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    紫山藥多酚分離純化及其對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用

    2022-09-08 01:36:54朱延勝魏明錢森和趙世光
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年16期
    關(guān)鍵詞:酚類大孔糖苷酶

    朱延勝,魏明,錢森和,趙世光

    (安徽工程大學(xué) 生物與食品工程學(xué)院,安徽 蕪湖,241000)

    紫山藥(DioscroreaalataL.)是山藥的一種,具有養(yǎng)胃潤肺、益腎健脾等功效,是一種藥食兩用植物[1]。紫山藥含有多糖、花青素、薯蕷皂苷、尿囊素、多酚等活性成分,具有抗氧化、延緩衰老、降血糖、降血脂等功能,這些功能與其生物活性物質(zhì)密切相關(guān)[2-4]。

    抑制α-葡萄糖苷酶的活性是防治糖尿病的有效手段,通過抑制α-葡萄糖苷酶的活性,可以防止餐后血糖水平升高[5]。KWON等[6]研究發(fā)現(xiàn),從茄子里提取的酚類物質(zhì)具有抑制糖代謝相關(guān)酶活性的作用。LES等[7]發(fā)現(xiàn)石榴汁中的酚類物質(zhì)具有較強的α-葡萄糖苷酶抑制活性。GUO等[8]研究發(fā)現(xiàn),紫山藥乙醇提取物對α-葡萄糖苷酶活性具有一定的抑制作用。因此,分離純化紫山藥多酚,并研究其α-葡萄糖苷酶抑制活性,對明確紫山藥多酚的降血糖作用具有重要意義。

    大孔樹脂具備較強的選擇性和吸附性能,使用成本低,受雜質(zhì)及酸堿的影響較小,性質(zhì)穩(wěn)定再生能力強,在天然活性成分的分離純化方面得到了廣泛應(yīng)用[9]。不同的植物所含的酚類物質(zhì)性質(zhì)不同,不同樹脂的極性、顆粒大小和比表面積均能影響其對酚類物質(zhì)純化的效果,所以,選擇適宜的樹脂至關(guān)重要[10]。近年來,大孔樹脂在植物多酚分離純化方面的研究已有大量文獻(xiàn)報道,且取得了良好的效果[11-12]。ZHANG等[13]利用離子液體協(xié)同超聲提取紫山藥多酚,取得了良好的提取效率。大孔樹脂分離純化紫山藥多酚尚未見報道。

    本文探討了大孔樹脂對紫山藥多酚的分離純化效果,利用不同洗脫劑獲得不同洗脫組分,比較不同洗脫組分的α-葡萄糖苷酶抑制活性,并分析多酚的組成,研究結(jié)果為闡明紫山藥酚類物質(zhì)的降血糖活性提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    紫山藥產(chǎn)自廣州增城縣;D4006、AB-8、D101、ADS-7、NKA-9型大孔樹脂,鄭州和成新材料科技有限公司;α-葡萄糖苷酶、4-硝基苯-α-D-吡喃葡萄糖苷(4-nitrophenyl α-D-glucopyranoside,pNPG),分析純,Amresco 公司;各種酚類物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品均為色譜純,Sigma公司其余試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    DHL-B型電腦恒流泵,上海青浦滬西儀器廠;BSZ-100型自動部分收集器,上海琪特分析儀器有限公司;RE52-AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海亞榮生化儀器廠;JC-LDGZ-12S型冷凍干燥機,青島聚創(chuàng)環(huán)保有限公司;LC-20A型高效液相色譜儀,日本島津公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 紫山藥粗多酚的制備

    將紫山藥洗滌后,切片冷凍干燥,研磨成粉末后過100目篩備用。取100 g紫山藥粉于10 L提取罐中,加入7 L蒸餾水,60 ℃條件下浸提2.5 h,過濾去渣后將溶液濃縮至100 mL,加入400 mL無水乙醇,放入4 ℃冰箱內(nèi)靜置24 h后過濾除去絮狀沉淀,收集濾液濃縮后,置于冷凍干燥機內(nèi)干燥48 h,得到紫山藥粗多酚備用。

