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    家蠶 BmChd64基因的克隆與表達定位分析

    2022-09-22 01:49:06魏秋蘭吳瓊芳鄧惠敏朱子丹
    環(huán)境昆蟲學(xué)報 2022年4期
    關(guān)鍵詞:原基家蠶果蠅

    魏秋蘭,吳瓊芳,鄧惠敏,朱子丹

    (華南師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,華南師范大學(xué)昆蟲科學(xué)與技術(shù)究所,廣東省昆蟲發(fā)育生物學(xué)與應(yīng)用技術(shù)重點實驗室,廣州 510631)

    昆蟲是陸地上種類最多、數(shù)量最大且分布最廣的生物。在長期自然演化過程中,昆蟲形成了蛻皮與變態(tài)這一特殊且重要的發(fā)育特征,而這一特征主要受到蛻皮激素(20-hydroxyecdysone,20E)和保幼激素(Juvenile hormone,JH)協(xié)同調(diào)控(Riddifordetal.,2003;Jindraetal.,2013)。20E與其受體復(fù)合物EcR-USP(Ecdysone receptor,EcR;Ultraspiracle,USP)結(jié)合后,啟動一系列級聯(lián)反應(yīng)進而調(diào)控蛻皮與變態(tài)相關(guān)基因的表達,導(dǎo)致蛻皮與變態(tài)(Riddifordetal.,2000;2008;Yamanakaetal.,2013)的發(fā)生。JH則與其受體MET/Tai(Methoprene,MET;Taiman,Tai)結(jié)合,啟動其下游的初級反應(yīng)基因Kruppelhomolog1(Kr-h1)表達,進而啟動了JH級聯(lián)信號通路,調(diào)控昆蟲的生長與發(fā)育(Kayukawaetal.,2012;2017)。近年來許多研究逐步完善了20E與JH調(diào)控昆蟲生長與變態(tài)的機制,但二者確切的互作機制有待深入闡釋。Li等發(fā)現(xiàn),果蠅鈣調(diào)同源結(jié)構(gòu)域蛋白Chd64(Calponin homology domain protein,21-kDa Calponin-like protein,Chd64)可與JH反應(yīng)元件(JH-response element,JHRE)結(jié)合,還可通過與核受體Methoprene-tolerant(Met)和USP互作響應(yīng)JH誘導(dǎo)基因的轉(zhuǎn)錄表達(Lietal.,2007)。另一個果蠅Chd蛋白DroVav被認(rèn)為是信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白與酪氨酸磷酸化的表皮生長因子受體(Dekeletal.,2000)。棉鈴蟲HelicoverpaarmigeraChd64同源蛋白HaCal響應(yīng)20E誘導(dǎo)后以磷酸化形式進入細(xì)胞核,受JH analog methoprene(JHA)誘導(dǎo)后以非磷酸化形式與USP1互作進而參與調(diào)控20E或JH的信號級聯(lián)(Liuetal.,2011)

    Chd64是一類含有CH結(jié)構(gòu)域的蛋白。CH結(jié)構(gòu)域一般含100~110個氨基酸殘基,它是一類肌動蛋白結(jié)合結(jié)構(gòu)域,最初發(fā)現(xiàn)于鈣結(jié)合蛋白(Calponin)的氨基末端,后來發(fā)現(xiàn)在多種肌動蛋白結(jié)合蛋白和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白中也存在CH結(jié)構(gòu)域(Gimonaetal.,2002;Ferjanietal.,2010)。根據(jù)蛋白序列的不同,含有CH結(jié)構(gòu)域的蛋白質(zhì)主要分為3類:氨基末端含單一CH結(jié)構(gòu)域的蛋白質(zhì)、由兩個CH結(jié)構(gòu)域串聯(lián)形成絲狀肌動蛋白結(jié)合結(jié)構(gòu)域(F-actin-binding domain,ABD)的蛋白質(zhì)及含兩個ABD結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)(Korenbaum and Rivero,2002)。蛋白質(zhì)中兩個串聯(lián)的CH結(jié)構(gòu)域構(gòu)成了肌動蛋白結(jié)合區(qū),例如血影蛋白、肌動蛋白、肌養(yǎng)蛋白和纖維蛋白(Hartwigetal.,1994;McGoughetal.,1998)。研究認(rèn)為,大部分含CH結(jié)構(gòu)域的蛋白質(zhì)都能與肌動蛋白相結(jié)合或者參與細(xì)胞的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)(Banuelosetal.,1998)。果蠅中含CH結(jié)構(gòu)域的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白DroVav作為一個信號轉(zhuǎn)導(dǎo)器在果蠅發(fā)育中發(fā)揮著關(guān)鍵作用(Dekeletal.,2000)。Liu等發(fā)現(xiàn)在棉鈴蟲中含CH結(jié)構(gòu)域的類肌鈣蛋白HaCal在20E和JH的通路網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮重要作用,調(diào)節(jié)了相關(guān)基因的表達從而影響棉鈴蟲的生長發(fā)育(Fuetal.,2009;Liuetal.,2011)。在赤擬谷盜和蝦中,Chd64也在20E和JH調(diào)控的通路中發(fā)揮了重要作用(Sinetal.,2014;Tarczewskaetal.,2015)。

