汪 鵬,熊威威,李文恒,翟 琨?,向東山?
1. 湖北民族大學(xué)生物資源保護(hù)與利用湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北恩施445000;2. 湖北民族大學(xué)化學(xué)與環(huán)境工程學(xué)院,湖北恩施445000
銀(silver,Ag)是一種重要的過渡金屬,廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、電子、攝影、化妝品等領(lǐng)域[1]。Ag+是銀在自然界中一種常見的存在形式,在低濃度時(shí)具有很強(qiáng)的抗菌活性[2],可以通過抑制游離巰基蛋白酶的活性抑制其生物學(xué)功能。隨著銀在各個(gè)領(lǐng)域的廣泛應(yīng)用,排放到自然界中的Ag+越來越多,Ag+進(jìn)入到水和土壤后,可以被植物根系吸收,再通過食物鏈進(jìn)入人體,對人類健康構(gòu)成威脅。據(jù)報(bào)道,人體內(nèi)Ag+過多會(huì)導(dǎo)致精氨酸缺乏癥,還會(huì)對腦部、皮膚、眼睛、肝臟、腎臟和腸道造成損害[3]。因此,建立簡單、快速且準(zhǔn)確的Ag+定量檢測方法具有十分重要的意義。
分子熒光定量檢測法具有選擇性好、靈敏度及準(zhǔn)確度高、檢測速度快等優(yōu)點(diǎn),因此基于分子熒光分光光譜法對Ag+的檢測近年來引起了國內(nèi)外科研工作者的較多關(guān)注[1,4,5]。但目前的工作多是利用單一發(fā)射波長的熒光信號對Ag+進(jìn)行定量檢測,測定結(jié)果受環(huán)境因素影響較大,檢測結(jié)果的重復(fù)性較差。比率型熒光探針是一種通過兩個(gè)熒光信號強(qiáng)度比值的變化實(shí)現(xiàn)對目標(biāo)物的定量檢測的方法,檢測結(jié)果受環(huán)境因素影響小,方法重復(fù)性更好、準(zhǔn)確度更高[6~8]。目前,基于比率型熒光探針對Ag+進(jìn)行定量檢測已有報(bào)道:Lu 等[9]利用離子印跡比率熒光探針實(shí)現(xiàn)了對Ag+的定量檢測;Jiao 等[10]利用無標(biāo)記的比率熒光碳點(diǎn)實(shí)現(xiàn)了對Ag+的定量檢測;Li等[11]合成一種硫黃素T 的有機(jī)/無機(jī)雜化納米材料實(shí)現(xiàn)了Ag+的比率熒光定量檢測。但這些方法還存在一些不足之處:一是需要合成納米材料或有機(jī)物作為熒光探針,且合成過程較為復(fù)雜;二是熒光探針?biāo)a(chǎn)生的信號強(qiáng)度較弱,不適于Ag+的痕量檢測。
核酸適配體(aptamer)是一種能特異性識別相應(yīng)靶標(biāo)分子的單鏈核酸[12,13]。據(jù)報(bào)道,Ag+的核酸適配體已被篩選出來且得到了較多應(yīng)用[14~17]。SG(SYBR GreenⅠ)是一種非常靈敏的核酸染料,在水溶液中的背景熒光很弱,但與雙鏈DNA(dsDNA)結(jié)合后熒光信號會(huì)顯著增強(qiáng)[18,19]。本文擬利用熒光染料TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體及核酸染料SG 構(gòu)建一種能特異性識別Ag+的比率型熒光探針,實(shí)現(xiàn)對Ag+高選擇性的定量檢測。
儀器:RF-5301PC 型分子熒光光譜儀(Shimadzu公司),AA800 型原子吸收光譜儀(Perkin-Elmer 公司)及Ethos Plus 型微波消解系統(tǒng)(Milestone公司)。
試劑:硝酸銀(AgNO3)為優(yōu)級純,其他化學(xué)試劑均為分析純,購于國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;SG 生物試劑原液(上海瑞安生物技術(shù)有限公司)是用無水二甲基亞砜(DMSO)配制的10 000 倍濃縮液,使用時(shí)用雙蒸水稀釋10 000 倍配制成工作液;緩沖溶液為0.1 mol/L 的Tris-HNO3緩沖溶液(50 mmol/L NaNO3,pH 7.8);熒光染料TAMRA 標(biāo)記的Ag+核酸適配體委托上海生工生物技術(shù)有限公司合成,其核苷酸堿基序列為:5′-TCTC TCT TCT CTT CAT AAA TCA ACA CAA CAC ACA-(CH2)6-TAMRA-3′(斜體部分為Ag+的適配體);實(shí)驗(yàn)用水均為雙蒸水。