    1.3.2 大孔樹脂的篩選

    大孔樹脂預(yù)處理和篩選參考楊希娟等[12]的方法略作修改,將一定量的大孔樹脂預(yù)處理后風(fēng)干備用,稱取5種大孔樹脂各1 g,置于5個250 mL的三角瓶中,分別加入200 mL、0.91 g/L的紫山藥粗多酚溶液,在室溫下于120 r/min振蕩12 h后,測定多酚濃度,過濾取出吸附飽和的樹脂,放入5個250 mL三角瓶中,分別加入50%的乙醇溶液200 mL,振蕩解吸12 h后測定多酚濃度。根據(jù)公式(1)和公式(2)分別計算樹脂的吸附率和解吸率[14]。

    (1)

    (2)

    式中:C0,吸附前溶液中多酚質(zhì)量濃度,g/L;C1,吸附平衡后溶液中剩余多酚的質(zhì)量濃度,g/L;C2,解吸平衡后溶液中多酚的質(zhì)量濃度,g/L。

    1.3.3 AB-8樹脂靜態(tài)吸附-解吸試驗

    1.3.3.1 吸附時間確定

    準(zhǔn)確稱取AB-8樹脂1 g,放入5個250 mL的三角瓶中,分別加入200 mL、2.0 g/L的紫山藥粗多酚溶液。在室溫下于120 r/min下振蕩,每隔1 h測定各三角瓶中溶液多酚濃度,計算吸附率。

    1.3.3.2 多酚濃度對大孔樹脂吸附率的影響

    參考巫永華等[14]的方法略作修改,準(zhǔn)確稱取6份AB-8樹脂各1 g,將其放入6個250 mL的三角瓶中,加入200 mL質(zhì)量濃度分別為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 g/L 的紫山藥粗多酚溶液,在室溫下于120 r/min下振蕩4 h,測定各三角瓶中溶液多酚濃度,計算吸附率。

    1.3.3.3 pH值對吸附率的影響

    準(zhǔn)確稱取7份AB-8樹脂各1 g,分別放入7個250 mL的三角瓶中,分別加入200 mL、2.0 g/L的不同pH值的紫山藥粗多酚溶液(pH= 2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0),在室溫下于120 r/min振蕩4 h,測定各三角瓶中溶液多酚濃度,計算吸附率。

    1.3.3.4 乙醇濃度對解吸率的影響

    參考巫永華等[14]的方法略作修改,準(zhǔn)確稱取8份AB-8樹脂各1 g,放入8個250 mL的三角瓶中,分別加入200 mL、2.0 g/L 的紫山藥粗多酚溶液,在室溫下于120 r/min下振蕩4 h,測定各三角瓶中溶液多酚濃度,抽濾取出樹脂后,再放入8個250 mL的三角瓶中,分別加入20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%的乙醇溶液200 mL,振蕩解吸12 h后,測定各三角瓶中溶液多酚濃度,計算解吸率。

    1.3.4 AB-8樹脂動態(tài)吸附-解吸試驗

    1.3.4.1 上樣流速對樹脂吸附效果的影響

    將適量的AB-8大孔樹脂濕法填充入25 mm×300 mm的色譜柱中,用蒸餾水沖壓至平衡無氣泡。用質(zhì)量濃度為2.0 g/L的紫山藥粗多酚,分別以0.5、1.0、1.5 mL/min的流速進(jìn)行上樣,底部收集流出液,自動收集器設(shè)定每管5 mL,每管吸取0.1 mL溶液測定其多酚的濃度。

    1.3.4.2 洗脫流速對解吸率的影響

    大孔樹脂吸附飽和后,以50%(體積分?jǐn)?shù))的乙醇為洗脫劑,分別以0.6、1.2、1.8 mL/min的流速洗脫,底部收集流出液,自動收集器設(shè)定每管5 mL,每管吸取0.1 mL溶液測定其多酚的濃度。

    1.3.5 總酚含量的測定

    參考LUENGO[15]的方法略作修改。配制質(zhì)量濃度為0.10 g/L的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,其回歸方程為y=0.792 6x+0.009 4,R2=0.999 4。測定樣品中多酚含量時,按照作標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法進(jìn)行操作,根據(jù)回歸方程計算樣品中多酚濃度。

    1.3.6 α-葡萄糖苷酶的抑制活性測定

    參照GHANI等[16]的方法略作修改,具體如下:96微孔板反應(yīng)體系中加入40 μL的α-葡萄糖苷酶溶液,然后加入不同待測樣品40 μL,置于37 ℃的恒溫水浴鍋中反應(yīng)10 min,再加入pNPG溶液40 μL,然后恒溫孵育30 min,再加入120 μL 0.2 mol/L的碳酸鈉溶液終止反應(yīng),于405 nm處檢測吸光度值,計算其IC50。