    基于Chd64蛋白在果蠅和棉鈴蟲生長發(fā)育中激素信號傳導(dǎo)途徑的重要作用,本論文克隆了鱗翅目模式昆蟲同時也是重要經(jīng)濟昆蟲家蠶中與果蠅DmChd64同源的BmChd64基因,并對該蛋白氨基酸序列進行生物信息學(xué)預(yù)測,同時利用實時熒光定量PCR(Quantitative Real-time PCR,qRT-PCR)檢測了該基因在家蠶中的時空表達,并利用共聚焦顯微鏡進行了該蛋白的亞細(xì)胞定位分析,以期豐富家蠶等全變態(tài)昆蟲變態(tài)發(fā)育分子調(diào)控機理的研究,為家蠶發(fā)育的人為調(diào)節(jié)與害蟲的生物防治提供新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料和主要試劑

    本研究選用的家蠶品系為大造,蠶卵由廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蠶業(yè)與農(nóng)產(chǎn)品加工研究所提供,家蠶幼蟲定時以桑葉飼喂,于溫度26℃,相對濕度65%~75%,光周期L ∶D=12 ∶12條件下培養(yǎng)至成蟲。大腸桿菌DH5α、BL21、原核表達載體pET-28a及真核表達載體pIE1-EGFP-N1均由本實驗室保存。Trizol Isolate抽提試劑盒、pMD-18T載體、DNA限制性內(nèi)切酶、T4連接酶、Taq酶、低分子量標(biāo)準(zhǔn)蛋白marker、DNA marker、M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒和實時熒光定量PCR試劑盒均購自TAKARA公司;質(zhì)粒提取和DNA膠回收試劑盒為TianGen產(chǎn)品;實驗所用其他試劑均為國產(chǎn)分析純試劑;實驗涉及的引物合成和相關(guān)DNA測序委托華大基因公司完成。

    本研究所用BmN細(xì)胞株來源于家蠶卵巢細(xì)胞,為本實驗室培養(yǎng)與保存,細(xì)胞培養(yǎng)條件為27℃恒溫,所用培養(yǎng)基為含有10%胎牛血清(Fetal Bovine Serum,F(xiàn)BS)的Grace培養(yǎng)基(GIBCO,USA)。細(xì)胞每隔3 d以1 ∶3的比例稀釋培養(yǎng)基作繼代培養(yǎng)。后均勻鋪板于24孔細(xì)胞培養(yǎng)板,待細(xì)胞密度長至80%~90%時進行轉(zhuǎn)染和后續(xù)實驗。

    1.2 家蠶總RNA的提取與cDNA合成

    選取處于5齡游走期的家蠶,脂肪體、中腸、表皮和翅原基組織;取5齡至蛹期的家蠶,隔天取翅原基組織,并于液氮中速凍后研磨。按Trizol Isolate抽提試劑盒的說明提取家蠶組織的RNA,用紫外分光光度計和1%瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的純度和濃度及質(zhì)量,然后按照TAKARA公司的M-MLV RTase cDNA Synthesis Kit(反轉(zhuǎn)錄試劑盒)說明書,反轉(zhuǎn)錄合成第一鏈cDNA。