將TAMRA 標(biāo)記的Ag+核酸適配體用0.1 mol/L Tris-HNO3緩沖溶液配制成濃度為5×10-7mol/L 的儲備液。先將50 μL 不同濃度(4×10-8~2.4×10-6mol/L)的AgNO3溶液加入到50 μL 5×10-7mol/L TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體中,再加入100 μL SG工作液,最后加入Tris-HNO3緩沖溶液至終體積為500 μL,混合均勻,用水浴鍋加熱至35 ℃,反應(yīng)9 min。停止反應(yīng),冷卻至常溫后測定體系的熒光強(qiáng)度。在優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件時(shí),TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體濃度均為5×10-8mol/L,Ag+的濃度均為2.4×10-7mol/L。
自來水樣取自湖北民族大學(xué)生物資源保護(hù)與利用湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天然礦泉水樣取自湖北省恩施市龍洞河源頭,取樣時(shí)間均為2019 年10 月8 日中午。自來水取樣時(shí),先放水5 min 后再采集,天然礦泉水在水深20 cm 處采集水樣,所取水樣清澈透明、無色、無懸浮雜質(zhì)和沉淀,水樣帶回實(shí)驗(yàn)室后冷藏保存。水樣的消化步驟為:準(zhǔn)確量取10 mL 水樣于消解罐中,加入6 mL 濃HNO3和4 mL H2O2,置于微波消解系統(tǒng)中進(jìn)行消解。消化的升溫程序?yàn)椋合燃訜岬?20 ℃保持30 min,再升溫到140 ℃保持20 min,最后升溫至180 ℃保持20 min,消解完成后自然冷至室溫。將消解液轉(zhuǎn)移至100 mL 容量瓶中,用1% 稀HNO3洗滌消解罐2~3 次,將洗滌液也倒入容量瓶中,然后定容至100 mL,搖勻,待測。
Ag+的檢測通過測定SG 與TAMRA 熒光強(qiáng)度比值(ISG/ITAMRA)的變化來實(shí)現(xiàn)。SG 與TAMRA 的熒光信號采用同步熒光分析法測定。TAMRA 的最大發(fā)射波長(584 nm)與最大激發(fā)波長(560 nm)之差(Stokes 位移)為24 nm[20],SG 最大發(fā)射波長(525 nm)與最大激發(fā)波長(499 nm)之差為26 nm[21],它們的Stokes 位移很接近,可通過同步熒光分析法同時(shí)獲得它們的熒光信號。為了使兩種熒光染料同時(shí)獲得較好的熒光信號,本實(shí)驗(yàn)將同步掃描的波長間隔(Δλ)設(shè)置為25 nm,激發(fā)及發(fā)射狹縫的寬度均設(shè)置為10 nm。利用火焰原子吸收分光光度法測定Ag+時(shí),先對樣品濃縮50 倍后再檢測。
本實(shí)驗(yàn)主要考察水樣中常見的金屬離子和水樣消解后有可能與Ag+發(fā)生反應(yīng)的陰離子對測定結(jié)果的影響。具體步驟為,在一系列Ag+濃度為2.0×10-7mol/L 的溶液中分別加入濃度為2.0×10-5mol/L 的Na+、K+、Ca2+、Mg2+、Hg2+、Mn2+、Cd2+、Cu2+、Ni2+、Fe3+、Cr3+、Al3+、SO42-及PO43-溶液,然后在相同的條件下與濃度為2.0×10-7mol/L的Ag+溶液(CK)進(jìn)行對照實(shí)驗(yàn)。
利用熒光染料標(biāo)記的核酸適配體及核酸染料SG 檢測Ag+的基本原理如圖1 所示。該方法中,在Ag+核酸適配體的3′端標(biāo)記了熒光染料TAMRA,在沒有目標(biāo)物Ag+存在時(shí),TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體呈單鏈狀態(tài),與SG 幾乎不發(fā)生作用,因此體系中SG 的熒光信號很弱。在有Ag+存在時(shí),TAMRA標(biāo)記的核酸適配體中的C 堿基(胞嘧啶)通過“CAg+-C”特異性結(jié)合形成雙螺旋結(jié)構(gòu)(雙鏈DNA),SG 可進(jìn)入雙鏈DNA 的雙螺旋小溝區(qū)域并與之結(jié)合,導(dǎo)致體系中SG 的熒光強(qiáng)度顯著增強(qiáng)。溶液中Ag+越多,與TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體反應(yīng)后得到的雙鏈DNA 就越多,與雙鏈DNA 結(jié)合的SG 也就越多,作用后SG 的熒光也就越強(qiáng)。但熒光染料TAMRA 在適配體與Ag+反應(yīng)前后熒光強(qiáng)度不會(huì)發(fā)生變化,即熒光染料TAMRA 的熒光強(qiáng)度與溶液中Ag+的濃度沒有關(guān)系。因此,可通過SG與TAMRA熒光強(qiáng)度比值(ISG/ITAMRA)的變化實(shí)現(xiàn)對Ag+的定量檢測。
