唐嘉誠,包建強(qiáng),2,3, ,陳彥婕,單錢藝,4,黃可承,宮 萱
(1.上海海洋大學(xué)食品學(xué)院,上海 201306;2.上海水產(chǎn)品加工及貯藏工程技術(shù)研究中心,上海 201306;3.農(nóng)業(yè)部水產(chǎn)品貯藏保鮮質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評估實(shí)驗(yàn)室(上海),上海 201306;4.上海市靜安區(qū)市場監(jiān)督管理局,上海 200072)
大鯢()俗稱娃娃魚,是世界上現(xiàn)存最大的兩棲動(dòng)物,有著“活化石”的美譽(yù)。主要分布于我國湖南,貴州,陜西等地,為大型兩棲綱、有尾目、隱鰓鯢科。其肉質(zhì)細(xì)膩鮮美,具有較高的食用價(jià)值和營養(yǎng)價(jià)值。大鯢軀干修長,側(cè)面多褶皺,肌肉發(fā)達(dá),皮膚成灰色或灰褐色,其表皮分布有豐富的腺體結(jié)構(gòu),在受到外界刺激時(shí),能夠分泌出帶有特殊氣味的白色黏液,在加工過程中常被丟棄。多項(xiàng)研究表明,一些天然資源如草藥、植物蛋白、細(xì)菌分泌物等具有一定的抗菌和抗氧化活性。Seham等通過硫酸銨沉淀法提取非洲鯰魚的黏液糖蛋白(CFG),具有良好的抑菌作用。王慧陽等研究發(fā)現(xiàn)蝸牛黏液,具有一定抗氧化能力,并且能夠增強(qiáng)巨噬細(xì)胞吞噬能力,促進(jìn)免疫細(xì)胞因子釋放。大鯢黏液中富含黏液糖蛋白,具有一定的生物活性,因此對大鯢黏液的深化利用研究有助于提高大鯢加工副產(chǎn)物的利用價(jià)值和經(jīng)濟(jì)效益。
糖蛋白是指具有多分支的寡糖鏈(一般為15~20個(gè)單糖單元)與多肽鏈以共價(jià)鍵相連而成的復(fù)合物,其含量以蛋白為主,糖蛋白在動(dòng)物、植物和微生物中廣泛存在,是生命活動(dòng)中一種重要大分子,有著抗氧化、抗菌、降血糖等生物活性功能。徐偉良通過提取純化大鯢黏液糖蛋白,證明其對于人肺癌細(xì)胞A549具有明顯的抑制作用。張金豫等通過水提醇沉法得到的大鯢黏液糖蛋白對·OH、DPPH·和O·都有一定的清除能力。但是對于大鯢黏液粗糖蛋白的提取工藝的優(yōu)化、純化表征鮮有報(bào)道。本文通過單因素實(shí)驗(yàn),響應(yīng)面法優(yōu)化大鯢黏液粗糖蛋白的提取工藝,并對其進(jìn)行純化表征,以期為后續(xù)的大鯢黏液糖蛋白研究提供一定基礎(chǔ)。
大鯢黏液:中國浙江麗水養(yǎng)殖場提供大鯢活體,實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行黏液收集并制備成凍干粉末供后續(xù)使用;DEAE-52纖維素 GE Healthcare公司;Sephadex-G100 北京索萊寶有限公司;MW:3500透析袋、Tris-HCl(pH7.4) 上海源葉生物科技有限公司;濃硫酸、無水乙醇、濃鹽酸、氯仿、正丁醇、氯化鈉 上海麥克林生化科技有限公司;上述試劑均為國產(chǎn)分析純。
DK-S28型精宏水浴鍋 上海坤權(quán)生物科技有限公司;H-1850R型臺式高速冷凍離心機(jī) 上海向帆儀器有限公司;SHIMADZU AUY220型電子分析天平 上??茣钥茖W(xué)儀器有限公司;Hitachi LA-8080氨基酸自動(dòng)分析儀 日本日立公司;UV-1800PC分光光度計(jì) 上海精科儀器廠;傅里葉紅外光譜儀美國尼高力公司。
1.2.1 堿法提取大鯢黏液粗糖蛋白的工藝流程 稱取一定量大鯢黏液凍干粉,以一定料液比加入一定濃度的NaOH溶液,在一定溫度和時(shí)間下水浴加熱提取,離心分離收集上清液,調(diào)節(jié)pH至7.0左右,加入預(yù)冷無水乙醇(4 ℃)至終濃度為80%,置于4 ℃冰箱中醇沉8 h,離心收集沉淀,沉淀用無水乙醇洗滌2~3次,凍干成粉末。將粉末復(fù)溶于去離子水中加入 Sevag 試劑(正丁醇:氯仿=1:4,v/v),于冰水浴上攪拌15 min(250 r/min),去除游離蛋白。提取液3000 r/min離心10 min,取最上層液體,以上所有步驟重復(fù)3次。將提取液轉(zhuǎn)移入透析袋(MW:3500)透析48 h去除游離蛋白。48 h后,將透析液轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)皿中凍干得大鯢黏液粗糖蛋白,并收集稱重,按式(1)計(jì)算得率:
式中:W——粗糖蛋白得率(%);M——凍干后粗糖蛋白質(zhì)量(g);M——大鯢黏液凍干粉質(zhì)量(g)。
1.2.2 單因素實(shí)驗(yàn)
1.2.2.1 提取時(shí)間對得率的影響 稱取5 g大鯢黏液凍干粉,以0.3 mol/L的NaOH溶液,在料液比為1:30 g/mL,溫度為50 ℃水浴中分別提取 2、3、4、5、6 h,按上述工藝提取,去除游離蛋白,凍干,按式(1)計(jì)算得率。
1.2.2.2 提取溫度對得率的影響 稱取5 g大鯢黏液凍干粉,以0.3 mol/L的NaOH溶液,在料液比為1:30 g/mL,分別在溫度 30、40、50、60、70 ℃ 水浴中分別提取5 h,按上述工藝提取,去除游離蛋白,凍干,按式(1)計(jì)算得率。
1.2.2.3 提取液濃度對得率的影響 稱取5 g大鯢黏液凍干粉,分別以 0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mol/L 的NaOH溶液,在料液比為1:30 g/mL,溫度50 ℃水浴中提取5 h;按上述工藝提取,去除游離蛋白,凍干,按式(1)計(jì)算得率。
1.2.2.4 料液比對得率的影響 稱取5 g大鯢黏液凍干粉,以0.3 mol/L的NaOH溶液,分別采用1:20、1:25、1:30、1:35、1:40 g/mL 的料液比,溫度 50 ℃水浴中提取5 h;按上述工藝提取,去除游離蛋白,凍干,按式(1)計(jì)算得率。
1.2.3 響應(yīng)面試驗(yàn) 采用響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì),應(yīng)用Design Expert12軟件,以堿提醇沉實(shí)驗(yàn)單因素?cái)?shù)據(jù)為基礎(chǔ),以料液比(A)、溫度(B)、提取時(shí)間(C)、提取液濃度(D)為主要影響因素,以大鯢黏液粗糖蛋白得率為指標(biāo),進(jìn)行響應(yīng)面分析,優(yōu)化堿法提取大鯢黏液糖蛋白工藝。因素水平設(shè)計(jì)見表1。
表1 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design
1.2.4 大鯢黏液粗糖蛋白純化 陰離子交換層析法和凝膠層析法是純化糖蛋白的常用方法。將粗大鯢黏液粗糖蛋白溶解在Tris-HCl(pH7.4)中(調(diào)整樣液濃度為2~3 mg/mL),然后經(jīng)0.22 μm孔徑的濾膜過濾。DEAE-52柱(1.6 cm×40 cm)經(jīng)預(yù)處理后,用20 mmol/L Tris-HCl(pH7.4)平衡柱體,然后將大鯢黏液粗糖蛋白溶液裝填至DEAE-52柱上,用含有0.02 mol/L Tris-HCl(pH7.4)的梯度 NaCl洗脫液(0、0.15、0.25、0.35和0.45 mol/L)進(jìn)行洗脫。洗脫速率設(shè)置為1 mL/min,每5 min收集一次洗脫液。用紫外檢測器在280 nm處測定每支管的蛋白質(zhì)含量,而用苯酚-硫酸法在490 nm處得到多糖峰。繪制兩種測定的紫外吸收光譜,并確定、收集、透析和凍干重疊峰。將收集到的凍干粉用去離子水溶解,采用SephadexG-100進(jìn)一步純化。最后得到的洗脫液采用上述方法進(jìn)行檢測。收集重疊峰、凍干,得到純化后的大鯢黏液糖蛋白(MGP)應(yīng)用于后續(xù)理化表征實(shí)驗(yàn),以下簡稱MGP。
1.2.5 大鯢黏液糖蛋白(MGP)表征實(shí)驗(yàn)
1.2.5.1 SDS-PAGE電泳鑒定 SDS-PAGE廣泛用于蛋白質(zhì)的測定,參照李敏等的實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整,本實(shí)驗(yàn)采用5%濃縮膠和12%分離膠,將MGP樣品進(jìn)行前處理后,10 μL上樣。電泳在恒壓120 V下進(jìn)行。當(dāng)指示劑在大約1~2 cm處到達(dá)凝膠底部時(shí),停止電泳,采用考馬斯亮藍(lán)染色液染色,脫色后觀察電泳條帶。
