張 瑜,呂小燕
(山西省中醫(yī)院,山西 太原 030012)
潰瘍性結腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種慢性非特異性腸道炎癥疾病,主要臨床表現(xiàn)為體質量下降、嘔吐腹瀉、黏液便血等[1]。UC的發(fā)病機制暫不明確,大量研究認為是由感染、免疫及遺傳等多種因素引起腸黏膜屏障功能受損,造成潰瘍[2],且黏膜損傷不易治愈,反復發(fā)作,給人們日常生活與健康帶來了嚴重威脅[3]。目前臨床上治療UC多使用糖皮質激素類生物制劑,雖然這類藥物治療UC效果顯著,但其不良反應大且復發(fā)率較高[4]。研究表明,中醫(yī)藥可以修復受損腸黏膜[5-6]。蒼耳亭是存在于多刺菊科蒼耳屬植物的一種倍半萜內酯化合物,具有抗炎、抗腫瘤、抗?jié)兊淖饔肹7]。MAPK家族成員細胞外信號調節(jié)激酶(extracellular signal-regulated protein kinase,ERK)和c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)參與調控機體炎癥反應以及免疫應激等多種病理過程,介導腫瘤細胞的增殖與分化[8]。本研究通過建立UC大鼠模型,探究蒼耳亭對UC大鼠腸道黏膜的保護作用以及對ERK/JNK信號通路的調控作用。
1.1 實驗動物 6周齡SPF級SD雄性大鼠90只,體質量200~220 g,由濟南朋悅實驗動物繁育有限公司提供,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(魯)2019-0003。實驗過程符合“3R”原則,并得到動物倫理委員會批準,動物倫理審查號:AWE-2019-004。實驗前大鼠適應性飼養(yǎng)1周,環(huán)境條件為溫度22~25 ℃,相對濕度40%~50%,晝夜時長12 h:12 h。
1.2 藥物與試劑 2,4,6-三硝基甲苯磺酸(TNBS)(批號:146817)購自臨沂艾科化學試劑有限公司;柳氮磺胺吡啶(批號:S0883)購自美國Sigma公司;蒼耳亭(批號:C-033)購自成都瑞芬思生物科技有限公司;IL-6檢測試劑盒(批號:SNDR734)、TNF-α檢測試劑盒(批號:SND-R635)、IL-10檢測試劑盒(批號:SND-R793)均購自滁州仕諾達生物科技有限公司;咬合蛋白(Occludin)(批號:91131S)、緊密連接蛋白1(Claudin-1)(批號:4933S)、Caspase-3(批號:9662S)、p-ERK抗體(批號:5726S)、ERK抗體(批號:4696S)、p-JNK抗體(批號:4668S)、JNK抗體(批號:9252S)、羊抗兔二抗(批號:7074S)、羊抗小鼠二抗(批號:7076S)均購自美國CST公司;HE染色試劑盒(批號:G1120)、DAB顯色試劑盒(批號:DA1016)、高效RIPA裂解液(批號:R0010)、BCA蛋白檢測試劑盒(批號:PC0020)、ECL發(fā)光試劑盒(批號:SW2040)均購自北京索萊寶生物技術公司。
1.3 主要儀器 Contour Elite三維光學顯微鏡(美國布魯克公司);JXFSTPRP-24/32全自動樣品快速研磨機(上海凈信實業(yè)發(fā)展有限公司);Mini P-4小型垂直電泳系統(tǒng)(北京凱元信瑞儀器有限公司);SIM凝膠成像分析系統(tǒng)(美國Bio-Best公司)。
1.4 模型建立與分組 90只SD大鼠按照隨機數(shù)字表法分為正常組、模型組、陽性藥物組、蒼耳亭低劑量組、蒼耳亭中劑量組、蒼耳亭高劑量組,每組15只。參照文獻[9]建立大鼠UC模型:采用5%TNBS與50%乙醇等比例混合配制造模劑混合液。6組大鼠禁食不禁水36 h,腹腔注射水合氯醛麻醉,采用灌胃針從大鼠肛門插入約8 cm,正常組大鼠給予生理鹽水1 mL,其余5組大鼠給予造模劑1 mL。造模完成后,觀察大鼠狀態(tài)變化,出現(xiàn)血便、消瘦、少食、精神沉郁、反應遲鈍等表現(xiàn),提示造模成功[10]。
1.5 實驗給藥 造模成功后24 h進行給藥,陽性藥物組大鼠灌胃給予柳氮磺胺吡啶溶液,300 mg/kg[11];根據(jù)《實驗動物和動物實驗技術》進行給藥量計算,參照大鼠與人體表面積等效劑量比值折算,蒼耳亭低、中、高劑量組大鼠分別灌胃給予蒼耳亭溶液100、200、400 mg/kg,正常組與模型組大鼠給予等體積蒸餾水。1次/d,2 mL/次,連續(xù)給藥2周。