圖1 基于比率型熒光探針對Ag+檢測的基本原理Fig.1 The basic principle of detection for silver ion based on ratiometric fluorescent probe
2.2.1 SG 工作液用量
在反應(yīng)溫度為35 ℃、反應(yīng)時(shí)間為9 min 及緩沖溶液的pH 值為7.8 的條件下,考察了體系中Ag+濃度為2.4×10-7mol/L 時(shí)加入SG 工作液的用量對測定結(jié)果的影響。結(jié)果(圖2)表明,當(dāng)SG 的用量小于70 μL 時(shí),ISG/ITAMRA隨著SG 用量的增加而增大,當(dāng)SG 工作液的體積達(dá)到70 μL 后,繼續(xù)增加SG 工作液的體積,ISG/ITAMRA幾乎不再發(fā)生變化。為保證SG 工作液相對過量,本實(shí)驗(yàn)選擇加入的SG 工作液的體積為100 μL。
圖2 SG 用量對測定結(jié)果的影響Fig.2 Effect of SG volume on measurement results
2.2.2 緩沖溶液pH 值
本實(shí)驗(yàn)中,緩沖溶液pH 值對測定結(jié)果的影響可能表現(xiàn)在3 個(gè)方面:一是影響Ag+與核酸適配體反應(yīng)后形成雙鏈DNA 的穩(wěn)定性;二是影響TAMRA及SG 的發(fā)光效果;三是影響Ag+在溶液中的存在形式,Ag+在堿性條件下能與OH-反應(yīng)生成難溶的AgOH(AgOH 的溶度積KSP=2×10-8,本實(shí)驗(yàn)中Ag+檢測最大濃度為240.0 nmol/L 時(shí),pH>12.92會(huì)生成沉淀)。因此,本實(shí)驗(yàn)在反應(yīng)溫度為35 ℃、反應(yīng)時(shí)間為9 min 的條件下對緩沖溶液的pH 值進(jìn)行了考察。結(jié)果(圖3)表明,當(dāng)緩沖溶液的pH 值在6.6~7.8 之間時(shí),ISG/ITAMRA隨pH 值的增加而增大;當(dāng)pH 值大于7.8 時(shí),ISG/ITAMRA隨pH 值的增大而逐漸減小。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇緩沖溶液的pH 值為7.8,此時(shí),ISG/ITAMRA值最大,且在檢測范圍內(nèi)不會(huì)生成沉淀。
圖3 pH 值對測定結(jié)果的影響Fig.3 Effect of pH value on the detection results
2.2.3 反應(yīng)溫度
在反應(yīng)時(shí)間為9 min、pH 7.8 的條件下對反應(yīng)溫度的影響進(jìn)行了考察。結(jié)果(圖4)表明,當(dāng)反應(yīng)溫度在20~35 ℃之間時(shí),ISG/ITAMRA隨溫度的升高而增大;當(dāng)溫度高于35 ℃時(shí),ISG/ITAMRA隨溫度的升高而快速減小。這主要是因?yàn)樵跍囟容^低時(shí),升高溫度可以加快Ag+與核酸適配體的反應(yīng)速率,但當(dāng)溫度較高,超過了Ag+與核酸適配體反應(yīng)后所形成雙鏈DNA 的解鏈溫度時(shí),雙鏈DNA 不能穩(wěn)定存在,導(dǎo)致ISG降低,ISG/ITAMRA值減小。因此本實(shí)驗(yàn)選擇的反應(yīng)溫度為35 ℃。
圖4 反應(yīng)溫度對測定結(jié)果的影響Fig.4 Effect of reaction temperature on the detection results
2.2.4 反應(yīng)時(shí)間
在反應(yīng)溫度為35 ℃、pH 7.8 的條件下,對Ag+、TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體及SG 的反應(yīng)時(shí)間進(jìn)行了考察。結(jié)果(圖5)表明,當(dāng)反應(yīng)時(shí)間小于9 min時(shí),ISG/ITAMRA隨反應(yīng)時(shí)間的增加而增大;當(dāng)反應(yīng)時(shí)間大于9 min 后,ISG/ITAMRA隨反應(yīng)時(shí)間的增加變化較小。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇的反應(yīng)時(shí)間為9 min。
圖5 反應(yīng)時(shí)間對測定結(jié)果的影響Fig.5 Effect of reaction time on the detection results
