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    假腸膜明串珠菌HDL-3胞外多糖的分離純化及結(jié)構(gòu)性質(zhì)分析

    2022-10-27 05:14:34曹慧瑩于連升杜仁鵬
    食品工業(yè)科技 2022年21期

    趙 丹,曹慧瑩,孫 夢,于連升,杜仁鵬,

    (1.農(nóng)業(yè)微生物技術(shù)教育部工程研究中心,黑龍江哈爾濱 150500;2.黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,微生物省高校重點實驗室,黑龍江哈爾濱 150080)

    乳酸菌胞外多糖(Exopolysaccharides,EPS)是部分乳酸菌(lactic acid bacteria,LAB)在代謝生長過程中分泌到細(xì)胞外的多糖類化合物。能夠產(chǎn)EPS的乳酸菌有腸膜明串株菌()、魏斯氏菌()、植物乳桿菌()、干酪乳桿菌()、鼠李糖乳桿菌()、嗜酸乳桿菌()和嗜熱鏈球菌()等菌屬。根據(jù)單糖組成不同,乳酸菌EPS可分為同型多糖和異型多糖。同型多糖僅有一種單糖組成,如葡萄糖、果糖,生物合成過程較簡單;而異型多糖由2種以上的單糖組成,生物合成過程較復(fù)雜。

    近年來,隨著人們對健康的不斷重視,乳酸菌作為益生菌逐漸成為關(guān)注焦點,乳酸菌EPS作為乳酸菌所產(chǎn)的有益代謝產(chǎn)物,不僅可以促進腸道多種益生菌的生長和定殖、減少便秘;還具有免疫調(diào)節(jié)、抗氧化、抗腫瘤、降血糖、降血壓等作用;作為添加劑能夠增強食品的持水性、流變性和穩(wěn)定性,還可以優(yōu)化食品的質(zhì)地和口感,在食品、醫(yī)藥和化工等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用。由于不同乳酸菌EPS的結(jié)構(gòu)存在較大差異,其結(jié)構(gòu)的差異必然導(dǎo)致生物活性的不同,EPS的分子質(zhì)量、單糖組成以及糖苷鍵類型等均影響EPS的理化性質(zhì)和生物學(xué)活性,其結(jié)構(gòu)解析和構(gòu)效關(guān)系研究已成為當(dāng)前的熱點和難點。此外,乳酸菌EPS的產(chǎn)量較低,限制其大規(guī)模生產(chǎn)及應(yīng)用。目前,通過優(yōu)良高產(chǎn)菌株的篩選、改良菌株和優(yōu)化發(fā)酵條件等方法能在一定程度上提高乳酸菌EPS的產(chǎn)量。因此,分離篩選獲得更多的新型產(chǎn)EPS的乳酸菌,探究EPS的結(jié)構(gòu)和性質(zhì),開發(fā)乳酸菌EPS的功能特性是目前糖生物領(lǐng)域研究的重點。本研究利用微生物學(xué)方法從東北自然酸菜發(fā)酵液中分離篩選產(chǎn)EPS的乳酸菌,并對EPS進行分離純化,研究其結(jié)構(gòu)和性質(zhì),對比分析不同乳酸菌來源的EPS在結(jié)構(gòu)和性質(zhì)上的差異。本研究結(jié)果不僅豐富了產(chǎn)EPS的乳酸菌種質(zhì)資源,還為EPS的構(gòu)效關(guān)系研究提供理論依據(jù),促進乳酸菌EPS的應(yīng)用范圍以及糖生物學(xué)的進一步發(fā)展。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    東北酸菜 取自黑龍江省大興安嶺地區(qū)新林鎮(zhèn)家庭自制酸菜;葡聚糖凝膠G-100 上海源葉生物科技有限公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒 TIANGAN股份有限公司;葡萄糖、胰蛋白胨、NaNO、CaCO、三氯乙酸、溴化鉀、苯酚、三氟乙酸等 分析純,天津市科密歐化學(xué)試劑科技有限公司;MRS培養(yǎng)基:葡萄糖20 g/L、胰蛋白胨1 g/L、牛肉膏1 g/L、酵母提取物5 g/L、無水乙酸鈉0.5 g/L、檸檬酸銨0.2 g/L、KHPO0.2 g/L、MgSO·7HO 0.058 g/L、MnSO·HO 0.025 g/L、吐溫-80 0.1 mL/L,用于乳酸菌的活化及培養(yǎng);產(chǎn)糖MRS-S培養(yǎng)基:用20 g/L蔗糖取代MRS培養(yǎng)基中的葡萄糖。