1.2.5.2 氨基酸分析 根據(jù)劉俊奇的實(shí)驗(yàn)方法并略作修改,采用Hitachi LA-8080氨基酸自動(dòng)分析儀測定糖蛋白的氨基酸組成。將總共15 mg的MGP粉末置于水解管中,然后加入6 mol/L HCl和3滴重蒸苯酚。然后將水解管在110 ℃烘箱中水解22 h。水解完畢待冷卻至室溫后,將樣品真空干燥,將殘余物重新溶解在超純水中并按上述方法真空干燥。最后,加入檸檬酸緩沖液(pH2.2)進(jìn)行溶解,通過0.22 μm過濾器過濾,并通過氨基酸分析儀進(jìn)行分析。
1.2.5.3 紫外全波長掃描以及糖肽鍵檢測分析 參考Li等對灰星鯊水解產(chǎn)物糖蛋白的紫外全波長掃描以及糖肽鍵檢測方法。MGP的紫外全波長吸收光譜圖,采用UV-1800PC分光光度計(jì)測定。將大鯢黏液糖蛋白溶解在去離子水中。調(diào)整濃度為1 mg/mL并使用200~400 nm的波長范圍進(jìn)行掃描;配置MGP溶液(2 mg/mL)加入等體積的0.4 mol/L NaOH,在25 ℃反應(yīng)2 h,然后用UV-1800PC分光光度計(jì)在200~300 nm處進(jìn)行分析,與去離子水混合的樣品作為對照。
1.2.5.4 FTIR光譜分析 采用Nicolet1 iS10 FT-IR光譜儀對MGP進(jìn)行傅里葉變換紅外光譜分析。直接將1 mg MGP粉末直接壓入FTIR光譜儀進(jìn)行4000~550 cm范圍內(nèi)的紅外光譜分析。
每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次取平均值,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用Design Expert12進(jìn)行響應(yīng)面設(shè)計(jì)分析,使用Origin 2017軟件進(jìn)行作圖,采用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行分析。
2.1.1 提取時(shí)間對大鯢黏液粗糖蛋白得率的影響從圖1可知,大鯢黏液粗糖蛋白得率在5 h達(dá)到最大值,為5.01%。薛張芝等對墨魚纏卵腺進(jìn)行糖蛋白提取,其在4 h得到最高的得率。大鯢黏液及一些動(dòng)物源糖蛋白如墨魚纏卵腺等,其組分復(fù)雜,在溶液中難分散,釋放需要更長時(shí)間的浸提從而達(dá)到更高的提取效率,這與薛張芝實(shí)驗(yàn)結(jié)果相似。在5 h之前,大鯢黏液糖蛋白得率隨著提取時(shí)間的增加而增加,在5 h之后,大鯢黏液糖蛋白得率有顯著(<0.05)下降。較短的提取時(shí)間,使得糖蛋白提取釋放不完全,導(dǎo)致得率較低;而長時(shí)間的提取過后,蛋白質(zhì)之間產(chǎn)生相互作用,使得糖蛋白產(chǎn)生凝結(jié)、聚集、沉淀,導(dǎo)致糖蛋白的結(jié)構(gòu)產(chǎn)生破壞,從而導(dǎo)致得率的下降。因此,本實(shí)驗(yàn)條件下選擇5 h作為最佳提取時(shí)間。
圖1 不同提取時(shí)間對得率的影響Fig.1 Effect of different extraction time on yield of crude glycoprotein from A.davidianus mucus
2.1.2 提取溫度對大鯢黏液粗糖蛋白得率的影響從圖2可知,大鯢黏液糖蛋白的得率在60 ℃達(dá)到最大值,為5.10%。在60 ℃之前,大鯢黏液糖蛋白得率隨著提取溫度的增加而增加,在60 ℃之后,大鯢黏液糖蛋白得率有顯著(<0.05)下降。一定的溫度條件下有助于糖蛋白的溶出,李衛(wèi)林等提取甘薯糖蛋白同樣在60 ℃得到最大得率,而繼續(xù)升溫導(dǎo)致糖蛋白變性,成為絮狀沉淀析出,最終導(dǎo)致得率的降低。考慮到溫度對蛋白質(zhì)活性的影響,以及在50 ℃和60 ℃提取率差異不顯著(>0.05),故本實(shí)驗(yàn)條件下,選擇50 ℃作為最佳提取溫度。
圖2 不同提取溫度對得率的影響Fig.2 Effects of temperature on yield of crude glycoprotein from A.davidianus mucus