在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,考察了ISG/ITAMRA與Ag+濃度之間的關(guān)系,圖6(a)為不同濃度Ag+體系所對應(yīng)的同步掃描熒光光譜,圖6(b)為ISG/ITAMRA與Ag+濃度(c)的線性關(guān)系圖。圖6(b)結(jié)果表明,在4.0~240.0 nmol/L 范圍內(nèi),ISG/ITAMRA與Ag+濃度具有良好的線性關(guān)系,擬合的回歸方程為ISG/ITAMRA=0.006 0c+0.050 4(R2=0.998 1),方法的檢出限為2.0 nmol/L(3σ,n=9)。為了考察方法的精密度,對9 個(gè)相同濃度的Ag+(20 nmol/L)樣品分別用本文的比率法(以ISG/ITAMRA作熒光信號)和單色熒光法(以ISG作熒光信號)進(jìn)行測定,計(jì)算了兩種方法的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),比率法的RSD 為1.7%,單色熒光法的RSD 為3.5%,比率法具有更好的精密度。
圖6 不同濃度Ag+所對應(yīng)體系的同步掃描熒光光譜(a)以及ISG/ITAMRA與Ag+濃度的線性關(guān)系(b)Fig.6 Synchronous scanning fluorescence spectra of different concentrations of Ag+ for the detection system (a)and the linear relationship between ISG/ITAMRA and the concentration of Ag+ (b)a-j: 0, 2.0, 4.0, 8.0, 16.0, 30.0, 60.0, 120.0, 180.0, 240.0 nmol/L
在240.0 nmol/L 的Ag+溶液中分別加入100 倍濃度的其他金屬離子及陰離子SO42-、PO43-等干擾離子溶液,檢測體系ISG/ITAMRA的變化,考察方法的選擇性。結(jié)果(圖7)顯示,雖然上述干擾離子的濃度遠(yuǎn)大于Ag+濃度,但各樣品所對應(yīng)的體系ISG/ITAMRA均無明顯變化,表明該方法對Ag+具有很高的選擇性。
圖7 其他離子對Ag+檢測的影響Fig.7 Effect of other ions on Ag+ detection
為了驗(yàn)證方法的準(zhǔn)確性,用本方法及火焰原子吸收分光光度法(AAS 法,國標(biāo)法)分別對實(shí)際水樣(自來水和天然礦泉水)中的Ag+進(jìn)行了檢測,并進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)。 分別取4 份自來水(編號T1~T4)和天然礦泉水(編號S1~S4)樣品,加入不同濃度的AgNO3溶液,消解后分別采用本方法和AAS 法(檢測前對樣品濃縮50 倍)[22]對各樣品中Ag+的濃度進(jìn)行檢測。結(jié)果(表1)表明,利用本方法測定的自來水和天然礦泉水中Ag+的含量分別為12.3 nmol/L 和21.2nmol/L,利用AAS 法測定的自來水和天然礦泉水中Ag+的含量分別為12.6 nmol/L和21.4 nmol/L,結(jié)果接近,且均低于飲用水中Ag+的國家限量標(biāo)準(zhǔn)(463.5 nmol/L)[23];本方法的回收率在98.5%~101.8% 之間,AAS 法的回收率在98.0%~102.3% 之間,結(jié)果相差不大;本方法的RSD 均較小,說明本方法具有更好的重復(fù)性。
表1 本方法與AAS 法測定結(jié)果的比較(n=3)Table 1 Comparison of detection results between this method and AAS (n=3)
如表2 所示,與已報(bào)道的Ag+檢測方法[9~11,17,24]相比,本方法靈敏度更高,檢出限更低,適于Ag+的痕量檢測。
表2 本方法與已有的Ag+檢測方法的比較Table 2 Comparison of this method and other reported detection methods for Ag+nmol/L
本文利用熒光染料TAMRA 標(biāo)記的核酸適配體及核酸染料SG 建立了一種高選擇性定量檢測水體中Ag+的方法。與已有的基于比率型熒光探針檢測Ag+的方法相比,該方法具有以下兩個(gè)特點(diǎn):一是熒光探針合成較容易,檢測過程相對簡單;二是利用高靈敏的核酸染料SG 產(chǎn)生熒光信號,檢出限更低,靈敏度更高。該方法檢出限遠(yuǎn)低于飲用水中Ag+的國家限量標(biāo)準(zhǔn),且受環(huán)境因素干擾較小,對自來水和天然礦泉水測定結(jié)果的RSD 均在2%以下,加標(biāo)回收率在98.5%~101.8%之間,可望用于實(shí)際飲用水的檢測。