張之為,范俊臣,康立茹,2,賈瑞芳,田再民,趙 君
(1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學 園藝與植物保護學院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010018;2.內(nèi)蒙古自治區(qū)農(nóng)牧業(yè)科學院, 內(nèi)蒙古 呼和浩特 010031;3.河北北方學院 農(nóng)林科技學院,河北 張家口 075000)
花青素又稱花色苷、花青苷或花色素,是一類水溶性類黃酮色素,普遍分布于植物的花瓣、果實、莖和葉等組織中,呈現(xiàn)紅、紫、藍等顏色[1]?;ㄇ嗨氐幕窘Y(jié)構(gòu)由2個芳香環(huán)和一個含氧雜環(huán)組成,根據(jù)其結(jié)構(gòu)不同被劃分為六大類:天竺葵素(Pelargonidin)、矢車菊素(Cyanidin)、芍藥花素(Peonidin)、飛燕草素(Delphinidin)、矮牽牛素(Petunidin)和錦葵素(Malyidin)[2]。對于植物來說,花青素給予了植物多種鮮艷的顏色,吸引昆蟲授粉和傳播種子,同時能夠提高植物抗性,通過清除自由基、抗氧化、防御病原體等方式,幫助植物抵御多種生物與非生物脅迫[3-5]?;ㄇ嗨氐暮铣墒穷慄S酮合成通路中的一個重要分支,其過程涉及多個復雜的酶促反應,這些關(guān)鍵酶包括苯丙氨酸解氨酶(Phenylalanine ammonia lyase,PAL)、肉桂酸羥化酶(Cinnamate 4-hydroxylase,C4H)、查爾酮合成酶(Chalcone synthase,CHS)、查爾酮異構(gòu)酶(Chalcone isomerase,CHI)、黃烷酮-3-羥化酶(Flavanone 3-hydroxylase,F(xiàn)3H)、二氫黃酮醇-4-還原酶(Dihydroflavonol 4-reductase,DFR)、花青素合成酶(Anthocyanidin synthase,ANS)和類黃酮3-O-葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶(Flavonoid 3-O-glucosyltransferase,UFGT)等[6-8]。這些關(guān)鍵酶受到早期生物合成(EBG)和晚期生物合成(LBG)2套結(jié)構(gòu)基因的調(diào)控,其中EBGs 包括CHS、CHI和F3H;LBGs 包括F3′H、F3′5′H、DFR、ANS和UFGT[9],這些結(jié)構(gòu)基因的表達受轉(zhuǎn)錄因子MYB、bHLH 和WD40 的調(diào)控和外界環(huán)境因素的影響[10-11]。
Rab蛋白是一類單體GTP結(jié)合蛋白,分子質(zhì)量為20~30 ku,是小G蛋白家族中最大的一個家族,廣泛存在于動物、植物和微生物中,目前已經(jīng)克隆并獲得很多Rab蛋白,其中擬南芥有57 個Rabs,水稻有52個Rabs[12],人類有60 個Rabs,酵母有11 個Rabs[13-14]。Rab蛋白是細胞內(nèi)的“分子開關(guān)”,主要通過與GTP 或GDP結(jié)合來行使“開”或“關(guān)”功能[15],現(xiàn)有研究已證明,Rab蛋白具有參與信號轉(zhuǎn)導[16-17]、細胞極性生長[18]、囊泡運輸[19]和骨架組裝[20]等功能。由于花青素能夠調(diào)控植物的生物脅迫和非生物脅迫反應,Rab蛋白作為細胞內(nèi)的“分子開關(guān)”,也參與了植物生物脅迫和非生物脅迫反應,因此Rab蛋白與植物花青素合成之間存在一定聯(lián)系。
本試驗以馬鈴薯為材料,超表達小G蛋白StRab5b基因后,研究其對馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中花青素含量以及花青素合成關(guān)鍵酶PAL活性的影響,旨在為研究小G蛋白StRab5b和馬鈴薯花青素合成之間的關(guān)系提供理論依據(jù)。
組培苗選用馬鈴薯品種底西瑞(Desiree),中間載體PLG-ROP和表達載體pBIA1300-221為內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學植物病理實驗室保存的質(zhì)粒載體?;ㄇ嗨睾亢蚉AL活性測定中選用的材料為轉(zhuǎn)基因馬鈴薯株系StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5,對照材料選用轉(zhuǎn)空載體pBIA1300-221的馬鈴薯植株。