    1.3 家蠶 BmChd64基因的克隆及序列分析

    以果蠅中的DmChd64(Acession No:AAF47840)為參照基因,在NCBI上通過Blast分析對比出家蠶中對應(yīng)的同源基因,即BmChd64(Accesion No:NP_001040372;相似性:81%;E-value:4e-109)。根據(jù)序列設(shè)計PCR引物(見表1),以家蠶cDNA為模版,進行PCR擴增,反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性3 min;94℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸30 s,30個循環(huán),最后72℃延伸10 min。反應(yīng)結(jié)束后,用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物。參照DNA膠回收試劑盒的方法進行膠回收。將膠回收純化后的PCR產(chǎn)物與pMD18-T載體連接,轉(zhuǎn)化到DH5α菌體中,篩選陽性克隆進行測序。使用DNAstar軟件中的Clustal Alignment Programe對測序后的序列進行比對鑒定?;蛐蛄斜容^與進化樹構(gòu)建使用DNAStar軟件的Clustal W方法。

    表1 本研究所使用到的引物Table 1 Primers used in this study

    1.4 家蠶BmChd64的原核表達和純化

    用BamHⅠ和XhoⅠ對目的DNA片段和pET-28a載體進行雙酶切,反應(yīng)體系為質(zhì)粒10 μL,BamH I酶1 μL,XhoⅠ酶1 μL,10 × K Buffer 3 μL,ddH2O 5 μL。反應(yīng)條件為37℃ 3 h。膠回收后將二者連接,構(gòu)建重組質(zhì)粒pET-28a-BmChd64,將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到BL21菌體中,加入最終濃度為1 M IPTG進行誘導(dǎo)表達,SDS-PAGE檢測表達情況。為了確定重組蛋白是否以可溶的形式表達,收集經(jīng)IPTG誘導(dǎo)的菌體后,將菌體進行超聲破碎,分別收集沉淀和上清液,在12%凝膠上進行SDS-PAGE檢測。蛋白純化按照Ni-NTA His·Bind Resin(Novagen)試劑盒的方法進行。取1 mL Ni2+柱于管中,使用2倍體積蒸餾水洗2次,2倍體積1×Charge (50 mM NiSO4)緩沖液洗3次,2倍體積1×Binding buffer(0.5 M NaCl,20 mM Tris-HCl,5 mM Imidazole,pH7.9)緩沖液洗2次,將收集的上清液用0.45 μM的濾膜過濾后加入管中,分別以10倍體積的1×Binding buffer、6倍體積的1×Washing buffer (0.5 M NaCl,20 mM Tris-HCl,60 mM Imidazole,pH7.9)和6倍體積的1×Elute buffer (0.5 M NaCl,20 mM Tris-HCl,1 M Imidazole,pH7.9)洗柱子,離心收集上清,該上清含純化蛋白。用SDS-PAGE檢查蛋白純化效果。

    1.5 BmChd64在家蠶不同發(fā)育時期各組織中的表達分析

    以家蠶各發(fā)育時期翅原基cDNA和5齡游走期翅原基、表皮、脂肪體和中腸組織cDNA為模版,以家蠶Rp49(Gene ID:778453)作為內(nèi)參基因,參照qRT-PCR試劑盒的方法(TAKARA,大連),采用20 μL體系,10 μL SYBR Premix Ex TaqTM,上、下游引物各0.8 μL,6.8 μL ddH2O,2 μL DNA模板。使用7300 Real-time PCR System進行PCR反應(yīng),PCR反應(yīng)程序如下:95℃變性30 s,40個循環(huán),循環(huán)條件為95℃ 3 s,60℃ 30 s。每個樣品重復(fù)進行3次,檢測BmChd64的表達。為增加數(shù)據(jù)的可比性,需提前檢測目標(biāo)基因和內(nèi)標(biāo)基因的擴增效率是否一致。然后采用2法來確定每一個目標(biāo)基因相對內(nèi)標(biāo)基因Rp49的相對表達量。用Graphpad Prism 5統(tǒng)計分析軟件,采用ANOVA(多個處理間的兩兩比較)或獨立樣本T測驗(兩個樣品間比較)來進行處理間的差異比較分析。

    1.6 BmChd64的亞細(xì)胞定位

    將PCR擴增得到的BmChd64的ORF片段插入到pMD18-T中,用BamHⅠ和XhoⅠ進行雙酶切后,將目的DNA片段插入到真核表達載體pIE1-EGFP-N1上,并通過雙酶切驗證重組質(zhì)粒pIE1-BmChd64-EGFP。

