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    染色體微陣列分析在脈絡(luò)叢囊腫胎兒產(chǎn)前診斷中的應(yīng)用*

    2022-08-08 07:53:10王森林王朝紅李景然孫玉秀龐宇朱健生蔡昭方安徽醫(yī)科大學(xué)附屬安徽省婦幼保健院醫(yī)學(xué)遺傳中心婦產(chǎn)科合肥230000
    臨床檢驗(yàn)雜志 2022年6期
    關(guān)鍵詞:區(qū)域分析檢測(cè)

    王森林,王朝紅,李景然,孫玉秀,龐宇,朱健生,蔡昭方(安徽醫(yī)科大學(xué)附屬安徽省婦幼保健院 .醫(yī)學(xué)遺傳中心,.婦產(chǎn)科,合肥 230000)

    脈絡(luò)叢囊腫(choroid plexus cysts,CPC)是指位于胎兒顱內(nèi)一側(cè)或雙側(cè)脈絡(luò)叢內(nèi)充滿腦脊液的假性囊腫,是孕中期產(chǎn)前超聲檢查常見(jiàn)的軟指標(biāo)之一。研究證實(shí),胎兒CPC 與染色體異常存在相關(guān)性,會(huì)導(dǎo)致不良的妊娠結(jié)局[1]。目前,傳統(tǒng)的染色體顯帶核型分析是診斷染色體異常的金標(biāo)準(zhǔn),可檢測(cè)非整倍體、結(jié)構(gòu)重排和片段較大的染色體畸變,但其分辨率較低,不能檢測(cè)出<5 Mb的拷貝數(shù)變異(copy number variations,CNVs)[2]。染色體微陣列分析(chromosomal microarray analysis,CMA)是一種高分辨率、高通量的全基因組篩查技術(shù),主要用于檢測(cè)染色體微缺失和微重復(fù),能夠快速、準(zhǔn)確地檢測(cè)到基因組拷貝數(shù)的不平衡變異[3]。因此,本研究擬采用CMA技術(shù)和染色體核型分析技術(shù)對(duì)187例羊水樣本進(jìn)行分析,旨在探討CMA 技術(shù)在CPC胎兒產(chǎn)前診斷中的應(yīng)用價(jià)值,以期為產(chǎn)前遺傳咨詢及胎兒預(yù)后評(píng)估提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    1 資料和方法

    1.1 一般資料 選取2017年4月至2020年11月在安徽省婦幼保健院經(jīng)超聲診斷為胎兒CPC 的孕婦187例。年齡為19~44歲,中位年齡29歲,平均孕周(20.23±1.26)周。納入標(biāo)準(zhǔn)[4]:?jiǎn)位钐?,孕中期超聲胎兒脈絡(luò)叢內(nèi)出現(xiàn)直徑≥2 mm、邊界清晰的無(wú)回聲區(qū)。排除標(biāo)準(zhǔn):多胎妊娠,孕婦感染急性期。本研究經(jīng)安徽省婦幼保健院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)[批準(zhǔn)文號(hào):2016(09)],在檢測(cè)前告知 CMA 和核型分析的優(yōu)勢(shì)和局限性,患者或家屬知情同意且自愿選擇后,同時(shí)進(jìn)行羊水細(xì)胞核型分析和染色體微陣列分析。根據(jù)不同指標(biāo),將187例CPC胎兒分為3組:孤立性CPC 胎兒157 例,CPC 合并超聲軟指標(biāo)18例和CPC合并超聲結(jié)構(gòu)異常12例。

    1.2 試劑與儀器 原位載玻片培養(yǎng)盒(杭州寶榮公司),羊水細(xì)胞培養(yǎng)基(美國(guó) Gibco 公司),DNA提取試劑盒(QIAamp DNA Blood Mini Kit,德國(guó)Qiagen公司),全基因組擴(kuò)增試劑盒、Illumina Infinium HD assay 試劑盒(美國(guó)Illumina 公司)。染色體分散儀(美國(guó) Thermotron 公司),GLS-120 全自動(dòng)染色體核型掃描捕獲系統(tǒng)(德國(guó)Leica 公司),雜交爐、洗滌工作站、芯片掃描儀(美國(guó)Affymetrix 公司),Nanodrop 2000 超微量分光光度計(jì)(美國(guó)NanoDrop公司)。