2.1.3 提取液濃度對大鯢黏液粗糖蛋白得率的影響從圖3可知,大鯢黏液糖蛋白的得率在NaOH濃度為0.3 mol/L達(dá)到最大值,為5.14%。在0.3 mol/L之前,大鯢黏液糖蛋白得率隨提取液濃度的增加而增加,在0.3 mol/L之后,大鯢黏液糖蛋白得率隨著提取液濃度增加而下降(<0.05)。堿提取法有較高的提取效率,而過高的濃度會使糖蛋白變性,導(dǎo)致得率下降,陳淑敏等對曼氏無針烏賊纏卵腺糖蛋白提取,NaOH濃度的增加導(dǎo)致糖蛋白得率呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,在0.4 mol/L時(shí)提取率達(dá)到最高,圖形與本文基本一致。根據(jù)不同物料糖蛋白特性不同,結(jié)合單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,本文選擇0.3 mol/L提取液濃度作為最佳提取液濃度。
圖3 不同提取液濃度對得率的影響Fig.3 Effects of concentration of NaOH on yield of crude glycoprotein from A.davidianus mucus
2.1.4 料液比對大鯢黏液粗糖蛋白得率的影響 從圖4可知,大鯢黏液糖蛋白得率在料液比為1:30時(shí)達(dá)到最大值,為5.09%。當(dāng)較低料液比時(shí),溶液量較少,提取液較快達(dá)到過飽和狀態(tài),糖蛋白溶出效率較低,使得整個(gè)提取過程不充分進(jìn)行,而過大的料液比,整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程能耗增加,伴隨一定程度的損失,使得提取效率下降。故本實(shí)驗(yàn)選擇1:30為最佳提取料液比。
圖4 不同料液比對得率的影響Fig.4 Effects of solid-liquid ratio on yield of crude glycoprotein from A.davidianus mucus
2.2.1 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果 將大鯢黏液粗糖蛋白得率(Y)作為響應(yīng)值,料液比(A)、溫度(B)、提取時(shí)間(C)、提取液濃度(D)四個(gè)因素為自變量,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
表2 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 2 Design and results of response surface test
對表3中的數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合得到回歸方程為Y=5.14+0.0358A+0.0525B+0.0492C+0.0442D-0.0400AB-0.0175AC+0.0300AD-0.0500BC+0.0425BD+0.0650CD-0.1571A-0.1546B-0.1371C-0.1746D。通過對表3進(jìn)行回歸模擬方差分析可知,模型值為<0.0001,該模型具有極顯著性(<0.01),實(shí)驗(yàn)誤差較小,說明該數(shù)學(xué)模型能夠很好的解釋糖蛋白得率的變化。而失擬項(xiàng)(>0.05)不顯著,說明該數(shù)學(xué)模型與真是響應(yīng)面的擬合度較高。=0.9704,表示回歸方程中所有自變量的變化可以解釋97.04%因變量的變化,表明回歸方程可以很好地描述考察因子與響應(yīng)值之間的關(guān)系。A、B、C、D四因素對糖蛋白的得率影響也極為顯著(<0.01),影響程度為B>C>D>A,即溫度>提取時(shí)間>提取液濃度>料液比。
表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model
2.2.2 響應(yīng)面分析 從圖5-a、圖5-c、圖5-e、圖5-g、圖5-i和圖5-k可知,響應(yīng)面坡度較陡,且呈現(xiàn)處開口向下的凸形曲面,即存在最大得率。從等高線可知,在等高線呈橢圓形時(shí),說明兩個(gè)因素之間有交互作用;等高線呈圓形時(shí),則說明兩個(gè)因素的交互作用不明顯,其中圖5-b、圖5-h、圖5-j和圖5-l整個(gè)圖像呈現(xiàn)橢圓形,說明溫度和料液比、提取時(shí)間和溫度、溫度和提取液濃度、提取時(shí)間和提取液濃度的交互作用較為顯著,與回歸方程結(jié)果相吻合。