    轉(zhuǎn)染前一天,加入完全培養(yǎng)基培養(yǎng)BmN細(xì)胞過夜,至細(xì)胞密度80%~95%時,進行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染時,去除細(xì)胞培養(yǎng)皿中的完全培養(yǎng)基,用無血清(FBS)的Grace’s Insect培養(yǎng)基清洗細(xì)胞兩次,再加入適量的無FBS的Grace’s Insect培養(yǎng)基到培養(yǎng)皿中,然后加入200 μL轉(zhuǎn)染混合物,輕輕混勻,培養(yǎng)8 h后,更換含10% FBS的Grace’s Insect培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)。24 h后,通過激光共聚焦顯微鏡觀察帶有GFP標(biāo)簽的BmChd64,進行亞細(xì)胞定位。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 BmChd64基因克隆與序列分析

    以家蠶cDNA為模版,對BmChd64基因進行PCR擴增,產(chǎn)物經(jīng)1%凝膠電泳分離后在500~700 bp中間處顯示出一條特異性條帶(圖1)。對該特異性PCR產(chǎn)物進行膠回收后與pMD18-T載體連接,通過PCR檢測陽性克隆。提取陽性克隆細(xì)胞的質(zhì)粒進行DNA測序,測序結(jié)果顯示該PCR產(chǎn)物與GenBank的相應(yīng)序列相同。

    圖1 BmChd64基因的PCR擴增Fig.1 PCR amplification of BmChd64 gene注:M,5000 DNA分子量標(biāo)準(zhǔn);1,BmChd64基因的PCR擴增。Note:M,DL5000 DNA marker;1,PCR amplification of BmChd64 gene.

    對克隆得到的BmChd64的cDNA序列進行分析。結(jié)果顯示,該基因開放閱讀框(ORF)的堿基數(shù)為567 bp,編碼188個氨基酸。BmChd64蛋白的分子量大小為20.9 kDa,理論等電點為8.41。該基因所編碼的蛋白在第27~130個氨基酸處存在CH結(jié)構(gòu)域(圖2)。

    圖2 BmChd64核苷酸及其編碼的氨基酸序列Fig.2 Nucleotide and deduced amino acid sequences of BmChd64注:陰影序列顯示CH域。下劃線,5′非翻譯區(qū)和3′非翻譯區(qū);紅色字體,起始密碼子與終止密碼子;***,翻譯終止位點;黃色底紋,CH結(jié)構(gòu)域。Note:Shadow sequence showed a CH domain.Underline,5′ untranslated region and 3′ untranslated region;Red font,Start codon and stop codon;***,Translation termination site;Yellow shading,CH domain.

    2.2 BmChd64的同源性比對與進化分析

    為了解Chd64蛋白在昆蟲中的功能是否保守,將家蠶BmChd64的氨基酸序列與埃及伊蚊Aedesaegypti、岡比亞按蚊Anophelesgambiae、棉鈴蟲Helicoverpaarmigera、體虱Pediculushumanuscorporis、赤擬谷盜Triboliumcastaneum、黑腹果蠅D.melanogaster、果蠅D.mojavensis及豌豆蚜Acyrthosiphonpisum進行同源序列比對和相似性分析。結(jié)果顯示,BmChd64與其它昆蟲的同源氨基酸序列具有極高的相似性,其中,與赤擬谷盜的相似性最高為84%,與DmChd64的相似性為80.9%。不同昆蟲間同源氨基酸序列的高相似性(圖3和表2),暗示了該基因在不同昆蟲中的功能較保守,推測其在昆蟲中可能發(fā)揮相似的功能?;谕葱詷?gòu)建了系統(tǒng)進化樹,結(jié)果顯示,BmChd64與鞘翅目赤擬谷盜的親緣關(guān)系最近,但與同為鱗翅目的棉鈴蟲的HaCal親緣關(guān)系較遠(圖4)。