    1.3 方法

    1.3.1 樣本的采集 孕婦于妊娠 18 ~ 26 周,由產(chǎn)前診斷中心在超聲引導(dǎo)下行羊膜腔穿刺術(shù),抽取孕婦胎兒羊水34 mL。其中24 mL經(jīng)培養(yǎng)后進(jìn)行傳統(tǒng)染色體G顯帶核型分析,10 mL用于CMA檢測(cè)。

    1.3.2 核型分析 取上述 24 mL 羊水,經(jīng) 258×g 室溫離心10 min,棄上清,保留0.5 mL細(xì)胞懸液,加1 mL羊水培養(yǎng)基至離心管內(nèi),混勻后吸取懸液接種至原位培養(yǎng)盒,移至37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱預(yù)培養(yǎng)40~48 h,再加入3 mL 新鮮羊水培養(yǎng)基培養(yǎng)7 d后,從培養(yǎng)盒一側(cè)輕吸培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中進(jìn)行傳代培養(yǎng)。原培養(yǎng)盒中加入5 mL羊水培養(yǎng)基培養(yǎng)1 d 后,加入20 μg/mL 秋水仙素 0.1 mL,置37 ℃恒溫箱培養(yǎng)30 min,棄上清,低滲處理(加入5 mL 預(yù)熱的10 g/L檸檬酸鈉,37 ℃恒溫靜置30 min),預(yù)固定(加入5 mL 5%冰醋酸,室溫靜置7 min),漂洗(加入5 mL 固定液),固定(加入5 mL 固定液,室溫靜置20 min),取出玻片至吸水紙上瀝去多余的固定液,放入分散儀中晾干,再放入鼓風(fēng)干燥箱中2 h,1.5 g/L 胰蛋白酶消化 14 ~18 s,生理鹽水清洗后,Giemsa染色,沖洗晾干后,采用GSL-120自動(dòng)掃描儀捕獲羊水核型。使用Cytovision核型分析軟件(德國(guó)Leica公司)計(jì)數(shù)20個(gè)中期細(xì)胞核型,并分析5個(gè)核型,如有異常核型,增加計(jì)數(shù)量。核型結(jié)果按照國(guó)際人類細(xì)胞遺傳學(xué)命名系統(tǒng)(ISCN 2016)進(jìn)行描述[5]。

    1.3.3 樣本 DNA 提取 取各孕婦羊水 10 mL,置于離心管中,580×g 離心10 min,棄上清液。按照QIAamp DNA Blood Mini Kit 說(shuō)明書提取基因組DNA,Nanodrop 2000分光光度計(jì)檢測(cè)DNA濃度,取吸光度(A260nm/A280nm)值為 1.8 ~ 2.0 的樣本,置-20 ℃保存。

    1.3.4 CMA 檢測(cè) 按照美國(guó) Affymetrix 公司提供的CytoScanTM750k 芯片的標(biāo)準(zhǔn)操作流程對(duì)孕婦羊水細(xì)胞DNA 進(jìn)行檢測(cè),并應(yīng)用Affymetrix Chromosome Analysis Suite(ChAS)2.0 軟件對(duì)檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行分析。通過(guò)檢索 DGV (http:/ /dgv.tcag.ca/),DECIPHER(https:/ /decipher.sanger.ac.uk /),ISCA(http:/ /dbsearch.clinicalgenome.org/search/),Clin-Gen(https:/ /www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/dbvar/clingen/),ClinVar(https:/ /www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar/),OMIM(https:/ /omim.org/),PubMed (https:/ /pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/)等公共數(shù)據(jù)庫(kù),綜合所得報(bào)道信息判讀CNVs 的臨床意義。根據(jù)美國(guó)醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)與基因組學(xué)會(huì)指南[6],將CNVs分為三大類 5 級(jí):(1)致病性 CNVs(pathogenic CNVs,pCNVs);(2)良性 CNVs(benign CNVs);(3)臨床意義不明 CNVs(variants of unknown significance CNVs,VOUS CNVs);(4)可能致病性 CNVs(likely pathogenic CNVs);(5)可能良性 CNVs(likely benign CNVs)。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用 SPSS 23.0 軟件對(duì)數(shù)據(jù)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)數(shù)資料以率(%)表示,率的比較采用 χ2檢驗(yàn),以 P <0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 187 例CPC 胎兒常規(guī)染色體核型分析結(jié)果傳統(tǒng)染色體核型分析技術(shù)檢出染色體異常12 例,檢出率為 6.42%(12/187),其中 18-三體 9 例、21-三體2例和性染色體異常 1 例(47,XXX)。見(jiàn)表1。