圖5 各因素交互作用對得率的影響Fig.5 Response surface and contour plots
2.2.3 最優(yōu)試驗(yàn)方案驗(yàn)證 當(dāng)在溫度為51.492 ℃,料液比為1:30.513 g/mL,提取時(shí)間為5.188 h,提取液濃度為0.319 mol/L時(shí),得到最大得率為5.155%,根據(jù)實(shí)際實(shí)驗(yàn)操作情況,取溫度為51 ℃,料液比為1:30.5 g/mL,提取時(shí)間5.2 h,提取液濃度0.32 mol/L為提取條件,進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。通過三次平行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)得知,大鯢黏液粗糖蛋白得率最高為5.22%±0.71%,證明響應(yīng)面模型優(yōu)化有具有可行性,能夠較好地模擬大鯢黏液糖蛋白提取過程以及預(yù)測得率。
大鯢黏液粗糖蛋白通過采用兩種不同的色譜柱進(jìn)一步純化。為了獲取單一組分的糖蛋白,常用柱層析的方式對樣品進(jìn)行分級,最常用的方法是陰離子交換柱層析以及凝膠柱層析。層析裝置一般連接有核酸蛋白檢測儀,監(jiān)控OD處吸光度情況。后續(xù)采用苯酚-硫酸法或是蒽酮-硫酸法繪制糖蛋白中糖部分的吸收曲線,根據(jù)重疊峰收集糖蛋白樣品。
如圖6(a)所示,紫外檢測器在280 nm處監(jiān)測到三個(gè)主要洗脫峰,分別命名為MGP1、MGP2和MGP3,其中MGP1和MGP2的吸光度值較高,MGP3的吸光度值較低,相比徐偉良采用單一濃度的洗脫方式只得到單一洗脫峰相比,梯度洗脫方式有著更廣的分離范圍,得到三種不同的洗脫峰。在后續(xù)苯酚-硫酸法測定后,苯酚-硫酸法測定的490 nm處只有兩個(gè)重疊峰,而MGP1的雙峰有較好的重疊。因此,本研究選擇MGP1作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)的對象,收集進(jìn)行透析、凍干。將MGP1溶解于去離子水中,在Sephadex G-100 柱上,只得到一個(gè)組分(圖6(b)),命名為 MGP。該洗脫液組分也被收集、透析和凍干作進(jìn)一步測定。
圖6 MGP色譜分離圖Fig.6 Chromatographic isolation of MGP
由圖7可見,其中M代表蛋白Marker,A代表純化后的大鯢黏液糖蛋白MGP。經(jīng)離子交換層析,凝膠柱層析后,粗糖蛋白得到了分離純化,在SDSPAGE上呈現(xiàn)單一條帶,證明純化后的糖蛋白為單一組分,達(dá)到電泳純,可進(jìn)行后續(xù)結(jié)構(gòu)分析實(shí)驗(yàn)。根據(jù)蛋白Marker可知,MGP分子量約為29 kDa。
圖7 SDS-PAGE電泳圖Fig.7 SDS-PAGE electrophoresis
MGP的氨基酸組成見表4。對18種氨基酸進(jìn)行了測試,除色氨酸由于酸水解以及胱氨酸低于檢出限未列于表中。其中,總氨基酸含量81.53 g/100 g,人體必需氨基酸含量為37.21 g/100 g,藥用氨基酸含量33.39 g/100 g。MGP主要含有的三種藥用氨基酸中,Asp可用于治療心臟病、肝病、高血壓、預(yù)防和恢復(fù)疲勞。Lys具有促進(jìn)人體生長發(fā)育、增強(qiáng)機(jī)體免疫力、抗病毒、抗脂質(zhì)氧化、緩解焦慮等積極作用。Ile能增加生長激素水平,進(jìn)而幫助燃燒體內(nèi)脂肪。這些結(jié)果表明,MGP其含有的必需氨基酸及藥用氨基酸占比較高,有著用于生物醫(yī)學(xué)以及食品工程方面的潛力。
表4 MGP氨基酸組成分析Table 4 Amino acid composition of MGP
MGP的紫外光譜如圖8(a)所示,在215 nm處有較強(qiáng)的吸收,表明該多肽的存在。280 nm的弱吸收表明MGP含有蛋白質(zhì),這與苦蕎糖蛋白的紫外全波長吸收圖譜基本一致,說明具有典型的糖蛋白特征。