    (3)

    式中:A0,酶與底物反應(yīng)后的吸光值;A1,加入樣品后酶與底物反應(yīng)的吸光值;A2,樣品自身吸光值。

    1.3.7 不同洗脫劑洗脫組分的α-葡萄糖苷酶的抑制活性

    分別用50%的乙醇、三氯甲烷和乙酸乙酯作為洗脫劑,洗脫飽和吸附紫山藥粗多酚的樹脂柱,收集不同的洗脫組分,分別測定不同洗脫組分的α-葡萄糖苷酶活性抑制率,以阿卡波糖為陽性對照,以粗多酚作為陰性對照。

    1.3.8 高效液相色譜法分析紫山藥多酚單酚成分

    準(zhǔn)確稱取一定量的兒茶素、山奈酚、槲皮素、蘆丁、沒食子酸、表兒茶素、阿魏酸、綠原酸、咖啡酸標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇配制成質(zhì)量濃度為0.4 g/L的單一標(biāo)準(zhǔn)液,各取200 μL混合,再用0.22 μm濾膜過濾后用于HPLC檢測。

    分析條件:依利特 C18色譜柱(100 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30 ℃,紫外檢測波長280 nm,進(jìn)樣量:10 μL,流速:1.0 mL/min。流動相梯度洗脫程序:A:甲醇;B:0.1%冰乙酸;流動相梯度:0 min(85%B),10 min(75%B),25 min(65%B),35 min(55%B),60 min(5%B)。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    試驗數(shù)據(jù)采用SPSS 21.0進(jìn)行分析,采用Origin 2019b制圖。做3次平行測定,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(x±SD)表示。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 最佳樹脂的篩選

    由圖1可知,不同的樹脂對紫山藥多酚的吸附能力差異較大,NKA-9吸附率最高,為77.3%,而AB-8吸附率為72.2%,二者差異不明顯(P>0.05),D101吸附率最低,僅為52.2%。從解吸效果上看,D101解吸率最高,為89.6%,AB-8的解吸率為87.7%,二者差異不明顯(P>0.05),D4006解吸率最低,為69.3%。不同的大孔樹脂由于其極性、比表面積和孔徑等不同,對天然產(chǎn)物會表現(xiàn)出不同的吸附和解吸性能[14]。NKA-9具有較高的吸附率,但解吸率較低。D101解吸率高,但吸附率較低。綜合比較考慮,AB-8樹脂保持了較高的吸附率,同時又具有較高的解吸率。所以,選擇AB-8樹脂分離純化紫山藥多酚較為合適。

    圖1 五種大孔樹脂的吸附-解吸效果比較Fig.1 Comparison of adsorption and desorption properties of five resins注:不同字母表示組間差異顯著(P<0.05)(下同)

    2.2 靜態(tài)吸附、解吸試驗結(jié)果

    2.2.1 AB-8樹脂的靜態(tài)吸附曲線

    由圖2可知,在AB-8大孔樹脂吸附紫山藥多酚的過程中,吸附時間小于4 h時,吸附率與吸附時間呈明顯的正相關(guān)性。但當(dāng)吸附時間超過4 h,吸附率的增加放緩,這是由于樹脂對于紫山藥多酚的吸附接近飽和狀態(tài)。因此,選定AB-8樹脂對于紫山藥多酚的靜態(tài)吸附時間為4 h,此時吸附率為85.43%。

    圖2 AB-8樹脂靜態(tài)吸附曲線Fig.2 Static adsorption curve of AB-8 resin

    2.2.2 樣品濃度對AB-8樹脂吸附率的影響

    由圖3可知,在質(zhì)量濃度低于2.0 g/L時,紫山藥多酚質(zhì)量濃度與吸附率呈正相關(guān),質(zhì)量濃度為2.0 g/L時吸附率最大,濃度繼續(xù)增大,吸附率有所降低。在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi),濃度增加有利于酚類物質(zhì)分子與樹脂的接觸,提高樹脂的吸附率,但是濃度過高溶液黏度增加,流動性降低,且體系中相關(guān)雜質(zhì)也會增加,不利于酚類物質(zhì)與樹脂的接觸,從而降低了吸附率[17]。因此,選擇多酚質(zhì)量濃度為2.0 g/L作為分離純化的上樣濃度,此時吸附率為89.33%。