    表1 12例CPC胎兒的異常核型分析結(jié)果

    2.2 187 例 CPC 胎兒 CMA 結(jié)果 在 187 例 CPC胎兒中,CMA技術(shù)檢出的12 例染色體非整倍體異常與傳統(tǒng)核型分析結(jié)果一致。此外,CMA 技術(shù)還檢出異常CNVs 16例,額外的檢出率為8.56%(16/187)。16 例異常 CNVs 中,致病性 CNVs 5 例,VOUS CNVs 11 例。5 例致病性 CNVs 中,2 例1q21.1q21.2 區(qū)域存在片段缺失,大小分別為 1.80 Mb 和 1.89 Mb,1 例 17q12 區(qū)域存在 1.46 Mb 缺失,2 例 Xp22.31 區(qū)域存在 1.68 Mb 缺失。8 例 VOUS CNVs中,1例18p11.32區(qū)域存在512 Kb重復(fù),1例2p15p14 區(qū)域存在 1.62 Mb 重復(fù),1 例 7q31.32 區(qū)域存在 245 Kb 缺失,1 例 6q26 區(qū)域存在 1.21 Mb 重復(fù),1 例 5q11.2 區(qū)域存在 514 Kb 重復(fù),1 例 Xq26.1區(qū)域存在701 Kb重復(fù),1例15q13.1q13.2區(qū)域存在1.40 Mb 重復(fù),1 例 11q14.3 區(qū)域存在 1.23 Mb 重復(fù),1 例2q13 區(qū)域存在1.71 Mb 重復(fù),1例Xp22.31區(qū)域存在 1.38 Mb 重復(fù),1 例 13q12.12 區(qū)域存在1.68 Mb重復(fù)。見(jiàn)表 2。

    表2 16例核型正常CPC胎兒的異常CMA結(jié)果

    2.3 不同類型CPC胎兒染色體異常的比較 孤立性CPC胎兒組157例,pCNVs 檢出8 例,檢出率為5.10%(8/157);CPC 合并超聲軟指標(biāo)異常胎兒組18 例,pCNVs檢出 2 例,檢出率為 11.11%(2/18);CPC合并超聲結(jié)構(gòu)異常胎兒12 例,pCNVs 檢出7例,檢出率為 58.33%(7/12)。3 組檢出率之間的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=38.33,P =0.000)。

    3 討論

    胎兒CPC 是妊娠中期重要的超聲軟指標(biāo)之一,約有1%~2%的胎兒會(huì)檢出CPC[7]。產(chǎn)前超聲檢查胎兒出現(xiàn)CPC 時(shí),常提示其存在染色體異常的風(fēng)險(xiǎn)較高,尤其是18-三體[8]。目前染色體核型分析作為常用的產(chǎn)前診斷技術(shù),僅能檢出較大片段的染色體結(jié)構(gòu)異常,無(wú)法為臨床產(chǎn)前咨詢和胎兒預(yù)后評(píng)估提供更全面更詳細(xì)的信息。