    ABI9700 PCR儀 美國基因公司;Alpha-1900Plus紫外-可見分光光度計 上海譜元儀器有限公司;TDA305凝膠滲透色譜(gel permeation chromatography,GPC) 英國馬爾文有限公司;利用高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC) 島津國際貿(mào)易上海有限公司;IRAffinity-1S傅里葉變換紅外光譜儀 株式會社島津制作所;AVANCE III核磁共振譜儀 瑞士Bruker公司;S-4800場發(fā)射掃描電子電鏡 日本日立公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 產(chǎn)EPS乳酸菌的分離 根據(jù)稀釋倒平板法,將稀釋后的酸菜發(fā)酵液涂布于含 1%(w/w)CaCO的MRS培養(yǎng)基上,30 ℃ 培養(yǎng) 48 h。利用接種環(huán)挑取產(chǎn)生鈣溶圈的單菌落接種于 30 mL MRS-S 液體培養(yǎng)基中,30 ℃ 培養(yǎng) 36 h 后,以葡萄糖作為標(biāo)準(zhǔn)品,利用苯酚硫酸法,以葡萄糖含量(μg)為橫坐標(biāo),吸光值OD為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,方程式為y=0.0089x-0.0034,=0.9992。用于分析發(fā)酵液中EPS 的含量,選取能夠高產(chǎn) EPS 的乳酸菌用于下一步試驗。

    1.2.2 高產(chǎn)EPS乳酸菌的16S rDNA鑒定 取菌株MRS發(fā)酵液2 mL,12000 r/min離心1 min,獲得菌體沉淀。利用細(xì)菌基因組提取試劑盒提取菌株的基因組DNA。利用引物5’-TACGGYTACCTTGTTACG ACTT-3’和 5’-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3’,進行PCR擴增。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳驗證正確后,于上海生工生物公司測序,將序列與GenBank數(shù)據(jù)庫中已有核苷酸序列進行同源比對,并提交至NCBI數(shù)據(jù)庫。下載與獲得的16S rDNA核苷酸序列同源性高的模式菌株核苷酸序列,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,根據(jù)同源性鑒定菌株的種屬水平。

    1.2.3 EPS的提取、純化及純度檢測 以2%(v/v)的接種量將種子液接入到MRS-S產(chǎn)糖培養(yǎng)基中,30 ℃、120 r/min 培養(yǎng) 36 h,發(fā)酵液 4 ℃、12000 r/min離心30 min后,向其中加入80%(w/v)的三氯乙酸使其終濃度為 4%(w/v)。4 ℃靜置過夜后,4 ℃、12000 r/min離心30 min去除蛋白,向上清液中加入三倍體積95%預(yù)冷乙醇,4 ℃靜置過夜沉淀EPS,4 ℃、12000 r/min離心20 min獲得沉淀,將沉淀溶于適量的去離子中,并裝入截留分子量為8000~12000 Da的透析袋中,4 ℃透析2 d,每8 h換一次水,將透析后的EPS樣品加入到Sephadex G-100凝膠過濾層析柱中,上樣量為1~2 mL,利用蒸餾水為洗脫液,流速為0.2 mL/min。根據(jù)洗脫圖上出峰時間接洗脫液,將收集到的洗脫液真空冷凍干燥,獲得純EPS。利用去離子水中配置成濃度為1 mg/mL的EPS溶液,經(jīng)紫外分光光度計進行全波長掃描,檢測純度。

