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    TaqMan實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)菰米成分的方法建立

    2022-10-27 05:14:58楊愛(ài)馥劉雪華鄭秋月
    食品工業(yè)科技 2022年21期
    關(guān)鍵詞:檢測(cè)

    楊愛(ài)馥,萬(wàn) 超,劉雪華,梁 冰,鄭秋月,姜 麗,

    (1.大連海關(guān),遼寧大連 116001;2.大連民族大學(xué),遼寧大連 116600)

    隨著現(xiàn)代食品營(yíng)養(yǎng)學(xué)的發(fā)展,公眾對(duì)營(yíng)養(yǎng)問(wèn)題關(guān)注的焦點(diǎn)已經(jīng)由解決一般人群傳統(tǒng)的營(yíng)養(yǎng)缺乏轉(zhuǎn)向如何合理膳食、平衡營(yíng)養(yǎng)、促進(jìn)健康。隨著國(guó)民生活水平的不斷提高,以及民眾保健養(yǎng)生意識(shí)的增強(qiáng),高營(yíng)養(yǎng)、高價(jià)值農(nóng)產(chǎn)品迎合了現(xiàn)階段國(guó)民食物需求營(yíng)養(yǎng)化、健康化的特點(diǎn),消費(fèi)量快速增長(zhǎng)。菰米(Wild rice),也被稱作野米,是禾本科菰屬()植物的穎果,屬于全谷物,具有極高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,富含蛋白質(zhì)、必需氨基酸、脂肪酸、維生素、膳食纖維以及各種微量元素,且脂肪含量低。此外,菰米還含有大量的活性物質(zhì),如酚酸、植物甾醇、谷維素、-氨基丁酸、類黃酮等,保證了其作為功能性食品的發(fā)展。菰米中的活性物質(zhì)能夠有效地抑制高脂血癥和氧化應(yīng)激,預(yù)防肥胖和肝臟脂肪毒性,改善異常糖代謝和抑制胰島素抵抗、預(yù)防動(dòng)脈粥樣硬化、還具有抗氧化、抗炎、抗過(guò)敏和免疫調(diào)節(jié)作用。因此,菰米已得到了國(guó)內(nèi)外的廣泛認(rèn)可,成為一種高價(jià)值的保健食品,被稱為“谷物中的魚(yú)子醬”。

    世界上菰屬植物有4種,包括分布在東亞的中國(guó)菰()以及分布在北美的水生菰()、沼生菰(s)和德克薩斯菰()。隨著菰米的商業(yè)化程度日益提高,北美菰米已作為一種營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高、風(fēng)味獨(dú)特、價(jià)格昂貴的健康食品進(jìn)入飲食業(yè)并大量出口到法國(guó)、德國(guó)和意大利等國(guó)家,我國(guó)也批準(zhǔn)了加拿大菰米的準(zhǔn)入。這種進(jìn)口的“營(yíng)養(yǎng)之王”,正在占據(jù)國(guó)人的餐桌。但是目前尚無(wú)菰米成分檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)和檢測(cè)方法,市場(chǎng)上銷(xiāo)售的菰米制品魚(yú)龍混雜、真假難辨,因此急需開(kāi)發(fā)快速、靈敏、精準(zhǔn)的菰米成分真?zhèn)舞b別方法,以保護(hù)消費(fèi)者的權(quán)益,并為菰米及其制品的進(jìn)口監(jiān)管提供技術(shù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    廣泛收集菰米樣品及近源谷物、異源食用菌和動(dòng)物樣品,包括大米、薏米、糯米、高粱米、紅米、黑米、黑麥、蕎麥、苦蕎、燕麥、大麥、小麥、藜麥、黃米、奇亞籽、黑芝麻、玉米、黑豆、蕓豆、黃豆、綠豆、扁豆、鷹嘴豆、紅豆、木耳、香菇、鱈魚(yú)、豬肉、牛肉、鴨肉等 購(gòu)自各網(wǎng)絡(luò)平臺(tái)及大連各超市;植物基因組 DNA 提取試劑盒(貨號(hào) DP305)TIANGEN;Premix ExTaqTM Probe qPCR(貨號(hào)RR390 A) TAKARA;合成引物、探針及測(cè)序 由華大基因完成。

    QuantStudio 6 Flex實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀 ABI公司; NanoDrop Lite 分光光度計(jì) ThermoFisher公司;5415R小型高速冷凍離心機(jī) Eppendorf公司;WNB7 7L恒溫水浴鍋 Memmert公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 DNA提取 按照TIANGEN基因組 DNA 提取試劑盒操作說(shuō)明進(jìn)行DNA提??;使用超微量分光光度計(jì)進(jìn)行DNA純度及濃度的測(cè)定。

    1.2.2 樣品真實(shí)性鑒定 利用DNA條形碼技術(shù)對(duì)收集到的菰米和近源谷物樣品針對(duì)ITS基因的部分特異區(qū)段進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果在NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov)進(jìn)行BLAST比對(duì),進(jìn)行樣品真實(shí)性鑒定,并選取相似度最高的結(jié)果進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)的構(gòu)建。

