胡金華 王婧 汪日紅 卓莉莉 張秋玲
2型糖尿病是常見的慢性疾病,據(jù)調(diào)查研究顯示2017年全球糖尿病患者已高達4.51億,給個人生活質(zhì)量及社會醫(yī)療帶來了嚴重負擔(dān)[1-2]。目前已有充分的證據(jù)顯示,胰島β細胞受損在2型糖尿病發(fā)病中扮演重要角色[3-4],因此采取有效的治療藥物改善胰島β細胞分泌。GLP-1類似物可一定程度上促進機體胰島素的釋放,改善胰島β細胞的功能[5],但具體涉及的作用機制尚不明確。目前已發(fā)現(xiàn)其可通過調(diào)控非編碼RNA miR-132表達水平提升胰島β細胞中的葡萄糖和GLP-1誘導(dǎo)的胰島素分泌,影響胰島功能[6]。環(huán)狀RNA(circular RNA,circRNA)是一大類共價閉合環(huán)狀非編碼RNA,不受核酸外切酶的影響而具有高度穩(wěn)定性。課題組前期對糖尿病大鼠胰腺細胞組織進行circRNA表達譜分析,發(fā)現(xiàn)circRNADOCK1呈異常表達,與其他circRNA類似,其具有海綿樣吸附作用,含有miRNA結(jié)合位點,可作為競爭性內(nèi)源RNA調(diào)控下游miRNA表達。本研究將圍繞這個問題進一步了解GLP-1類似物改善胰島功能的作用機制,為防治2型糖尿病提供新的研究思路。
1.1 實驗材料 艾塞那肽(美國MCE公司);大鼠胰島β細胞系INS-1細胞(美國ATCC公司);胎牛血清和RPMI-1640(美國Gibco公司);胰島素檢測試劑盒(北京北方生物技術(shù)研究所);RNA提取試劑Trizol、DMSO、DEPC水、Lipofectamine 2,000(美國Invitrogen公司);SYBR Premix Ex Taq qPCR試劑盒(日本Takara公司);CCK-8檢測試劑盒(上海翊圣生物科技有限公司);引物(上海生物工程公司);熒光素酶報告基因檢測試劑盒(Prome公司);circRNADOCK1過表達載體(廣州自吉賽生物公司);siRNA-circRNADOCK1(銳博生物公司)。
1.2 實驗方法 (1)細胞培養(yǎng)及分組:將INS-1細胞培養(yǎng)在RPMI-1640培養(yǎng)基,37℃、5% CO2、21% O2氣體的恒溫恒濕環(huán)境中。25 mmoL/L的葡萄糖處理INS-1細胞24 h后將細胞分為6組:①對照組:不做任何處理;②GLP-1類似物組:給予GLP-1類似物艾塞那肽處理48 h;③circRNADOCK1 siRNA組:轉(zhuǎn)染circRNADOCK1siRNA,干擾表達;④circRNADOCK1過表達組:轉(zhuǎn)染過表達circRNADOCK1載體,上調(diào)circRNADOCK1表達;⑤GLP-1類似物+circRNADOCK1 siRNA組:先 用 艾 塞 那 肽 處 理48 h,再 轉(zhuǎn) 染circRNADOCK1siRNA;⑥GLP-1類似物+circRNADO CK1過表達組:先用艾塞那肽處理48 h,再轉(zhuǎn)染過表達circRNADOCK1載體。(2)GLP-1類似物處理細胞:加入100 nmol/L艾塞那肽10 μL至高糖處理后的INS-1細胞,培養(yǎng)48 h后,進行后續(xù)實驗。(3)circRNADOCK1過表達載體轉(zhuǎn)染:過表達circRNADOCK1的慢病毒載體及空載體,采用感染復(fù)數(shù)(MOI)=20作為轉(zhuǎn)染條件,取INS-1細胞鋪于96孔培養(yǎng)板,每組設(shè)3個重復(fù)孔。circRNADOCK1過表達慢病毒經(jīng)擴增、鑒定、純化后用于后續(xù)實驗,待細胞長至80%時,培養(yǎng)24 h后棄培養(yǎng)液,然后吸出培養(yǎng)液,加入circRNADOCK1過表達慢病毒或空白載體慢病毒轉(zhuǎn)染液,在37 ℃、5%CO2、21%O2的細胞孵箱培養(yǎng)1 h后棄轉(zhuǎn)染液后繼續(xù)培養(yǎng)48 h。(4)circRNADOCK1 siRNA轉(zhuǎn)染:待細胞匯合度達50%時用于細胞轉(zhuǎn)染,將circRNADOCK1 siRNA與si-NC轉(zhuǎn)染質(zhì)粒按轉(zhuǎn)染說明分別轉(zhuǎn)染于INS-1細胞中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,收集細胞。(5)氯化鉀刺激的胰島素分泌(KSIS)功能實驗及胰島素測定:經(jīng)不同處理后的細胞先棄去培養(yǎng)上清,用PBS漂洗一次,加入KRBH緩沖液(krebs-ringer bicarbonate HEPES Buffer)培養(yǎng)1 h;棄去上清,INS-1細胞中加入含有3.3 mmol/L(低糖)或者50.0 mmoL/L KCl(高鉀)的KRBH緩沖液,孵育1 h,收集上清,待測;PBS再漂洗一次,每孔細胞加入200 μL酸乙醇,4 ℃抽提過夜,取上清用于檢測;放免法(RIA)用試劑盒檢測各組細胞胰島素水平。