    1.2.4 EPS的結(jié)構(gòu)測定

    1.2.4.1 分子量測定 將 2.0 mg EPS溶于 1 mL 0.1 mol/L NaNO溶液中,并以0.1 mol/L NaNO溶液作為洗脫劑,流速為0.5 mL/min,利用GPC測定EPS的分子量。以不同分子量的葡聚糖為標(biāo)準(zhǔn)品,上機檢測,根據(jù)洗脫峰保留時間繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,方程式為 y=-0.201x+1.385,=0.993。

    1.2.4.2 單糖組成測定 將2 mg的EPS樣品溶于含1 mol/L HCl的無水甲醇中,80 ℃下水解16 h,加入2 mol/L三氟乙酸后于120 ℃下水解1 h,所得水解產(chǎn)物經(jīng)丙二醇甲醚丙酸酯衍生后,利用LC-15C HPLC測定EPS的單糖組成。以葡萄糖、甘露糖、半乳糖及半乳糖醛酸等為標(biāo)準(zhǔn)品,經(jīng)衍生化后上機檢測,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品的出峰時間進行比對。

    1.2.4.3 官能團組成測定 將干燥的EPS與溴化鉀混合并充分研磨后,壓制成薄片,利用傅里葉紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)T-IR),在分辨率4 cm,波數(shù)范圍 400~4000 cm條件下,測定EPS的官能團組成。

    1.2.4.4 鍵鏈接方式測定 取30 mg凍干的EPS充分溶解于重水(DO),在25 ℃條件下利用400 M核磁共振(Nuclear magnetic resonance spectroscopy,NMR)測定H-NMR、C-NMR譜圖。

    1.2.4.5 結(jié)晶構(gòu)型測定 將干燥的EPS研磨后平鋪于樣品池中,利用X射線衍射儀(X-ray diffraction,XRD)測定結(jié)晶結(jié)構(gòu),測試速率為2°/min。

    1.2.4.6 表面形態(tài)觀察 將凍干的EPS樣品固定在導(dǎo)電膠上,鍍金后,利用掃描電鏡(scanning electron microscopy,SEM)在電壓為10 kV,放大倍數(shù)為400×條件下,觀察EPS的表面結(jié)構(gòu)。

    1.2.5 EPS的性質(zhì)測定

    1.2.5.1 水溶性測定 取45 mg EPS樣品充分溶解于0.5 mL去離子水中,12000 r/min離心40 min得到沉淀進行凍干,凍干樣品稱質(zhì)量記為M(mg)。水溶性(Water solubility index,WSI)計算公式如下:

    1.2.5.2 持水性測定 取45 mg烘干后的EPS充分溶解于0.5 mL去離子水中,12000 r/min離心40 min得到沉淀,用濾紙小心擦掉沉淀表面水分并稱質(zhì)量,記為W(mg),稱量冷凍干燥后的沉淀質(zhì)量,記為W(mg)。EPS 持水性(Water holding capacity,WHC)計算公式如下:

    1.2.5.3 黏度穩(wěn)定性測定 利用粘度計測定,pH自然、室溫條件下,濃度(20、40、60 mg/mL)對 EPS 黏度的影響;pH 自然,不同溫度(20、30、40 ℃)對 EPS(20 mg/mL)黏度的影響;室溫條件下,不同 pH(4、6、8)對 EPS(20 mg/mL)溶液黏度的影響。

    1.2.5.4 乳化性測定 分別取2.5 mL汽油、柴油、橄欖油、豆油、葵花籽油和苯與2.5 mL濃度為2 mg/mL的EPS溶液混勻,充分振蕩5 min后,在24和48 h時測定混合液乳化層。計算公式如下:

    1.2.5.5 抗氧化性能測定 DPPH自由基清除能力的測定:將2 mL(濃度范圍0.5~5 mg/mL)EPS溶液與2 mL 0.2 mmol/L DPPH-乙醇溶液混勻,暗反應(yīng)30 min后,以V為陽性對照,測定OD。DPPH自由基清除能力計算公式如下:

    式中:A:水與 DPPH反應(yīng);A:樣品與 DPPH反應(yīng);A:水與樣品反應(yīng),以排除樣品自身對試驗的干擾。

    ABTS自由基清除能力的測定:將2 mL(濃度范圍0.5~5 mg/mL)EPS溶液與4 mL 7 mmol/L的ABTS工作液充分混勻,室溫條件下反應(yīng)6 min后,以V為陽性對照,測定OD。ABTS自由基清除能力計算公式如下:

    式中:A:水與 ABTS 反應(yīng);A:樣品與 ABTS 反應(yīng);A:水與樣品反應(yīng),以排除樣品自身對試驗的干擾。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    2 結(jié)果與分析

    2.1 高產(chǎn)EPS乳酸菌的分離與鑒定

    從酸菜發(fā)酵液中共分離得到4株產(chǎn)EPS的乳酸菌,其中菌株 HDL-3 能夠產(chǎn)(60.94±2.01)g/L 的 EPS,明顯高于其他3株菌。HDL-3在MRS平板上呈白色、圓形、不透明、表面光滑的菌落形態(tài)(圖1A);在MRS-S平板上菌落較大,表面附著黏稠性液體(圖1B),符合一般產(chǎn)EPS乳酸菌的菌落形態(tài)特征。16S rDNA序列分析表明,菌株HDL-3部分序列長1478 bp,NCBI數(shù)據(jù)庫比對后發(fā)現(xiàn),該菌株與多株基因序列的親緣關(guān)系最近,其中與3818同源性達到99%(圖1C)。因此,將HDL-3鑒定為,并命名為HDL-3。序列提交至NCBI,獲得登錄號為MZ959413。

    圖1 菌株HDL-3菌落形態(tài)圖及系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.1 Colony morphology of strain HDL-3 and phylogenetic tree

    2.2 EPS的分離純化及純度分析

    HDL-3發(fā)酵液經(jīng)去菌體、除蛋白、沉淀EPS、凝膠過濾層析后,在檢測器上呈現(xiàn)單一對稱的洗脫峰,表明獲得相對分子量相對均一的純品EPS。EPS溶液經(jīng)全波長掃描后,在260和280 nm處未出現(xiàn)吸收峰,表明EPS中無核酸和蛋白污染。純化后,EPS的濃度為(50.73±1.84)g/L,高于XG5(35.5 g/L),但低于XG-3 EPS(97.5±1.1 g/L)。經(jīng)冷凍干燥后,該EPS呈現(xiàn)白色棉花狀固體。

    2.3 EPS結(jié)構(gòu)分析

    2.3.1 EPS的分子量及單糖組成分析 GPC洗脫峰呈現(xiàn)單一對稱峰(圖2A),表明EPS樣品純度較高。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算得出EPS的分子量為1.581×10Da,與YF32 EPS(5.54×10Da)相符合,但是高于SJ14 EPS(7.12×10Da), 低 于DRP-5 EPS(6.23×10Da)。EPS 的分子質(zhì)量與其理化特性及益生功能密切相關(guān),低分子量的EPS具有較好的溶解性和相對舒展的糖鏈構(gòu)象,具有更好的生物學(xué)活性。HPLC測定EPS的單糖組成,對比不同標(biāo)準(zhǔn)單糖的保留時間,表明HDL-3 EPS是由葡萄糖組成的同型多糖(圖2B)。同樣,XG-3 EPS和L2 EPS也是由葡萄糖組成的同型多糖。

    2.3.2 FT-IR分析 FT-IR可以鑒別EPS中不同的單糖,確定糖苷鍵構(gòu)型。如圖2C所示,在3423.17 cm處有一較寬且強烈的特征吸收峰,這歸因于O-H鍵的伸縮振動,在2923.12 cm處的吸收峰,則歸因于C-H鍵的伸縮振動,這兩個吸收峰是多糖類物質(zhì)的特征峰。在1645.22和1356.49 cm處出現(xiàn)的特征信號峰則是由C=O伸縮振動引起的,在1015.23 cm處有一個較強的信號峰,是由C-O振動引起的。548.30 cm處的信號峰歸因于-D-吡喃糖的存在。HDL-3 EPS是由葡萄糖組成葡聚糖,與單糖測定結(jié)果相一致。

    圖2 HDL-3 EPS的GPC(A)、HPLC(B)和 FT-IR(C)譜圖Fig.2 GPC (A), HPLC (B)和 FT-IR (C) spectrum of HDL-3 EPS