1.2.1StRab5b基因的克隆利用TRIzol Reagent(Invitrogen)試劑盒提取馬鈴薯葉片組織中總RNA,經(jīng)過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性。利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒HiScript 1st Strand cDNA Synthesis Kit(Vazyme)合成cDNA,以cDNA為模板,用分別帶有KpnⅠ和BglⅡ酶切位點的StRab5b基因特異性引物(StRab5b-F 5′-GAAGATCTTCATGGGTTGCGCATCTTCAGC-3′,StRab5b-R 5′-GGGGTACCCCATGATCAAGCAGCAGTCG-3′)進行PCR,獲得StRab5b基因片段。經(jīng)過膠回收試劑盒Easy Pure Quick Gel Extraction Kit(北京全式金生物技術(shù)有限公司)純化后與克隆載體PCR 2.1連接,構(gòu)建T-StRab5b載體,將T-StRab5b載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌后,利用藍白斑篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒DNA后,用KpnⅠ和BglⅡ進行雙酶切鑒定。
1.2.2 表達載體構(gòu)建 將T-StRab5b和PLG-ROP載體分別用KpnⅠ和BglⅡ進行雙酶切,回收T-StRab5b中的小片段,與PLG-ROP載體回收的大片段進行連接,構(gòu)建中間載體PLG-StRab5b,轉(zhuǎn)化大腸桿菌后,在添加100 mL/L Kan的LB固體培養(yǎng)基上篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒DNA后,用SwaⅠ和SacⅠ進行雙酶切鑒定。將PLG-StRab5b載體用SwaⅠ和SacⅠ進行雙酶切,pBIA1300-221用SmaⅠ和SacⅠ進行雙酶切,回收PLG-StRab5b載體小片段,與pBIA1300-221載體大片段連接,構(gòu)建表達載體p1300-221-StRab5b,轉(zhuǎn)化大腸桿菌后,在添加100 mL/L Kan的LB固體培養(yǎng)基上篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒DNA后,用Sac Ⅰ和XbaⅠ進行雙酶切鑒定。將表達載體p1300-221-StRab5b轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌LB4404中,在添加100 mL/L Kan,100 mg/L Rif的LB固體培養(yǎng)基上篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒,用StRab5b基因特異性引物(StRab5b-F和StRab5b-R)進行PCR鑒定。
1.2.3 馬鈴薯遺傳轉(zhuǎn)化 采用葉盤法進行馬鈴薯遺傳轉(zhuǎn)化,摘取帶葉柄的馬鈴薯組培苗葉片,沿主脈橫切2~3次,置于帶有表達載體p1300-221-StRab5b的農(nóng)桿菌LB4404菌液(OD600=0.5)中,輕搖10 min,用無菌濾紙吸干葉片表面的菌液,移到共培養(yǎng)培養(yǎng)基(MS+1.0 mg/L IAA+0.2 mg/L GA3+2.0 mg/L ZT+0.5 mg/L 6-BA)中黑暗培養(yǎng)2~3 d。然后將葉片轉(zhuǎn)移到芽誘導分化培養(yǎng)基(MS+1.0 mg/L IAA+0.2 mg/L GA3+2.0 mg/L ZT+0.5 mg/L 6-BA+25 mg/L Hyg)中,在培養(yǎng)條件為25 ℃、光照16 h/d、光照強度4 000 μmol/(m2· s)誘導生芽,每隔14 d更換一次培養(yǎng)基。當抗性芽長到2 cm時,轉(zhuǎn)入MS培養(yǎng)基中進行生根培養(yǎng),待形成完整植株時,切取葉片,利用qPCR進行鑒定。qPCR反應引物信息為q-StRab5b-F 5′-ATAGCCTTGCAGGACTCAAC-3′和q-StRab5b-R 5′-CAGCACCTCGGTAGTATAATGG-3′,內(nèi)參引物信息為q-Stactin-F:5′-GATGGTGTCAGCCACAC-3′和q-Stactin-R:5′-ATTCCAGCAGCTTCCATTCC-3′。
1.2.4 馬鈴薯試管薯產(chǎn)生 將馬鈴薯無菌苗放入MS液體培養(yǎng)基(MS基本成分+0.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L GA3+2% 蔗糖),在溫度25 ℃、光照16 h/d、黑暗8 h/d條件下培養(yǎng)30 d。挑選健壯幼苗,加入誘導生薯培養(yǎng)基(MS基本成分+0.5 mg/L 6-BA+8%蔗糖),在溫度25 ℃、黑暗條件下誘導生薯。
1.2.5 花青素含量測定 將0.2 g馬鈴薯組織(葉片、莖段、薯塊)剪碎,轉(zhuǎn)入15 mL離心管中,加入5 mL 2%鹽酸甲醇(V/V=2∶98)溶液,黑暗條件下,室溫浸提至組織完全變白。12 000 r/min離心10 min,將上清液轉(zhuǎn)入10 mL容量瓶中,用2%鹽酸甲醇溶液定容至10 mL,重復3次。以2%鹽酸甲醇溶液為空白對照,用光徑1 cm的比色皿,在波長為530 nm處,用TU-1901紫外可見分光光度計測定吸光度值[21]。以吸光度值為0.1代表花青素含量的1個單位,用花青素相對含量表示。
