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    干細胞制備過程中倫理風險的系統(tǒng)性綜述*

    2022-10-03 03:02:42陸東哲張懿中吳朝暉王曉熙
    醫(yī)學與哲學 2022年10期
    關鍵詞:安全性血清

    李 欣 陸東哲 張懿中 吳朝暉 李 昂 王曉熙 薛 迪 周 萍

    與一般的生物制品不同,干細胞來源于活的生物體組織,其生產(chǎn)制備過程包括干細胞采集、組織分離、原代細胞的培養(yǎng)與純化、細胞擴增、凍存、運輸?shù)葟碗s程序。確保細胞活性、生物功能穩(wěn)定性、遺傳穩(wěn)定性和質(zhì)量可控性,關系到干細胞臨床應用的安全性和有效性[1]。本文通過系統(tǒng)性綜述,分析不同類型干細胞(主要是間充質(zhì)干細胞)制備過程中的倫理問題,為干細胞大規(guī)模生產(chǎn)的質(zhì)量控制、干細胞產(chǎn)品臨床應用的安全性評估和干細胞生產(chǎn)制備技術的不斷完善提供參考依據(jù)。

    1 資料來源

    本研究通過國內(nèi)外的6個主要文獻數(shù)據(jù)庫(中國生物醫(yī)學文獻數(shù)據(jù)庫、中國知網(wǎng)、萬方、PubMed、Ovid-EMBASE、Cochrane Library)的相關文獻檢索,根據(jù)文獻的納入和排除標準,獲得2010年1月~2020年7月發(fā)表的涉及干細胞制備倫理風險的相關文獻。具體文獻篩選過程見《干細胞生物材料來源及其倫理風險的系統(tǒng)性綜述》一文[2]。

    2 結果

    2.1 涉及干細胞制備過程中倫理風險的文獻分析

    64篇納入分析的涉及干細胞制備過程中倫理風險的文獻中,發(fā)表文獻較多的年份為2011年~2015年,占所有文獻的64.06%;第一作者所在國家主要來自中國(占89.06%);文獻類型主要是評述或一般綜述類(占59.37%),原始研究和學位論文均占17.19%。見表1~表3。

    表1 干細胞制備過程中倫理風險的文獻發(fā)表年份

    表2 干細胞制備過程中倫理風險的文獻作者國別

    表3 干細胞制備過程中倫理風險的文獻類型

    2.2 間充質(zhì)干細胞制備過程中的倫理問題

    2.2.1 供者和組織來源的選擇

    不同供者來源的間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs),其增長率、分化能力、染色體穩(wěn)定性、植入機體后的活性等有所差異。一般來說,供者年齡較大的MSCs老化較快,其生物學活性也會變差,從而使誘導成功率降低,如隨著年齡的增長,骨髓數(shù)量顯著減少,MSCs的增殖及分化能力變?nèi)鮗3]。不同細胞來源和培養(yǎng)方式,細胞攜帶傳染性疾病的風險和傳染的后果不同。供者攜帶隱性遺傳病的異常染色體,由于其缺乏可供檢測的細胞表型,增加了受者引入相關遺傳疾病的風險[4]。此外,不同組織源性的MSCs受特定基因表達的影響,其表面特征和功能也會有所不同,有必要根據(jù)其組織來源進行選擇[5]。

    2.2.2 鑒定、分離、純化

    目前,MSCs鑒定、分離、純化的難度仍較大,而難以找到特異性的表面標記使MSCs鑒定困難。MSCs分離方法有多種,包括貼壁培養(yǎng)法、免疫磁珠法、密度梯度離心法、流式細胞儀分選法等,每種方法都有不足之處。如貼壁培養(yǎng)法獲得的MSCs純度不夠高,免疫磁珠法和流式細胞儀分選法價格高昂,且會損傷細胞而影響存活率。因此,MSCs分離需要多種方法結合使用。MSCs的定向分化對分化微環(huán)境有嚴格要求,但有時取自供者不同組織的MSCs不能分化為目標細胞(targeted cells)而分化為其他細胞,可控性不夠高[5]。MSCs的鑒定、分離、純化問題對干細胞制備過程中的安全性和效果構成了挑戰(zhàn)。