    1.2.3 引物設(shè)計(jì) 從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中下載中國(guó)菰()、水生菰()、沼生菰()和德克薩斯菰()及其近源種栽培稻()、小粒野生稻()、斑點(diǎn)野生稻()、緊穗野生稻()的 ITS 基因序列,通過(guò)Mega4比對(duì)分析,根據(jù)引物、探針差異性原則、利用軟件Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)特異性引物和探針。序列如下:上游引物:5’-CGAGAGTCGTGTGG ATGTTGT-3’;下游引物:5’-TGCGGAAGGATCATT GTCGT-3’;探針:FAM-5’- CGGCGGTCGGTAAGAGG TGTTCC-3’-TAMRA

    1.2.4 實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法建立 實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系見(jiàn)表1。

    表1 TaqMan實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系Table 1 Reaction system for TaqMan real-time PCR

    反應(yīng)條件:95 ℃ 預(yù)變性 10 min(1 個(gè)循環(huán));95 ℃變性 5 s,60 ℃ 退火/延伸 30 s(40 個(gè)循環(huán)),熒光閾值為設(shè)備默認(rèn)值。

    1.2.5 特異性試驗(yàn) 利用1.2.1中的DNA提取方法提取1.1中所述各樣品基因組DNA,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增,以ddHO水為空白對(duì)照,檢測(cè)所建立實(shí)時(shí)熒光PCR方法的特異性。

    1.2.6 靈敏度試驗(yàn) 模擬添加:分別以鱈魚(yú)粉和易混谷物(大米、黑米和黑麥混合物)為基質(zhì)做添加試驗(yàn)。待測(cè)物菰米樣品與基質(zhì)按質(zhì)量比例(100%、10%、1%、0.1%、0.01%)進(jìn)行混合,提取不同濃度混合樣品DNA,作為靈敏度檢測(cè)模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)。

    菰米基因組DNA梯度稀釋至質(zhì)量濃度為10 ng/μL、1 ng/μL、100 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL、0.1 pg/μL,進(jìn)行靈敏度檢測(cè)試驗(yàn)。

    1.2.7 重復(fù)性和穩(wěn)定性試驗(yàn) 菰米基因組DNA梯度稀釋至質(zhì)量濃度為10、1、0.1 ng/μL,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè),每個(gè)樣品3個(gè)平行,以不同濃度基因組DNA獲得的Ct值計(jì)算其平均數(shù)和變異系數(shù),進(jìn)行重復(fù)性和穩(wěn)定性分析。

    1.2.8 市售樣品的檢測(cè)試驗(yàn) 購(gòu)置市售的進(jìn)口菰米80份,菰米碎米5份,雜糧米10份,混合米粉5份,檢測(cè)其是否含有菰米成分。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    實(shí)驗(yàn)設(shè)置3個(gè)平行,每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,結(jié)果以3次重復(fù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差(SD)表示。利用QS6實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 儀自帶的軟件分析擴(kuò)增曲線和 Ct 值。利用 Microsoft Excel 2016 對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 樣品真實(shí)性鑒定

    利用DNA條形碼技術(shù)對(duì)收集到的近源谷物樣品進(jìn)行真實(shí)性和準(zhǔn)確性鑒定,結(jié)果如圖1和表2所示。本研究收集到的樣品序列和NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)相似度達(dá)99.9%。

    表2 菰米和近源谷物樣品名稱及測(cè)序結(jié)果Table 2 Name and sequencing results of wild rice and near source grain samples

    圖1 菰米和近源谷物的分子進(jìn)化樹(shù)Fig.1 Evolutionary tree of wild rice and near source grain samples

    2.2 真核生物18S rRNA通用引物檢測(cè)結(jié)果

    用真核生物18S rRNA通用引物擴(kuò)增本試驗(yàn)所提取的所有樣品DNA溶液,所有樣品DNA溶液均出現(xiàn)擴(kuò)增曲線,Ct值范圍在15.26~24.85之間,說(shuō)明所有用于菰米成分特異性檢測(cè)的DNA樣品均適用于實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)(圖2)。

    圖2 菰米和其他樣品18S rRNA基因檢測(cè)結(jié)果Fig.2 Detection results of 18S rRNA gene in wild rice and other materials

    2.3 菰米成分實(shí)時(shí)熒光PCR特異性檢測(cè)

    檢測(cè)收集到的4個(gè)菰米物種樣品:中國(guó)菰()、水生菰()、沼生菰()、德克薩斯菰(),以大米等其他谷物以及大豆、鱈魚(yú)等異源性動(dòng)植物基因組DNA作為陰性對(duì)照,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增,檢測(cè)引物和探針的特異性。結(jié)果顯示,4個(gè)菰米物種樣品均出現(xiàn)明顯的擴(kuò)增曲線,大米等其他谷物以及異源性動(dòng)植物基因組DNA(圖3)均無(wú)擴(kuò)增檢測(cè)結(jié)果,不同物種之間沒(méi)有交叉反應(yīng),說(shuō)明建立的實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法具有很好的特異性。

    圖3 菰米的實(shí)時(shí)熒光PCR特異性檢測(cè)結(jié)果Fig.3 Specific detection results of wild rice by real-time PCR