    圖3 樣品濃度對AB-8樹脂吸附率的影響Fig.3 Effect of sample concentration on adsorption rate of AB-8 resin

    2.2.3 樣品溶液pH對AB-8樹脂吸附率的影響

    由圖4可知,溶液的pH值為2~5時,AB-8樹脂對紫山藥多酚的吸附率與溶液的pH值呈正相關(guān),樣品液的pH值為5時吸附率最高,此時吸附率為91.97%。當(dāng)pH繼續(xù)升高時,吸附率反而降低。多酚是一類含有羥基的化合物,pH的大小直接影響酚類物質(zhì)在溶液中的狀態(tài)[18]。紫山藥多酚溶液在弱酸性環(huán)境下較穩(wěn)定,有利于AB-8樹脂對酚類物質(zhì)的吸附,當(dāng)溶液酸性減弱時,更多的酚羥基電離,致使酚類物質(zhì)與大孔樹脂間的作用減弱,從而降低了大孔樹脂對多酚的吸附能力,導(dǎo)致吸附率降低[19]。

    圖4 pH值對AB-8樹脂吸附率的影響Fig.4 Effects of pH value on absorption rate of AB-8 resin

    2.2.4 乙醇濃度對解吸率的影響

    由圖5可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)為20%~90%時,解吸率呈現(xiàn)先增后降的趨勢,當(dāng)乙醇的體積分?jǐn)?shù)為50%時,其對紫山藥多酚的解吸率最大,為87.7%。乙醇水溶液對多酚的解吸率與其極性有關(guān),隨著乙醇濃度的增大,其極性降低,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%時,紫山藥中酚類物質(zhì)的極性可能與此時溶液的極性更相近,更多的酚類物質(zhì)被解吸下來。因此,選擇50%的乙醇作為解吸劑較為適宜。

    圖5 乙醇體積分?jǐn)?shù)對AB-8樹脂解吸率的影響Fig.5 Effect of ethanol volume fraction on desorption rate of AB-8 resin

    2.3 動態(tài)吸附-解吸試驗結(jié)果

    2.3.1 動態(tài)吸附曲線

    由圖6可知,上樣流速對AB-8樹脂吸附有較大影響,隨著樣品流速的增大,泄漏點出現(xiàn)的時間越早,樹脂的吸附量越少,這個可能與流速過大會導(dǎo)致吸附的多酚重新被洗脫下來有關(guān)[20]。當(dāng)樣品流速分別為0.5、1.0、1.5 mL/min時,泄露點分別在110、80、40 mL時出現(xiàn),此時的吸附量分別為198、144、72 mg。試驗結(jié)果表明,上樣流速越慢,樹脂吸附的多酚越多,為了提高整個樹脂吸附效率,縮短分離純化時間,上樣流速為1.0 mL/min較為適宜。

    圖6 上樣流速對吸附效果的影響Fig.6 Effect of loading velocity on adsorption

    2.3.2 動態(tài)洗脫曲線

    由圖7可知,洗脫速度為0.6 mL/min時,洗脫液的濃度峰值出現(xiàn)在第4管,酚類物質(zhì)主要集中在1~12管;而流速為1.2、1.8 mL/min時,洗脫液的濃度峰值均在第6管,但后者的洗脫液濃度峰值較低,酚類物質(zhì)分別集中在1~14管與1~17管,由此可見,以流速為1.2 mL/min洗脫時,酚類物質(zhì)洗脫的較為集中且耗時短。一般來說,洗脫液的流速慢有利于洗脫劑與樹脂上的多酚接觸從而充分解吸,但如果流速過慢,會導(dǎo)致解吸的時間過長,流動過程中一些被洗脫下來的多酚可能會被重新吸附[21],而洗脫液的流速過快時,會導(dǎo)致洗脫劑與樹脂接觸時間過短,洗脫劑不能充分解吸多酚,拖尾現(xiàn)象嚴(yán)重,降低生產(chǎn)效率[21]。因此,選擇1.2 mL/min的洗脫流速較為適宜,在此條件下,洗脫液體積為104 mL,多酚回收率為72.7%,多酚純度由13.91%提升到59.06%,純度提高了3.25倍。