1.2.6 PAL活性測定 將0.2 g馬鈴薯組織(葉片、莖段、薯塊)放入-20 ℃預冷的研缽中,加入1 mL 0.2 mol/L硼酸鹽緩沖液(pH值8.8),其中含有0.5 mmol/L β-巰基乙醇和5%聚乙烯吡咯烷酮PVP,于冰浴中研磨成勻漿,用1 mL 0.2 mol/L硼酸鹽緩沖液(pH值8.8)沖洗研缽后,一同轉(zhuǎn)入2 mL離心管中。4 ℃、12 000 r/min離心10 min,上清液即為粗酶液,重復3次。
取0.5 mL粗酶液,加入反應液(1 mL 0.02 mol/L 反應底物L-苯丙氨酸,2.5 mL 蒸餾水)中,30 ℃水浴30 min,加入0.2 mL 6 mol/L鹽酸終止反應。以不加底物的對照,在290 nm處,用TU-1901紫外可見分光光度計測定吸光度值[22]。以每分鐘在290 nm處吸光度變化0.01為1個酶活性單位,用U表示。
PAL=A290×V/(a×0.01×W×t)
式中,V為提取粗酶液體積;a為測定時所用粗酶液體積;W為樣品鮮質(zhì)量;t為反應時間。
以馬鈴薯cDNA為模板,利用StRab5b基因特異性引物進行PCR擴增,獲得約600 bp的目的基因片段,與預期的片段大小一致(圖1)。與克隆載體連接后,用KpnⅠ和BglⅡ進行雙酶切鑒定,獲得約600 bp的小片段(圖2),說明StRab5b基因與克隆載體PCR 2.1連接成功。
M.DNA Marker 2K;1.StRab5b基因。 M.DNA Marker 2K;1.StRab5b gene.
M.DNA Marker 2000;1.T-StRab5b載體。 M.DNA Marker 2000;1.T-StRab5b vector.
為了構(gòu)建與GFP融合的表達載體,先將StRab5b基因序列構(gòu)建到含有GFP的載體PLG-ROP中,經(jīng)過SwaⅠ和SacⅠ雙酶切鑒定,獲得約1 200 bp的GFP-StRab5b融合片段(圖3-A)。將GFP-StRab5b融合片段構(gòu)建表達載體pBIA1300-221中,獲得重組質(zhì)粒p1300-221-StRab5b,經(jīng)過SacⅠ和XbaⅠ雙酶切鑒定,獲得約1 200 bp的片段(圖 3-B),說明GFP-StRab5b已經(jīng)連接到表達載體中。將表達載體p1300-221-StRab5b轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌LB4404中,利用StRab5b基因特異性引物(Rab5b-F和Rab5b-R)進行PCR鑒定,獲得了約600 bp的片段,與陽性對照相同(圖4),說明表達載體已經(jīng)轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌LB4404中。
A.PLG-StRab5b載體SwaⅠ和SacⅠ酶切鑒定:M.DNA Marker 2000 Plus;1.PLG-StRab5b載體。 B.p1300-221-StRab5b載體SacⅠ和XbaⅠ酶切鑒定:M.DNA Marker 15000;1.p1300-221-StRab5b載體。 A.PLG-StRab5b/SmaⅠ-SacⅠ:M.DNA Marker 2000 Plus;1.PLG-StRab5b vector.B.p1300-221-StRab5b/SacⅠ-Xba I: M.DNA Marker 15000;1.p1300-221-StRab5b vector.
利用qPCR方法對獲得的陽性植株進行StRab5b基因相對表達量的分析,結(jié)果顯示(圖5),與對照植株相比較,陽性植株中StRab5b基因的表達量均顯著增加,其中在StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5植株中,StRab5b基因的表達豐度較高。
選擇StRab5b基因表達量較高的轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5,將薯塊種植到營養(yǎng)缽中,培養(yǎng)30 d后,觀察植株葉片和莖段顏色的變化。轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的葉片和莖段中均出現(xiàn)紫紅色,而對照馬鈴薯葉片和莖段中未出現(xiàn)紫紅色(圖6)。利用試管生薯的方法,誘導馬鈴薯產(chǎn)生薯塊,在轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的薯塊中出現(xiàn)紫紅色,但是對照馬鈴薯薯塊中沒有產(chǎn)生紫紅色(圖7)。說明小G蛋白StRab5b基因在馬鈴薯超表達后,增加了馬鈴薯葉片、莖段、薯塊的顏色積累。
不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。圖8—9同。 Different letters represent significant differences(P<0.05). The same as Fig.8—9.