(6)CCK-8實驗檢測細胞增殖:取各組處理后處于對數(shù)生長期的INS-1細胞,以每孔1,000個細胞接種于96孔板中,并分別在0、6、12、24、36、48 h時間點加入CCK-8試劑,37 ℃環(huán)境中孵育1 h,熒光酶標儀在450 nm條件下測定吸光度(A)值,繪制生長曲線。(7)實時定量PCR檢測circRNADOCK1和miR-132-3p表達:Trizol法提取細胞RNA,測定濃度和純度,逆轉(zhuǎn)錄合成,以β-actin為內(nèi)參照,將cDNA模板、SYBR Green預(yù)混液、上/下游引物、ddH2O配制成PCR反應(yīng)溶液,置于Real-time PCR儀上進行PCR擴增反應(yīng)。反應(yīng)條件為:95 ℃ 5 min預(yù)變性,然后按95℃ 30 s、60 ℃ 1 min、72 ℃ 1 min、共40個循環(huán),最后72 ℃延伸5 min。通過2-△△CT法分析基因相對表達量。PCR引物序列,見表1。(8)雙熒光素酶報告實驗:以pGL3-promoter為載體,構(gòu)建包含circRNADOCK1與miR-132-3p潛在結(jié)合序列的重組質(zhì)粒pGL3-circRNADOCK1和包含相應(yīng)結(jié)合序列突變的pGL3-circRNADOCK1-mut,將重組質(zhì)粒和miR-132-3p共轉(zhuǎn)染至INS-1細胞中,根據(jù)螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素酶熒光強度比值(FL/RL)的改變判斷circRNADOCK1與miR-132-3p是否存在結(jié)合作用。
表1 引物序列
1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS22.0統(tǒng)計軟件。計量資料符合正態(tài)分布以(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析進行檢驗;兩兩比較采用LSD-t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 各組細胞KSIS功能比較 與對照組比較,GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組細胞的KSIS功能明顯上升(P<0.05),circRNADOCK1過表達組明顯下降(P<0.05);與GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1 siRNA組增加更為明顯(P<0.05);與circRNADOCK1過表達組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1過表達組明顯增加,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。
圖1 各組細胞KSIS功能比較
2.2 各組細胞胰島素含量比較 與對照組比較,GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組胰島素含量明顯上升(P<0.05),circRNADOCK1過表達組明顯下降(P<0.05);與GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1 siRNA組增加更為明顯(P<0.05);與circRNADOCK1過表達組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1過表達組明顯增加,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖2。
圖2 各組細胞胰島素含量比較
2.3 各組細胞增殖率比較 與對照組比較,GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組增殖率明顯增加(P<0.05),circRNADOCK1過表達組明顯下降(P<0.05);與GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1 siRNA組增加更為明顯(P<0.05);與circRNADOCK1 過表達組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1過表達組明顯增加(P<0.05)。見圖3。