1.6 觀察指標
1.6.1 疾病活動指數(shù)(disease activity index,DAI)與結腸黏膜損傷指數(shù)(colonic mucosa damage index,CMDI)的評估 記錄各組大鼠排出的糞便性狀、便血情況和體質量變化,取3項得分的平均數(shù)作為DAI評分。治療結束后處死大鼠,取出完整結腸,進行CMDI評分。DAI與CMDI評分標準見表1。
表1 DAI 與CMDI 評分標準[12-13]
1.6.2 HE染色觀察大鼠結腸黏膜病理變化 評分結束后清洗結腸黏膜組織,每組隨機取5只大鼠結腸黏膜組織置于多聚甲醛中固定,制備常規(guī)石蠟切片,進行HE染色,置于光學顯微鏡下觀察結腸黏膜病理變化。
1.6.3 ELISA法檢測結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量 評分結束后,每組隨機取5只大鼠結腸黏膜組織,按照與PBS溶液1∶9的比例,進行勻漿,取上清液,按照ELISA試劑盒說明書進行操作,檢測結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量。
1.6.4 免疫組化檢測結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3蛋白表達 取制備好的大鼠結腸黏膜組織切片,進行脫蠟水合,采用枸櫞酸溶液進行抗原修復,H2O2孵育后,加入山羊血清封閉,清洗后加入Occludin、Claudin-1、Caspase-3一抗,4 ℃孵育,次日加入二抗,室溫孵育,采用DAB法顯色,再進行沖洗,蘇木精復染,封片,顯微鏡下拍照,采用Image 7.0圖像分析軟件測定Occludin、Claudin-1、Caspase-3積分光密度值。
1.6.5 Western blotting法檢測ERK/JNK信號通路相關蛋白的表達 取剩余大鼠結腸黏膜組織,加入蛋白裂解液,勻漿后提取總蛋白并采用BCA法測定蛋白濃度,取50 μg蛋白上樣,電泳、轉膜,5%脫脂奶粉封閉,加入稀釋好的p-ERK、ERK、p-JNK、JNK一抗,4 ℃孵育過夜,加入稀釋好的二抗,室溫孵育1.5 h,采用ECL發(fā)光試劑盒顯色,凝膠成像分析系統(tǒng)采集圖像并分析灰度值,以GAPDH為內參,計算p-ERK/ERK、p-JNK/JNK。
1.7 統(tǒng)計學方法 采用Graphpad Prism 8.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料以“均數(shù)±標準差”()表示。多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 各組大鼠DAI與CMDI評分比較 與正常組比較,模型組大鼠DAI與CMDI評分均明顯升高(P<0.05);與模型組比較,陽性藥物組與蒼耳亭低、中、高劑量組大鼠DAI與CMDI評分均明顯降低(P<0.05);與陽性藥物組比較,蒼耳亭低、中劑量組大鼠DAI與CMDI評分均明顯升高(P<0.05);蒼耳亭高劑量組大鼠DAI與CMDI評分與陽性藥物組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。蒼耳亭各劑量組間存在劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。(見表2)
表2 各組大鼠DAI 與CMDI 評分比較()
表2 各組大鼠DAI 與CMDI 評分比較()
注:與正常組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與陽性藥物組比較,cP<0.05;與蒼耳亭低劑量組比較,dP<0.05;與蒼耳亭中劑量組比較,eP<0.05
2.2 各組大鼠結腸黏膜組織病理變化 正常組大鼠結腸黏膜上皮組織整齊,細胞排列密集,可見杯狀隱窩,無病變;模型組大鼠結腸黏膜可見隱窩消失,大量炎癥細胞浸潤,黏膜下層也出現(xiàn)炎癥現(xiàn)象;蒼耳亭低劑量組大鼠結腸黏膜上皮組織仍可見一些炎癥細胞浸潤,未見隱窩;蒼耳亭中劑量組大鼠結腸黏膜病變情況減輕,可見隱窩結構,少量炎癥細胞浸潤;蒼耳亭高劑量組與陽性藥物組大鼠結腸黏膜組織逐漸趨于正常,可見明顯隱窩,未見炎癥細胞浸潤。(見圖1)
圖1 各組大鼠結腸黏膜病理切片圖(HE,×200)