    圖3 不同昆蟲的Chd64蛋白的氨基酸序列比對Fig.3 Amino acid sequence alignment of Chd64 protein from different insects注:Chd64蛋白來源及GenBank登錄號。1,家蠶 Bombyx mori transgenlin (Chd64) protein,NP_001040372.1;2,赤擬谷盜 Tribolium castaneum,XP_975100.1;3,埃及伊蚊 Aedes aegypti,XP_001652323.1;4,果蠅 Drosophila mojavensis,XP_015015904.1;5,黑腹果蠅 Drosophila melanogaster Cdh64,NP_001261398.1;6,岡比亞按蚊 Anopheles gambiae,XP_321834.4;7,豌豆蚜 Acyrthosiphon pisum calpoin-like,NP_001191867.1;8,體虱 Pediculus humanus corporis,XP_002426427.1;9,棉鈴蟲 Helicoverpa armigera calpoin,XP_021189834.1。

    表2 不同昆蟲Chd64蛋白的氨基酸序列相似性(相似度(%))Table 2 Amino acid sequence identity of Chd64 protein from different insects(Identity)

    圖4 BmChd64與其它昆蟲同源氨基酸序列的系統(tǒng)進化樹Fig.4 Phylogenetic tree of Chd64 protein from different insects

    2.3 BmChd64重組蛋白的表達與純化

    將重組質(zhì)粒pET-28a-BmChd64轉(zhuǎn)化到大腸桿菌,在37℃,200 rpm的培養(yǎng)條件下,加入IPTG誘導(dǎo)蛋白表達,以經(jīng)IPTG誘導(dǎo)的pET-28a菌體蛋白作為對照。SDS-PAGE檢測結(jié)果顯示,在約26 kDa處出現(xiàn)一條特異性條帶(圖5-A,泳道2),因pET-28a含有2個His標(biāo)簽,每個標(biāo)簽蛋白為3 kDa,預(yù)測BmChd64蛋白的分子量為 20.9 kDa,出現(xiàn)的目的條帶與預(yù)測的pET-28a-BmChd64蛋白大小相近,這表明BmChd64重組蛋白在原核系統(tǒng)中成功表達。將菌體經(jīng)過超聲波破碎后,在上清和沉淀中都檢測到重組蛋白(圖5-A,泳道3和4),表明重組蛋白以可溶的形式表達。蛋白純化后,在小于29 kDa處出現(xiàn)純化的特異性蛋白條帶,與預(yù)測的pET-28a-BmChd64蛋白約26 kDa大小一致(圖5-B,泳道1和2)。

    圖5 BmChd64重組蛋白表達的SDS-PAGE分析Fig.5 SDS-PAGE analysis of expression of BmChd64 protein注:A,BmChd64重組蛋白誘導(dǎo)表達;M,蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);1,經(jīng)IPTG誘導(dǎo)的pET-28a菌體蛋白;2,經(jīng)IPTG誘導(dǎo)的菌體重組總蛋白;3,誘導(dǎo)的菌體重組蛋白上清;4,誘導(dǎo)的菌體重組蛋白沉淀。B,BmChd64重組蛋白純化;M,蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);1、2,純化后BmChd64重組蛋白。Note:A,Induced expression of BmChd64 recombinant protein;M,Standard protein maker;1,pET-28a bacterial protein induced by IPTG;2,Recombinant total protein of pET-28a-BmChd64 induced by IPTG;3,Supernatant recombinant protein of pET-28a-BmChd64 induced by IPTG;4,Precipitate recombinant protein of pET-28a-BmChd64 induced by IPTG.B,Purification of BmChd64 recombinant protein;M,Standard protein maker;1 and 2,BmChd64 recombinant protein after purification.

    2.4 BmChd64在家蠶各發(fā)育時期各組織中的表達分析

    利用qRT-PCR分別分析了家蠶5齡游走期脂肪體、中腸、表皮和翅原基中BmChd64的表達量和5齡至蛹期的翅原基中BmChd64基因的mRNA的表達情況。結(jié)果顯示,BmChd64在家蠶5齡游走期的各組織都有一定量的表達,BmChd64在脂肪體中的表達量最低,在翅原基中的表達量最高,其次是表皮和中腸(圖6),BmChd64在翅原基的高表達暗示其與變態(tài)發(fā)育中翅原基的發(fā)育相關(guān)。在翅原基中,BmChd64在5齡末期和游走期都有較高水平的表達,在蛹初期表達下降,到蛹期 4 d表達又升高,至蛹末期表達量最高(圖7)。BmChd64在翅原基的表達模式與家蠶體內(nèi)20E的滴度變化高度一致(楊鑫華,2010;Wangetal.,2018),暗示其在翅原基的表達可能與20E有關(guān)。