    2.3.3 NMR分析 NMR分析可以進一步揭示EPS的糖單元種類、糖苷鍵構(gòu)型和連接方式。H NMR結(jié)果顯示(圖3),在4.89 ppm有一個明顯的特征信號峰,表明 HDL-3 EPS 由-(1,6)糖苷鍵連接。C NMR譜 中 73.365、 71.385、 70.215、 69.496、65.416 ppm處出現(xiàn)的信號峰分別對應(yīng)吡喃糖環(huán)上C3、C2、C5、C4和 C6的信號峰。此外,在 101和105 ppm之間無吸收峰,表明HDL-3 EPS的糖苷鍵類型為構(gòu)型。因此,根據(jù)FT-IR和NMR分析表明,HDL-3 EPS是由-(1,6)糖苷鍵連接而成的線性葡聚糖。

    圖3 HDL-3 EPS 1H NMR和13C NMR光譜圖Fig.3 1H NMR and 13C NMR chromatograms of the HDL-3 EPS

    2.3.4 XRD分析 EPS的結(jié)晶結(jié)構(gòu)與溶解性、膨脹性及一些物理特性息息相關(guān),XRD技術(shù)可以有效的解析EPS的無定形或結(jié)晶特性。HDL-3 EPS呈現(xiàn)出一種無定形狀態(tài),只在2為20°時出現(xiàn)強衍射峰(圖4),這是因為該EPS中含有大量的無定形區(qū)域,少量的結(jié)晶區(qū)隱藏在無定形區(qū)域內(nèi),整體上呈現(xiàn)出一種相對無定形的狀態(tài)。此結(jié)果與XG-3 EPS和C19 EPS相符。

    圖4 HDL-3 EPS的XRD光譜圖Fig.4 XRD chromatograms of HDL-3 EPS

    2.3.5 SEM測定 SEM可用來觀察EPS的形貌,已成為研究大分子生物多糖表觀形貌的有力工具。結(jié)果如圖5所示,HDL-3 EPS展現(xiàn)出表面光滑、有光澤且緊湊的片狀結(jié)構(gòu)。WLPL04 EPS也呈現(xiàn)緊湊的片狀結(jié)構(gòu),而AR307 EPS呈現(xiàn)分支化狀鏈結(jié)構(gòu)。片狀緊湊的結(jié)構(gòu)使EPS具有良好的機械穩(wěn)定性,光滑、有光澤的結(jié)構(gòu)使EPS具備制成可塑性膜材料的潛力,應(yīng)用于醫(yī)藥、化工及食品等領(lǐng)域。

    圖5 HDL-3 EPS的SEM顯微形態(tài)(400×)Fig.5 Microscopic morphology under SEM of HDL-3 EPS (400×)

    2.4 EPS性質(zhì)分析

    2.4.1 水溶性及持水性分析 HDL-3 EPS的溶解率和持水率分別為 98.63%1.03%、401.30%±4.92%,其中溶解性顯著高于、持水性低于L2 EPS(分別為 91.90%±2.45% 和 509.45%±28.59%)。較高的溶解率是歸因于EPS含有大量羥基的葡萄糖單元,可與氫鍵形成大量的水。HDL-3 EPS展現(xiàn)良好的親水性和保水能力,可作為生物表面活性劑和穩(wěn)定劑應(yīng)用于化工及食品等領(lǐng)域。

    2.4.2 粘度穩(wěn)定性分析 HDL-3 EPS的粘度穩(wěn)定性分析如圖6所示,隨轉(zhuǎn)速的增加EPS溶液的粘度逐漸減小,即表現(xiàn)出非牛頓流體的剪切稀釋特征。在室溫條件下,EPS溶液粘度與濃度呈正相關(guān)。濃度的增加提高了多糖鏈之間的相互作用,使得部分EPS分子發(fā)生聯(lián)結(jié),聚合程度增加。在pH自然、不同溫度條件下,EPS溶液粘度與溫度呈負(fù)相關(guān),這可能是因為溫度升高,EPS分子運動加劇,分子間相互作用力不足以約束分子運動,致使粘度下降。此外,較高的pH會使EPS溶液粘度下降,這可能是因為堿性條件下EPS的組成及結(jié)構(gòu)容易發(fā)生變化。因此,HDL-3 EPS可作為食品添加劑提高牛奶、酸奶、乳酪等食品的粘度,改善食品質(zhì)地。