    2.2.3 添加物使用

    MSCs培養(yǎng)過程中需要使用血清、抗生素、誘導劑等添加物,這些可能成為MSCs體外培養(yǎng)過程中外源性污染的來源。胎牛血清屬異種蛋白,可能含有動物攜帶的細菌、病毒、感染性蛋白質(zhì)、朊病毒、生長因子及多種成分不明的促細胞分化因子,且不同批次間的胎牛血清高度變異,組成成分尚不十分清楚。針對胎牛血清存在的諸多弊端,越來越多的研究開始探索使用無動物性成分的添加劑(如血小板裂解液、富血小板血漿、人血清、人臍血清等)替代胎牛血清,但這些添加劑也存在缺陷,如血液來源有限、血小板裂解液擴增的MSCs在臨床應用于免疫調(diào)節(jié)劑方面具有局限性、人血清中可能含有病原體等[6]。

    干細胞制劑在應用之前需要冷藏,而常用的冷凍保護劑二甲基亞砜具有潛在的毒性,特別在高于4℃的溫度下,可致基因型改變、分化潛能受損,對受者產(chǎn)生副作用(如惡心、嘔吐,甚至死亡)[7-8]。

    2.2.4 永生化、表型改變和致瘤性問題

    干細胞的多次傳代會使干細胞的生物學特性發(fā)生改變,如老化、多向分化潛能退化、分泌能力降低,甚至出現(xiàn)永生化傾向或癌變能力。如隨著培養(yǎng)代數(shù)的增加,骨髓MSCs表面標志物逐漸丟失,第9代已檢測不到標志物;也有發(fā)現(xiàn)骨髓MSCs長期體外擴增培養(yǎng)后,可能突破壽命調(diào)控而呈現(xiàn)出永生化傾向[9]。MSCs經(jīng)體外培養(yǎng)、傳代后,可能出現(xiàn)染色體變異,雖然目前尚未證實染色體的異常改變與致瘤性相關,但這種改變提示了培養(yǎng)環(huán)境可導致遺傳不穩(wěn)定性的發(fā)生,遺傳不穩(wěn)定性則是細胞癌變的重要生物學基礎之一[10]。臍帶MSCs也可能存在異常的染色體核型。此外,經(jīng)體外培養(yǎng)的MSCs在特定的微環(huán)境下(如低氧、化學物質(zhì)誘導、生物因素等)可能發(fā)生惡變,生物因素會影響MSCs的增殖、分化和促進惡性轉(zhuǎn)化[5]。

    MSCs的致瘤性仍存在諸多爭議,有學者認為MSCs移植前進行了廣泛的體外擴增增加了基因突變的風險,最終導致惡性轉(zhuǎn)化;但是也有學者認為體外擴增出現(xiàn)的惡變是由于在實驗室中使用的細胞株的交叉污染導致[11]。

    2.3 人胚胎干細胞制備過程中的倫理問題

    人胚胎干細胞(human embryonic stem cells,hESCs)制備過程的倫理問題包括:(1)衍生過程中使用動物培養(yǎng)基或滋養(yǎng)細胞(feeder cells)成分有傳播感染和異種抗原的風險;(2)經(jīng)體外培養(yǎng)后,容易發(fā)生遺傳和表觀遺傳性狀的改變,也觀察到一些印跡基因的表達發(fā)生改變[12],還可能發(fā)生染色體拷貝數(shù)的改變及雜合丟失[10];(3)在培養(yǎng)中可能表現(xiàn)出基因組不穩(wěn)定性和無法預判的分化結果,導致下一代出現(xiàn)某些生理缺陷;(4)疾病不能通過植入前遺傳診斷識別,因此僅能建立罕見的單基因突變或單染色體畸變的疾病特異性hESCs;(5)hESCs的定向誘導分化仍存在挑戰(zhàn),不同的hESCs發(fā)育潛力不同;(6)由hESCs分化得來的多巴胺能神經(jīng)元可能存在質(zhì)量問題;(7)體外長期培養(yǎng)是影響hESCs和人孤雌胚胎干細胞臨床應用安全性的首要因素。

    2.4 其他干細胞制備過程中的倫理問題

    神經(jīng)干細胞(neural stem cells,NSCs)是神經(jīng)外胚層細胞系的多能干細胞,形成過程中可能出現(xiàn)細胞變異,包括突變、表觀遺傳重組異常、X染色體失活、拷貝數(shù)異常、DNA堿基的改變、出現(xiàn)免疫原性等[13]。