    圖6 qRT-PCR檢測BmChd64在脂肪體、中腸、表皮和翅原基中的表達Fig.6 qRT-PCR analysis of expression profiles of BmChd64 in the fatbody,midgut,epidermis and wing disc注:EP,表皮;MG,中腸;FB,脂肪體;WD,翅原基。不同字母表示兩者之間顯著差異,P<0.05。Note:EP,Epidermis;MG,Midgut;FB,Fat body;WD,Wing disc.Different letters indicated significant differences,P<0.05.

    圖7 qRT-PCR檢測BmChd64在翅原基中的表達Fig.7 qRT-PCR analysis of expression profile of BmChd64 in the wing disc注:L,幼蟲期;D,天;W,游走期;PP,預(yù)蛹期;P,蛹期。數(shù)字表示在相應(yīng)時期的天數(shù)。不同字母表示兩者之間顯著差異,P<0.05。Note:L,Larval stage;D,Day;W,Wandering;PP,Prepupal stage;P,Pupal stage.The numbers indicated the days in the corresponding stages.Different letters indicated significant differences,P<0.05.

    2.6 BmChd64蛋白的亞細(xì)胞定位

    蛋白質(zhì)的功能與其亞細(xì)胞定位密切相關(guān),通過了解蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位信息,可為探究蛋白質(zhì)的生物學(xué)功能提供線索。為檢測BmChd64在細(xì)胞內(nèi)的定位,本論文構(gòu)建了綠色熒光蛋白(GFP)標(biāo)記的BmChd64蛋白表達載體,通過雙酶切驗證pIE1-BmChd64-EGFP載體構(gòu)建成功。用構(gòu)建好的pIE1-BmChd64-EGFP轉(zhuǎn)染BmN細(xì)胞株,并通過共聚焦顯微鏡檢測熒光信號。結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染了EGFP載體的細(xì)胞中,熒光信號在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中均勻分布,且細(xì)胞質(zhì)比細(xì)胞核的綠色熒光更強。在轉(zhuǎn)染了BmChd64-pEGFP載體的細(xì)胞中,熒光信號雖在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中都有分布,但圍繞細(xì)胞核的細(xì)胞質(zhì)區(qū)域的熒光明顯更暗,出現(xiàn)一個暗圈,而細(xì)胞核中熒光信號更強(圖8-D,F),暗示了細(xì)胞質(zhì)中的BmChd64蛋白也可能入核,其主要是在細(xì)胞核中起作用。

    圖8 BmChd64在BmN細(xì)胞中的定位Fig.8 Localization of BmChd64 in BmN cells注:A,BmN轉(zhuǎn)染EGFP質(zhì)粒后綠色熒光圖像;B,BmN轉(zhuǎn)染EGFP質(zhì)粒后白光圖像;C,BmN轉(zhuǎn)染EGFP質(zhì)粒后熒光和白光Merge圖像;D,BmN轉(zhuǎn)染EGFP-BmChd64質(zhì)粒后綠色熒光圖像;E,BmN轉(zhuǎn)染EGFP-BmChd64質(zhì)粒后白光圖像;F,BmN轉(zhuǎn)染EGFP-BmChd64質(zhì)粒后熒光和白光Merge圖像;N,細(xì)胞核;C,細(xì)胞質(zhì);綠色熒光,目的蛋白存在的位置。Note:A,Green fluorescence image after transfection of EGFP vector in BmN cells;B,White light image after transfection of EGFP vector in BmN cells;C,Fluorescence and white light Merge image after transfection of EGFP vector in BmN cells;D,Green fluorescence image after transfection of EGFP-BmChd64 plasmid in BmN cells;E,White light image after transfection of EGFP-BmChd64 plasmid in BmN cells;F,Fluorescence and white light Merge image after transfection of EGFP-BmChd64 plasmid in BmN cells;N,Nuclei;C,Cytoplasm.The fluorescence presented the location of target gene.