    圖6 濃度(A)、溫度(B)、pH(C)對 HDL-3 EPS 流變學(xué)特性的影響Fig.6 Effect of concentration (A), temperature (B), pH (C) on the rheological properties of HDL-3 EPS

    2.4.3 乳化性分析 乳化劑能夠?qū)煞N不相溶解的液相體系保持穩(wěn)定性,廣泛應(yīng)用在化學(xué)、食品、醫(yī)藥及石油等領(lǐng)域。HDL-3 EPS對不同油類及烴類物質(zhì)的乳化能力如表1所示,整體的乳化趨勢為:大豆油>苯>葵花籽油>汽油>柴油>橄欖油,其中對大豆油、葵花籽油和苯的乳化能力均超過60%此外,隨著時間的延長,HDL-3 EPS對汽油和柴油的乳化能力呈現(xiàn)少量增強的趨勢,而對橄欖油、大豆油、葵花籽油和苯的乳化能力呈現(xiàn)降低的趨勢。此結(jié)果與H2 EPS相一致??赡苁且驗镋PS與不同的油類和烴類發(fā)生特異性結(jié)合,使得EPS的分子質(zhì)量、鍵合方式、氫鍵、糖殘基、支化度和靜電斥力等發(fā)生變化,從而導(dǎo)致不同的乳化能力。

    表1 HDL-3 EPS對不同油類和烴類化合物的乳化能力Table 1 Emulsifying activity of HDL-3 EPS for different oils and hydrocarbons

    2.4.4 抗氧化性分析 大多數(shù)乳酸菌EPS無論在體內(nèi)還是體外均具有抗氧化功能,能夠參與自由基清除,從而作為天然的安全抗氧化劑發(fā)揮作用。HDL-3 EPS對DPPH和ABTS自由基的清除能力如圖7所示,隨著EPS濃度的增加,清除能力呈現(xiàn)先增加后保持穩(wěn)定的趨勢,在5.0 mg/mL時,清除率最高,分別為 36.58%±1.04%和 34.21%±0.27%,高于Y3 EPS。EPS抗氧化活性與多種因素有關(guān),包括分子質(zhì)量、單糖組成、官能團類型及EPS提取方法等。研究發(fā)現(xiàn),EPS的抗氧化能力與糖醛酸的含量有關(guān),相較V,HDL-3 EPS不具備強的氧化能力,可能是因為其僅由葡萄糖組成。

    圖7 HDL-3 EPS的DPPH(A)和ABTS(B)自由基清除能力Fig.7 The scavenging activity of DPPH (A) and ABTS (B) of HDL-3 EPS

    3 結(jié)論

    本研究從自然酸菜發(fā)酵液中分離得到一株產(chǎn)EPS的乳酸菌,經(jīng)鑒定該菌株為,并命名為HDL-3。以該菌株為發(fā)酵劑發(fā)酵產(chǎn)EPS,并分離純化,得到高純度 EPS,其產(chǎn)量為(50.73±1.84)g/L。該 EPS 由葡萄糖構(gòu)成,分子量為1.581×10Da。結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn)該EPS是由-(1,6)糖苷鍵連接而成的線性葡聚糖,呈表面光滑、有光澤且緊湊的片狀結(jié)構(gòu)。HDL-3 EPS溶解率和持水率分別為98.63%1.03%和401.30%±4.92%。該EPS的粘度隨著溫度和pH的升高而降低,對大豆油、葵花籽油和苯有良好的乳化能力,DPPH和ABTS自由基的清除能力可分別達到36.58%±1.04%和34.21±0.27%。因此,HDL-3 EPS可作為作為天然食品添加劑、增稠劑、乳化劑或抗氧化劑應(yīng)用在食品及醫(yī)藥等領(lǐng)域。

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