圖8 MGP 紫外全波長掃描圖(a)和 MGP β-消除反應(yīng)實(shí)驗(yàn)(b)Fig.8 UV spectra of MGP (a) and UV spectrum profiles of βelimination before and after alkali treatment (b)
經(jīng)過堿處理和未經(jīng)過堿處理的MGP的紫外掃描光譜如圖8(b)所示。N型糖肽鍵在堿性環(huán)境中非常穩(wěn)定,而O型糖肽鍵則相反。與對照樣品相比,在240 nm處的吸光度值明顯升高,說明發(fā)生了-消除反應(yīng),確定了MGP中O型糖肽鍵的存在。
由圖9所示,MGP在 3185、2965、1637、1400和1040 cm附近出現(xiàn)了吸收峰。如表5所示,這些峰屬于蛋白和多糖等吸收特征峰,這與劉曉飛所得到的發(fā)芽糙米糖蛋白FTIR圖譜類似,具有典型的糖蛋白特征。3185.88 cm處為-NH/NH/-NH的N-H鍵之間的伸縮振動(dòng),并且存在氫鍵作用。3000~2800 cm之間為飽和烴基(如-CH或-CH)間C-H伸縮振動(dòng)峰。1637.06 cm與1551.18 cm分別屬于C=O鍵的伸縮振動(dòng)與N-H角振動(dòng),對應(yīng)糖蛋白中羧基和酰胺基的振動(dòng)。在1400.59 cm處,C-H產(chǎn)生的變角振動(dòng)吸收是蛋白質(zhì)分子肽鍵的特征吸收峰。1137.06 cm與1040 cm處產(chǎn)生的吸收峰是吡喃糖環(huán)中醚鍵和羥基的典型吸收峰。889.41 cm處產(chǎn)生的吸收峰說明,MGP含有-糖苷鍵。
圖9 MGP紅外光譜圖Fig.9 Infrared image of MGP
表5 MGP紅外光譜分析結(jié)果Table 5 Results of FTIR analysis of MGP
紅外圖譜上通過分析1700~1600 cm處的紅外吸收圖譜,能夠分析得出MGP中糖蛋白二級結(jié)構(gòu)的特征。通過Peakfit 4.12軟件,對酰胺Ⅰ帶圖譜進(jìn)行分析,通過去卷積處理,二階導(dǎo)數(shù)多次擬合,使得擬合結(jié)果大于0.986,通過計(jì)算,得到MGP二級結(jié)構(gòu)含量列于表6。酰胺Ⅰ帶在1600~1640 cm內(nèi)為-折疊,1640~1650 cm內(nèi)為無規(guī)卷曲,1650~1660 cm內(nèi)為-螺旋,1660~1700 cm內(nèi)為-轉(zhuǎn)角。通過表6得知,MGP中主要含有的是-折疊結(jié)構(gòu)占比約為87%。
表6 MGP在酰胺Ⅰ帶的蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)含量Table 6 Content of secondary structure of active peptide and amide Ⅰ-band protein in MGP
本實(shí)驗(yàn)采用單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)合響應(yīng)面法優(yōu)化大鯢黏液粗糖蛋白提取工藝,根據(jù)分析結(jié)果結(jié)合實(shí)際操作得出大鯢黏液粗糖蛋白最佳提取工藝為:溫度51 ℃,料液比1:30.5 g/mL,提取時(shí)間5.2 h,提取液濃度0.32 mol/L。在此條件下進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。通過三次平行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)得知,大鯢黏液粗糖蛋白的得率最高為5.22%±0.71%。
在最優(yōu)工藝條件下,對大鯢黏液粗糖蛋白進(jìn)行分離純化,得到一種大鯢黏液糖蛋白MGP,凍干后為白色粉末,經(jīng)SDS-PAGE分析達(dá)到電泳純,分子量約為29 kDa。對其進(jìn)行表征,MGP中必需氨基酸及藥用氨基酸含量分別為37.21 g/100 g和33.39 g/100 g;MGP有典型的糖蛋白結(jié)構(gòu)的紫外全波長吸收圖像;含有O型糖肽鍵,吡喃糖環(huán)結(jié)構(gòu)和-糖苷鍵,其糖蛋白二級結(jié)構(gòu)主要由87%-折疊構(gòu)成,為后續(xù)深入探究大鯢黏液糖蛋白生物活性提供一定基礎(chǔ)。