2.3 各組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量比較 與正常組比較,模型組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α含量均明顯升高(P<0.05),IL-10含量明顯降低(P<0.05);與模型組比較,陽性藥物組和蒼耳亭低、中、高劑量組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α含量均明顯降低(P<0.05),IL-10含量明顯升高(P<0.05),且蒼耳亭各劑量組間比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);與陽性藥物組比較,蒼耳亭低、中劑量組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α含量均明顯升高(P<0.05),IL-10含量明顯降低(P<0.05);蒼耳亭高劑量組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量與陽性藥物組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見表3)
表3 各組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量比較()
表3 各組大鼠結腸黏膜組織中IL-6、TNF-α、IL-10含量比較()
注:與正常組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與陽性藥物組比較,cP<0.05;與蒼耳亭低劑量組比較,dP<0.05;與蒼耳亭中劑量組比較,eP<0.05
2.4 各組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表達比較 與正常組比較,模型組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1表達明顯降低(P<0.05),Caspase-3表達明顯升高(P<0.05);與模型組比較,陽性藥物組和蒼耳亭低、中高劑量組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1表達明顯升高(P<0.05),Caspase-3表達明顯降低(P<0.05);與陽性藥物組比較,蒼耳亭低、中劑量組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1表達明顯降低(P<0.05),Caspase-3表達明顯升高(P<0.05);蒼耳亭高劑量組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表達與陽性藥物組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。蒼耳亭各劑量組間大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3表達比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。(見圖2、表4)
圖2 各組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 的表達情況(免疫組化,×400)
表4 各組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 表達水平比較()
表4 各組大鼠結腸黏膜組織中Occludin、Claudin-1、Caspase-3 表達水平比較()
注:與正常組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與陽性藥物組比較,cP<0.05;與蒼耳亭低劑量組比較,dP<0.05;與蒼耳亭中劑量組比較,eP<0.05