圖3 各組細胞增殖率比較
2.4 各組circRNADOCK1 mRNA和miR-132-3p mRNA表達 與對照組比較,GLP-1類似物組與circ RNADOCK1 siRNA組的circRNADOCK表達明顯下降,miR-132-3p表達明顯增加(P<0.05),circRNADOCK1過表達組circRNADOCK表達明顯增加,miR-132-3p表達明顯降低(P<0.05);與GLP-1類似物組與circRNADOCK1 siRNA組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1 siRNA組circRNADOCK表達下降更為明顯,miR-132-3p表達增加更為明顯(P<0.05);與circRNADOCK1過表達組比較,GLP-1類似物+circRNADOCK1過表達組circRNADOCK表達明顯下降,miR-132-3p表達明顯增加,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖4。
圖4 各組circRNADOCK1 mRNA和miR-132-3p mRNA相對表達量
2.5 雙熒光素酶報告實驗驗證circRNADOCK1與miR-132-3p的結(jié)合作用 雙熒光素酶報告實驗結(jié)果顯示,與pGL3-circRNADOCK1-MUT重組質(zhì)粒比較,pGL3-circRNADOCK1-WT的細胞FL/RL值顯著降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖5。
圖5 雙熒光素酶報告實驗
2型糖尿病是遺傳和環(huán)境因素共同作用的內(nèi)分泌代謝疾病,其主要病因是胰島β細胞受損導(dǎo)致機體胰島素抵抗。因此,修復(fù)受損胰島β細胞是治療2型糖尿病的基礎(chǔ)。隨著GLP-1類似物的逐漸應(yīng)用,其在臨床上受到廣泛關(guān)注,主要通過與胰腺β細胞中表達的GLP-1受體結(jié)合對β細胞發(fā)揮調(diào)控作用。然而,GLP-1類似物調(diào)控β細胞功能中的下游分子機制仍有待充分理解。
隨著非編碼RNA的不斷發(fā)現(xiàn)和闡明,其在胰島β細胞中的功能和機制逐步被揭示,以胰島β細胞為中心的miRNAs和環(huán)狀RNA的表達調(diào)控網(wǎng)絡(luò)逐漸豐富[7-8]。研究發(fā)現(xiàn),在腫瘤細胞中circRNADOCK1發(fā)揮海綿吸附作用,與miR-132具有結(jié)合位點,通過調(diào)控其表達發(fā)揮促癌作用,細胞分裂貢獻者(DOCK)家族成員,circRNADOCK1在腫瘤的發(fā)生和發(fā)展中其關(guān)鍵作用[9-11]。筆者前期研究發(fā)現(xiàn),糖尿病大鼠胰腺細胞circRNADOCK1表達異常升高,但其在GLP-1調(diào)控miR-132的過程中發(fā)揮何種作用尚未研究報道,故本研究采用高糖刺激大鼠INS-1細胞模擬胰島細胞受損,隨后采用不同干預(yù)手段,分析其對胰島分泌功能和胰島素的影響。結(jié)果顯示,艾塞那肽和circRNADOCK1 siRNA提升細胞KSIS功能和胰島素含量,而circRNADOCK1 oeRNA則降低細胞KSIS功能和胰島素含量。初步表明circRNADOCK1升高在胰島β細胞功能受損中的作用,而降低其表達有助于改善胰島β細胞功能。但至此,仍不清楚GLP-1與circRNADOCK1的調(diào)控關(guān)系,為了進一步明確兩者的作用,本研究在上述干預(yù)基礎(chǔ)上采用功能回復(fù)實驗,即在干擾和過表達circRNADOCK1的基礎(chǔ)上分別聯(lián)合艾塞那肽。結(jié)果顯示,干擾circRNADOCK1和艾塞那肽共處理后,細胞胰島分泌功能和胰島素增加更為明顯,而circRNADOCK1過表達與艾塞那肽共處理后,明顯逆轉(zhuǎn)circRNADOCK1過表達引起的降低和艾塞那肽的升高;同時實時熒光定量PCR檢測的circRNADOCK1和miR-132-3p mRNA表達結(jié)果則是進一步驗證了GLP-1與circRNADOCK1,這充分表明GLP-1與circRNADOCK1存在直接的調(diào)控作用,且可通過circRNADOCK1調(diào)控miR-132-3p表達。雙熒光素酶報告實驗則驗證了circRNADOCK1與miR-132-3p具有結(jié)合位點。
綜上所述,胰高血糖素樣肽1(GLP-1)通過circRNADOCK1/miR-132-3p信號軸調(diào)控胰島β細胞分泌功能。在下一步工作中,課題組將繼續(xù)深入研究相關(guān)機制,為2型糖尿病的防治提供新的思路。