    圖7 洗脫流速對解吸效果的影響Fig.7 Effect of elution velocity on desorption

    2.4 不同溶劑洗脫組分對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用

    α-葡萄糖苷酶是一種重要的碳水化合物水解酶,抑制α-葡萄糖苷酶的活性能有效減少碳水化合物的水解,降低腸道對葡萄糖的吸收,從而降低血糖濃度,對于治療和預(yù)防糖尿病具有重要的意義[22]。分別用50%乙醇、乙酸乙酯和三氯甲烷作為洗脫劑,獲得了3種洗脫組分,測定了其對α-葡萄糖苷酶活性的抑制效果。結(jié)果如圖8所示,在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),樣品濃度與α-葡萄糖苷酶的抑制率呈正相關(guān),但不同洗脫溶劑洗下來的多酚組分對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用差異較大,由圖8可知,乙酸乙酯洗脫組分>50%乙醇洗脫組分>三氯甲烷洗脫組分。由表1可知,乙酸乙酯洗脫組分對α-葡萄糖苷酶的抑制活性的IC50值最小,為0.126 g/L,50%乙醇的IC50值為0.216 g/L,而三氯甲烷的IC50值為14.69 g/L。由此可見,乙酸乙酯洗脫組分中含有較多的抑制α-葡萄糖苷酶活性的成分。

    圖8 不同溶劑洗脫物的α-葡萄糖苷酶的抑制能力Fig.8 The α-glucosidase inhibition ability of eluted fractions with different solvents

    表1 不同洗脫組分的α-葡萄糖苷酶活性抑制比較(IC50值)Table 1 Comparison of α-glucosidase inhibition of eluted fractions with different solvents (IC50value)

    2.5 紫山藥多酚不同洗脫組分分析

    由圖9可知,與標(biāo)準(zhǔn)品圖譜對照,50%乙醇洗脫組分主要含有兒茶素、咖啡酸、表兒茶素、阿魏酸、蘆丁和槲皮素;乙酸乙酯洗脫物中主要含有綠原酸、表兒茶素、阿魏酸、蘆丁和槲皮素;三氯甲烷含有沒食子酸,其他未知。有研究表明,綠原酸[23]、槲皮素[24]、蘆丁等具有α-葡萄糖苷酶抑制活性,且蘆丁[25]對α-葡萄糖苷酶的抑制作用較強,這與實驗得出的乙酸乙酯洗脫組分具有較強的α-葡萄糖苷酶抑制活性相一致。

    1-沒食子酸;2-兒茶素;3-綠原酸;4-咖啡酸;5-表兒茶素;6-阿魏酸;7-蘆丁;8-槲皮素;9-山奈酚a-標(biāo)準(zhǔn)品;b-50%乙醇洗脫物;c-乙酸乙酯洗脫物;d-三氯甲烷洗脫物圖9 標(biāo)準(zhǔn)品和不同洗脫組分的高效液相色譜圖Fig.9 The HPLC results of polyphenols standard,and eluted fractions with different solvents

    3 結(jié)論

    (1)AB-8大孔樹脂較適于紫山藥多酚分離純化,其分離純化工藝為:靜態(tài)吸附4 h,溶液pH為5.0,上樣質(zhì)量濃度為2.0 g/L,上樣流速為1.0 mL/min;用50%(體積分?jǐn)?shù))的乙醇作為洗脫劑,在流速為1.2 mL/min時洗脫,收集洗脫液體積104 mL,此時多酚回收率為72.7%,多酚純度由13.91%提升到了59.06%,純度提高了3.25倍。

    (2)比較了50%(體積分?jǐn)?shù))乙醇、乙酸乙酯和三氯甲烷洗脫組分的α-葡萄糖苷酶抑制活性,乙酸乙酯洗脫組分具有最強的α-葡萄糖苷酶抑制活性,其抑制率達(dá)到91.92%,經(jīng)高效液相色譜分析其主要含有蘆丁、綠原酸、表兒茶素、阿魏酸和槲皮素,試驗結(jié)果為紫山藥多酚降血糖的研究提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù),后續(xù)研究進(jìn)一步分離單組分,采用質(zhì)譜、核磁共振對其結(jié)構(gòu)進(jìn)行鑒定,明確其功能。

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