    3 結(jié)論與討論

    本研究成功克隆了家蠶的BmChd64基因,該基因cDNA的開放閱讀框為567 bp,編碼188個氨基酸,預(yù)測蛋白分子量大小為20.9 kDa,理論等電點為8.41,存在單個CH結(jié)構(gòu)域,與其它昆蟲中已報道的Chd64蛋白含CH結(jié)構(gòu)域一致(Lietal.,2007;Liuetal.,2011;Kozowskaetal.,2014;Tarczewskaetal.,2015)。同源性比對表明該基因編碼的氨基酸序列與赤擬谷盜TcChd64和果蠅DmChd64同源性較高,推測BmChd64與TcChd64和DmChd64的功能相似。DmChd64的生物學(xué)功能已有研究證實,其通過與EcR/USP和Met等蛋白結(jié)合,共同調(diào)控JH應(yīng)答基因的表達,在介導(dǎo)果蠅JH和20E激素信號交流過程中發(fā)揮了關(guān)鍵作用(Lietal.,2007)。赤擬谷盜TcChd64蛋白的功能尚未有報道,Kozowska等對TcChd64蛋白序列進行分析發(fā)現(xiàn),其與DmChd64的相似性達74%,推測其與DmChd64的功能相似(Kozowskaetal.,2014)。因此,本研究推測,BmChd64可能與DmChd64一樣,參與了家蠶JH和20E的激素調(diào)控過程。

    同時,本研究利用qRT-PCR檢測了BmChd64在家蠶不同組織中的表達。結(jié)果顯示,BmChd64在5齡游走期的多個組織都有一定量的表達,其中BmChd64在翅原基中表達量最高,其次是表皮和中腸,表達量最低的是脂肪體,該基因在翅原基中表達量最高,表明該基因在翅原基的發(fā)育過程中有著重要的作用。在翅原基中,BmChd64在 5齡中后期的表達水平較低,而到了5齡末期和游走期表達水平較高,在蛹初期表達下降,到蛹期4 d表達又升高,至蛹末期表達量最高,這一變化趨勢與20E在家蠶體內(nèi)的滴度變化(楊鑫華,2010;Wangetal.,2018)趨勢相吻合。在棉鈴蟲中,20E誘導(dǎo)HaCal的快速磷酸化,HaCal可通過20E或JH信號迅速轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中與USP1相互作用,同時HaCalRNAi可以抑制20E對USP1、PKC和HR3的誘導(dǎo)(Liuetal.,2011)。因此推測,BmChd64可能在20E的作用下大量表達,進而導(dǎo)致翅原基完成幼蟲-蛹期的變態(tài)發(fā)育并促進5齡中后期的蛹翅向成蟲翅轉(zhuǎn)變。

    研究蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位有助于更好地了解目的蛋白的作用機理和調(diào)控機制。本研究用構(gòu)建好的BmChd64-EGFP轉(zhuǎn)染家蠶BmN細(xì)胞株后通過共聚焦顯微鏡檢測熒光信號,熒光信號在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中都有分布,但主要是分布在細(xì)胞核中。Liu等發(fā)現(xiàn)在棉鈴蟲中,含有CH結(jié)構(gòu)域的蛋白HaCal磷酸化能迅速進入細(xì)胞核內(nèi)與核內(nèi)蛻皮激素受體復(fù)合物EcR-USP結(jié)合,從而在20E和JH的通路網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮重要作用(Liuetal.,2011)。因此推測家蠶BmChd64蛋白可能也與HaCal一樣會被磷酸化,而磷酸化影響了蛋白的亞細(xì)胞定位。Kozowska等利用Kratky圖表明果蠅DmChd64和赤擬谷盜TcChd64蛋白很可能在兩個末端都有內(nèi)在的無序區(qū)域(intrinsically disordered regions,IDRs),這些區(qū)域可作為與各種因子進行多重相互作用的平臺,并為其調(diào)節(jié)功能奠定基礎(chǔ)(Kozowskaetal.,2014)。BmChd64與DmChd64、TcChd64同源性最高,推測家蠶BmChd64蛋白可能也可與其它因子互作,而與其它因子的互作也會影響B(tài)mChd64的亞細(xì)胞定位。綜上所述,家蠶BmChd64可能在20E的作用下參與調(diào)控家蠶翅原基的變態(tài)發(fā)育。

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