    脂肪干細胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)的增殖能力較強,具有多向分化潛能,但是脂肪組織中含量有限,并且在制備過程中也存在一些亟待解決的問題。如ADSCs缺乏特異性的表面標志物,分離純化困難;定向多向分化的機制目前尚不清楚,體內(nèi)外誘導機制還未成熟和完善[14];ADSCs長期體外培養(yǎng)的安全性問題仍未獲得準確評估和保障,可能引發(fā)自發(fā)的惡性轉(zhuǎn)化[15]。

    骨髓干細胞(bone marrow derived stroma cells,BMSCs)是重要的肝外肝細胞來源,但是BMSCs分化過程存在癌變和促纖維化的風險,且BMSCs向肝細胞轉(zhuǎn)化的過程非常緩慢[16]。

    近年來,精原干細胞(spermatogonial stem cells,SSCs)的研究也取得一定的突破,但是SSCs數(shù)量極少,組織來源有限,若患者缺乏SSCs,則難以獲取SSCs用于治療不育;SSCs穩(wěn)定性低,且各批次間差異大,不具備高重復性,因此SSCs富集和保存難度均較大;針對SSCs表面標志物和分化抗原特征的研究仍未取得進展,因而獲得高純度的SSCs十分困難。雖然目前已經(jīng)實現(xiàn)了人SSCs的體外增殖培養(yǎng),但培養(yǎng)難度較大,SSCs在長期培養(yǎng)過程中會發(fā)生表型改變,并且尚未實現(xiàn)人SSCs在體外誘導分化形成精子,離臨床應用還很遙遠[17]。

    3 討論

    3.1 人類對干細胞制備過程的認識尚處在發(fā)展階段

    現(xiàn)階段,干細胞制備過程仍存在許多亟待完善的方面。不同供者來源的干細胞分化能力、生物學活性、老化速度等存在較大差異,因此在制備過程中應該嚴格選擇干細胞來源生物材料的供者,特別是供者需進行嚴格體檢,充分了解供者遺傳背景和既往病史,確定是否有遺傳病以及健康狀況是否符合要求等,盡量排除可能對干細胞受者產(chǎn)生不良影響的因素,如人體免疫缺陷病毒、人類T淋巴細胞病毒等[5]。干細胞的制備技術尚未成熟,干細胞的鑒定、分離、純化仍存在很大挑戰(zhàn),非目的性分化、無功能性分化、不能有效擴增等問題亟待解決,體內(nèi)外誘導機制仍未完善,這些都阻礙了干細胞臨床應用的進展。

    3.2 制備安全性是臨床應用倫理關注的重要方面

    干細胞制備的安全性問題涉及多個方面,包括外源性微生物污染、異種蛋白引入;批次之間產(chǎn)品的穩(wěn)定性差;多次傳代后干細胞的生物學特性改變,出現(xiàn)老化、多向分化潛能退化、分泌能力降低,甚至出現(xiàn)永生化傾向;經(jīng)體外長期培養(yǎng)還會出現(xiàn)染色體變異,特定的微環(huán)境也可能影響干細胞的增殖、分化和促進惡性轉(zhuǎn)化等。干細胞制備的安全性是影響干細胞大規(guī)模臨床應用的重要原因,也是干細胞臨床應用倫理關注的重要方面。

    3.3 干細胞制備過程需嚴格控制質(zhì)量,不斷改進工藝

    不同于傳統(tǒng)的藥物,干細胞制劑的制備技術具有多樣性、復雜性和特殊性。為了確保干細胞制劑臨床應用的安全性和有效性,需要對干細胞的采集和分離、干細胞系的建立、干細胞制劑制備的整個過程進行質(zhì)量監(jiān)控[18]。此外,還需繼續(xù)改進制備工藝,盡可能使用無動物源性成分的添加物或使用無血清的培養(yǎng)基,減少添加物殘留量,降低微生物污染的風險;在干細胞產(chǎn)品用于臨床治療之前,對長時間擴增過程中的干細胞進行安全性評估,了解基因組及表觀遺傳穩(wěn)定性的相關因子是否發(fā)生變化,確保人體移植的安全性。

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