    本研究中187例CPC胎兒CMA共檢出pCNVs 17 例,檢出率為 9.09%,與 Cai 等[9]報(bào)道的10.95%接近;與齊艷等[1]報(bào)道的3.62%存在一定的差異,這種情況不排除由樣本量不同而引起的偏差或與CPC胎兒合并其他超聲異常有關(guān)。由此可見(jiàn),除了染色體核型異常外,pCNVs 也是CPC 胎兒常見(jiàn)的染色體異常。2 例為 1q21.1q21.2 區(qū)域存在微缺失,均涉及 1q21.1 缺失綜合征(1q21.1 deletion syndrome),主要表型包括智力低下、小頭畸形、先天性心臟異常等[10],1 例為 17q12 區(qū)域存在微缺失,涉及腎囊腫與糖尿病綜合征(renal cysts and diabetes)綜合征,主要表型包括泌尿生殖系統(tǒng)異常(特別是腎囊腫、腎小球囊性腎病和腎發(fā)育不良)、糖尿病、自閉癥、神經(jīng)認(rèn)知障礙和精神分裂癥等[11];2 例為Xp22.31 區(qū)域存在 1.68 Mb 缺失,該區(qū)域中 STS(300747)基因的缺失與X連鎖隱性遺傳的魚鱗?。╮ecessive X-linked ichthyosis)有關(guān),主要表現(xiàn)為皮膚干燥、脫屑為主的角化障礙性皮膚病[12]。這5例pCNVs表現(xiàn)出CPC,豐富了這些病例的臨床表型。另外,17例pCNVs中有12例為染色體非整倍體異常,其中最常見(jiàn)的是18-三體,共有9例。孤立性CPC胎兒中出現(xiàn)2例18-三體,提示孤立性CPC胎兒發(fā)生18-三體的風(fēng)險(xiǎn)較高。CPC 胎兒出現(xiàn)2例21-三體和1例性染色體異常(47,XXX)。根據(jù)Bromley 等[13]的研究,21-三體胎兒也會(huì)出現(xiàn) CPC,但其出現(xiàn)的頻率與一般人群相近,即胎兒出現(xiàn)CPC不會(huì)增加21-三體的風(fēng)險(xiǎn)。目前沒(méi)有相關(guān)研究顯示胎兒CPC 與性染色體異常有相關(guān)性,本研究中出現(xiàn)的1例性染色體異常為偶發(fā)。

    研究表明,VOUS CNVs 在所有檢出病例中占比約為4%[14]。本研究中 CMA 檢出 VOUS CNVs 11例,檢出率為5.88%,與上述文獻(xiàn)報(bào)道的結(jié)果接近。11例VOUS CNVs中,對(duì)病例18 ~26進(jìn)行來(lái)源驗(yàn)證可知,其CNVs均來(lái)源其父母一方。病例27和28未進(jìn)行來(lái)源驗(yàn)證,經(jīng)隨訪嬰兒未見(jiàn)明顯表型異常。目前對(duì)人類基因組的研究和數(shù)據(jù)庫(kù)的積累,仍然無(wú)法對(duì)所有CNVs的臨床性質(zhì)進(jìn)行確切的判讀。因此,對(duì)VOUS病例應(yīng)進(jìn)行更詳盡的遺傳咨詢,必要時(shí)對(duì)胎兒父母進(jìn)行CMA 來(lái)源驗(yàn)證,防止孕婦產(chǎn)生心理負(fù)擔(dān)和造成不必要的引產(chǎn)。

    本研究中12例CPC 胎兒的CMA 結(jié)果與常規(guī)核型分析結(jié)果一致,CMA 技術(shù)較核型分析技術(shù)額外檢出16例異常CNVs,額外檢出率為8.56%。因此,CMA技術(shù)在檢測(cè)CPC 胎兒染色體異常方面更為敏感,是對(duì)傳統(tǒng)核型分析技術(shù)的有益和必要補(bǔ)充。合并超聲結(jié)構(gòu)異常的CPC胎兒pCNVs檢出率最高(58.33%),其次為孤立性 CPC 胎兒和合并超聲軟指標(biāo)異常CPC胎兒,分別為5.10%和11.11%,3組之間比較的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。因此,CMA技術(shù)對(duì)于CPC 合并超聲結(jié)構(gòu)異常的胎兒是值得推薦的。然而由于本研究樣本較少,僅額外檢測(cè)出5個(gè)pCNVs。今后筆者將擴(kuò)大樣本量,進(jìn)行進(jìn)一步研究。

    綜上所述,CMA 技術(shù)對(duì)CPC 胎兒染色體異常具有更高的敏感性,可作為傳統(tǒng)染色體核型分析技術(shù)的補(bǔ)充,提高對(duì)CPC 胎兒異常CNVs 的檢出率,為臨床醫(yī)生進(jìn)行產(chǎn)前遺傳咨詢和胎兒預(yù)后評(píng)估提供更詳細(xì)和更全面的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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