    2.4 菰米成分實(shí)時(shí)熒光PCR靈敏度檢測(cè)

    菰米樣品和鱈魚(yú)粉樣品按質(zhì)量比例(100%、10%、1%、0.1%、0.01%)進(jìn)行混合,提取不同濃度混合樣品DNA,作為靈敏度檢測(cè)模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)。結(jié)果如圖4所示,菰米檢測(cè)方法的靈敏度可穩(wěn)定達(dá)到0.01%(W/W)。

    圖4 模擬添加鱈魚(yú)粉靈敏度檢測(cè)結(jié)果Fig.4 Sensitivity test results of simulated added Gadus macrocephalus powder

    菰米樣品和易混谷物(大米、黑米和黑麥混合物)基質(zhì)按質(zhì)量比例(100%、10%、1%、0.1%、0.01%)進(jìn)行混合,提取不同濃度混合樣品DNA,作為靈敏度檢測(cè)模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)。結(jié)果顯示如圖5所示,菰米檢測(cè)方法的靈敏度可穩(wěn)定達(dá)到0.01%(W/W)。

    圖5 模擬添加易混谷物靈敏度檢測(cè)結(jié)果Fig.5 Sensitivity test results of simulated mixed grains

    以 1 μL濃度范圍在 10~0.0001 ng/μL之間菰米基因組DNA為模板,進(jìn)行靈敏度試驗(yàn)。結(jié)果顯示,當(dāng)反應(yīng)體系中模板量為0.001 ng時(shí),出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線,該方法的最低檢出限為0.001 ng基因組DNA(圖6)。

    圖6 不同DNA濃度靈敏度檢測(cè)結(jié)果Fig.6 Sensitivity test results of different DNA concentrations

    2.5 重復(fù)性和穩(wěn)定性試驗(yàn)

    以 1 μL 濃度分別為 10、1、0.1 ng/μL 的菰米基因組DNA為模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè),以不同濃度基因組DNA獲得的Ct值計(jì)算其平均數(shù)和變異系數(shù),進(jìn)行重復(fù)性和穩(wěn)定性分析。結(jié)果顯示,批內(nèi)變異系數(shù)在0.42%~0.84%,批間變異系數(shù)在1.74%~2.91%(表3),說(shuō)明建立的實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法有較好的重復(fù)性和穩(wěn)定性。

    表3 菰米實(shí)時(shí)熒光PCR重復(fù)性和穩(wěn)定性試驗(yàn)分析Table 3 Repeatability and stability of real-time PCR for wild rice detection

    2.6 菰米成分實(shí)時(shí)熒光PCR法實(shí)際應(yīng)用檢測(cè)

    對(duì)市售的進(jìn)口菰米、菰米碎米以及不含菰米成分的雜糧米和混合米粉等100份樣品進(jìn)行檢測(cè),其中菰米樣品均出現(xiàn)擴(kuò)增曲線,均為陽(yáng)性結(jié)果;不含菰米成分的雜糧米和混合米粉樣品均未出現(xiàn)擴(kuò)增曲線,為陰性結(jié)果(表4),檢測(cè)結(jié)果與商品標(biāo)識(shí)一致。由大量的實(shí)際應(yīng)用結(jié)果可見(jiàn),本方法檢測(cè)食品中菰米成分具有很好的適用性。

    表4 市售菰米商品檢測(cè)結(jié)果Table 4 Detection results of commercial wild rice

    3 結(jié)論

    實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)因其具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、重復(fù)性好、速度快、全封閉反應(yīng)等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)成為食品安全檢測(cè)的重要工具,被廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)基因成分檢測(cè)、動(dòng)植物源性成分檢測(cè)、高經(jīng)濟(jì)價(jià)值農(nóng)產(chǎn)品摻雜鑒偽、食源性致病菌檢測(cè)等領(lǐng)域。本研究以菰米ITS基因?yàn)闄z測(cè)靶標(biāo),建立了菰米成分實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法,通過(guò)分析菰米樣品及其他谷物和異源性動(dòng)植物樣品的擴(kuò)增結(jié)果、分析異源性基質(zhì)(鱈魚(yú)粉)以及易混谷物基質(zhì)(大米、黑米和黑麥混合物)與菰米梯度混合后實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)的靈敏度、分析菰米基因組DNA濃度梯度實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)的靈敏度、測(cè)試菰米實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法的重復(fù)性和穩(wěn)定性,驗(yàn)證了本研究所建立的實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法特異性強(qiáng),與對(duì)照組無(wú)交叉反應(yīng),檢測(cè)靈敏度為0.001 ng/μL菰米基因組DNA或0.01%(W/W)的菰米粉,可快速高效地進(jìn)行菰米成分的定性檢測(cè),為出入境商品中菰米的真實(shí)性甄別以及菰米成分檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)化提供技術(shù)支撐。本方法的建立將填補(bǔ)我國(guó)菰米檢測(cè)的空白,對(duì)促進(jìn)我國(guó)菰米產(chǎn)業(yè)及進(jìn)出口貿(mào)易的穩(wěn)定發(fā)展具有重要意義。

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