2.5 各組大鼠結腸黏膜組織中ERK/JNK信號通路相關蛋白表達比較 與正常組比較,模型組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK明顯升高(P<0.05);與模型組比較,陽性藥物組和蒼耳亭低、中、高劑量組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK均明顯降低(P<0.05);與陽性藥物組比較,蒼耳亭低、中劑量組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK均明顯升高(P<0.05);蒼耳亭高劑量組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK與陽性藥物組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05);蒼耳亭各劑量組間結腸黏膜組織p-ERK/ERK、p-JNK/JNK比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。(見圖3、表5)
圖3 各組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK、ERK、p-JNK、JNK蛋白表達Western blotting 圖
表5 各組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK 的比較()
表5 各組大鼠結腸黏膜組織中p-ERK/ERK、p-JNK/JNK 的比較()
注:與正常組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與陽性藥物組比較,cP<0.05;與蒼耳亭低劑量組比較,dP<0.05;與蒼耳亭中劑量組比較,eP<0.05
UC是一種嚴重的腸道炎癥性疾病,其發(fā)病機制復雜,以結腸黏膜充血、糜爛為主要病理特征[14]。研究[15-16]證實UC的發(fā)生與免疫應答紊亂、炎癥反應以及腸道黏膜屏障受損有關。研究[17]表明,UC發(fā)生時,結腸黏膜組織中炎癥反應被持續(xù)激活,大量炎癥因子如TNF-α、IL-18等分泌,引起腸道黏膜屏障功能被破壞,腸黏膜組織受損。Claudin-1蛋白是一種緊密連接蛋白,能夠維護結腸黏膜屏障的完整性和通透性[18]。Occludin蛋白是緊密連接中最重要的結構蛋白,參與緊密連接信號調節(jié)[19]。研究[20]表明,Occludin、Claudin-1表達下調,導致結腸黏膜組織通透性增加,結腸黏膜屏障功能受阻,導致UC發(fā)生。本研究結果顯示,UC模型大鼠DAI與CMDI評分均明顯升高,結腸黏膜組織病變嚴重,結腸黏膜組織中炎癥因子IL-6、TNF-α含量明顯升高,IL-10含量明顯降低,且Occludin、Claudin-1表達明顯下調,提示結腸黏膜組織中炎癥反應被激活,結腸黏膜屏障功能被破壞,結腸黏膜組織受損,提示UC模型建立成功。
蒼耳亭作為一種倍半萜內酯類化合物,具有抗炎、抗氧化、抗腫瘤等多種藥理作用[21]。有研究[22]表明,蒼耳亭能夠通過介導細胞凋亡起到抗腫瘤的作用。本研究結果表明,低、中、高劑量蒼耳亭干預后的UC大鼠結腸黏膜組織中炎癥因子IL-6、TNF-α含量均明顯降低,IL-10含量明顯升高,Occludin、Claudin-1表達明顯上調,結腸黏膜組織損傷減輕,提示蒼耳亭能夠減輕炎癥反應,對UC大鼠結腸黏膜屏障功能和組織損傷具有保護作用。
ERK、JNK是絲氨酸蛋白酶家族的兩種代表性蛋白酶,可參與腸道損傷,介導細胞分化,誘導多種細胞因子、蛋白的表達[23-24]。ERK、JNK在UC的發(fā)生中參與炎癥反應與氧化應激反應,細胞中分泌的促炎因子能夠激活JNK參與炎癥反應[25]。ERK受到炎癥因子刺激被激活,磷酸化的ERK參與調節(jié)細胞纖維化,誘導細胞凋亡[26]。使用藥物干預后,ERK/JNK信號通路被抑制,能夠有效緩解DSS誘導的UC小鼠炎癥反應與細胞凋亡[27]。本研究結果顯示,UC大鼠結腸黏膜組織中Caspase-3表達與p-ERK/ERK、p-JNK/JNK上調,提示結腸黏膜組織中細胞凋亡增加,ERK/JNK信號通路被激活。而蒼耳亭干預后的UC大鼠結腸黏膜組織中Caspase-3表達與p-ERK/ERK、p-JNK/JNK下調,提示蒼耳亭可能通過下調ERK、JNK磷酸化表達,抑制UC大鼠炎癥反應與細胞凋亡,并上調Occludin、Claudin-1表達,改善結腸黏膜屏障功能,減輕UC大鼠結腸黏膜組織損傷。
綜上所述,蒼耳亭能夠下調UC大鼠促炎因子IL-6、TNF-α和Caspase-3的表達,減輕炎癥反應,抑制細胞凋亡,上調抑炎因子IL-10和Occludin、Claudin-1表達,改善結腸黏膜屏障功能,減輕結腸黏膜組織損傷,其機制可能與抑制ERK/JNK信號通路表達有關,這為中醫(yī)藥治療UC提供了新的理論依據(jù)。