圖6 超表達StRab5b基因后葉片和莖段的表型Fig.6 The phenotype of leaves and stem segments after overexpression of StRab5b gene
分別測定馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中的花青素含量,結(jié)果顯示,馬鈴薯不同組織中花青素含量大小依次為葉片>莖段>薯塊,與對照相比,超表達StRab5b基因后,馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中的花青素含量均顯著增加。葉片中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的花青素含量分別比對照增加了42%,24%,54%,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯葉片中花青素含量與對照形成顯著差異(P<0.05),表現(xiàn)為植株StRab5b-L5>StRab5b-L2>StRab5b-L3;莖段中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的花青素含量分別比對照增加了59%,37%,32%,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯莖段中花青素含量與對照形成顯著差異,表現(xiàn)為植株StRab5b-L2>StRab5b-L3>StRab5b-L5;薯塊中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的花青素含量分別比對照增加了118%,82%,105%,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯薯塊中花青素含量沒有顯著差異,表現(xiàn)為StRab5b-L2>StRab5b-L5>StRab5b-L3(圖8)。說明小G蛋白StRab5b基因超表達能夠增加馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中的花青素含量。
圖8 超表達StRab5b基因后馬鈴薯中花青素相對含量Fig.8 The anthocyanin relative content in potato after overexpression of StRab5b gene
由圖9可知,與對照相比,超表達StRab5b基因后,馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中PAL活性均顯著增加(P<0.05)。葉片中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的PAL活性分別比對照增加了88%,63%,66%;莖段中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的PAL活性分別比對照增加了48%,38%,31%;薯塊中,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯植株StRab5b-L2、StRab5b-L3和StRab5b-L5的PAL活性分別比對照增加了98%,78%,64%,而轉(zhuǎn)基因馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中的PAL活性沒有差異。說明小G蛋白StRab5b基因超表達能夠增加馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中PAL的活性。
圖9 超表達StRab5b基因后馬鈴薯中PAL活性Fig.9 The PAL activity in potato after overexpression of StRab5b gene
植物中花青素的生物合成可以劃分為3個階段,即苯丙烷途徑階段、類黃酮代謝階段和花青素催化合成階段,這些過程涉及多種關(guān)鍵酶和轉(zhuǎn)錄因子的參與[6,10]。在苯丙烷途徑中,花青素生物合成的直接前體是苯丙氨酸,PAL能夠?qū)⒈奖彼徂D(zhuǎn)化為肉桂酸,肉桂酸在4CL和C4H的作用下形成香豆酸輔酶A,再通過進一步代謝形成花青素,其中PAL是苯丙烷代謝途徑的重要調(diào)控位點,是花青素合成的限速酶[23]。已有研究發(fā)現(xiàn),植物中花青素的合成與PAL呈現(xiàn)一定的相關(guān)關(guān)系,植物大量合成花青素的時候,檢測到PAL的活性增加,同時PAL基因的表達量呈現(xiàn)上調(diào)的趨勢[24-26]。本研究中,馬鈴薯中超表達StRab5b基因后,與對照相比,植株葉片、莖段和薯塊中的花青素含量顯著增加,同時葉片、莖段和薯塊中PAL活性也增加,說明StRab5b基因能夠參與馬鈴薯葉片、莖段和薯塊的花青素的合成,調(diào)控花青素合成的方式主要是通過調(diào)節(jié)PAL的活性,由于增加了苯丙氨酸轉(zhuǎn)化為肉桂酸量,進而增加了合成花青素的底物,因此,在馬鈴薯葉片、莖段和薯塊中花青素的合成量增加。
馬鈴薯不同組織中,超表達StRab5b基因后的花青素含量和PAL活性存在差異,表現(xiàn)為葉片>莖段>薯塊,揭示StRab5b基因在不同組織中的表達水平存在差異。由于在葉片中StRab5b基因表達量較多,對PAL活性產(chǎn)生較大作用,通過PAL調(diào)節(jié)合成較多的花青素,而莖段和薯塊中StRab5b基因表達量較少,對PAL活性影響作用較小,因此,在莖段和薯塊中合成了相對較少的花青素。