揮MG治療作用。

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