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    新西蘭白兔CYP11A1基因的克隆、生物信息學(xué)分析及其對繁殖相關(guān)基因的影響

    2022-07-27 06:47:26白少成靳榮帥盧婷婷湯先偉趙博昊吳信生
    中國畜牧獸醫(yī) 2022年7期

    白少成,周 娟,靳榮帥,王 璠,盧婷婷,湯先偉,趙博昊,吳信生,陳 陽

    (1.揚(yáng)州大學(xué)動物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,揚(yáng)州 225000;2.江蘇省邳州市東方養(yǎng)殖有限公司,邳州 221300)

    細(xì)胞色素P450家族成員11A1(CYP11A1)是一種膽固醇側(cè)鏈裂解酶(P450scc),負(fù)責(zé)編碼細(xì)胞色素P450超家族的線粒體酶,可以催化膽固醇為孕烯醇酮,是類固醇激素合成的關(guān)鍵限速酶[1]。研究發(fā)現(xiàn),CYP11A1基因在人類孕期發(fā)生突變會影響胎兒的性別以及引發(fā)多囊卵巢綜合征、子宮癌等多種繁殖疾病[2]。CYP11A1基因在家禽卵泡發(fā)育過程中受激素的調(diào)控出現(xiàn)明顯的變化,Xu等[3]通過檢測鵝卵巢組織中CYP11A1基因的相對表達(dá)水平,發(fā)現(xiàn)該基因在高產(chǎn)揚(yáng)州鵝的卵巢組織中極顯著高于低產(chǎn)的浙東鵝。張艷萍[4]研究表明,在低產(chǎn)蛋量雞品種中CYP11A1基因mRNA相對表達(dá)水平顯著高于高產(chǎn)蛋雞,這可能是因?yàn)槁殉步M織類固醇激素的增加,孕酮在卵巢中的積累抑制了CYP11A1基因的表達(dá)。綜上所述,推斷CYP11A1基因在動物的繁殖性能中發(fā)揮著重要作用。

    顆粒細(xì)胞是卵泡中與卵母細(xì)胞相互作用的一類體細(xì)胞,其增殖與分化影響著卵泡的生長啟動、發(fā)育、黃體形成以及維持激素分泌的能力,是一種用來檢測卵巢功能的細(xì)胞[5]。有研究發(fā)現(xiàn),CYP11A1基因在禽類卵巢顆粒細(xì)胞中的表達(dá)受激素調(diào)節(jié)而影響卵泡的發(fā)育[6]。羥基類固醇17-β脫氫酶1(HSD17B1)編碼的蛋白可以催化雌酮生成雌二醇,雌二醇作為雌激素中活性最高的激素,其含量的高低影響卵泡顆粒細(xì)胞的質(zhì)量。研究表明,HSD17B1基因在豬卵巢顆粒細(xì)胞中的表達(dá)受轉(zhuǎn)錄因子p53的調(diào)控[7]。骨形態(tài)發(fā)生蛋白15(BMP15)是一種卵母細(xì)胞分泌因子,Su等[8]發(fā)現(xiàn),類固醇合成相關(guān)基因在BMP15基因敲除小鼠的卵丘顆粒細(xì)胞中異常降低,同時膽固醇合成減少,說明該基因可以調(diào)控卵泡類固醇激素的合成。促卵泡刺激素受體(FSHR)作為卵巢中調(diào)控促卵泡素(FSH)生成的關(guān)鍵因子,其在促進(jìn)卵泡成熟、調(diào)控性激素分泌、維持性腺正常發(fā)育的過程中發(fā)揮著重要作用[9]。FSHR在雌性動物中的結(jié)合位點(diǎn)分布于顆粒細(xì)胞,且具有高度特異性,因此常被用于鑒定卵巢顆粒細(xì)胞[10]。因此,分析CYP11A1基因在卵巢顆粒細(xì)胞中對HSD17B1、BMP15、FSHR基因的調(diào)控作用,有助于揭示其在動物繁殖生理中的生物學(xué)功能。

    CYP11A1基因作為卵泡類固醇合成過程中的重要因子,其在兔卵巢顆粒細(xì)胞中的調(diào)控機(jī)制鮮見報道。本研究通過克隆新西蘭白兔CYP11A1基因并進(jìn)行生物信息學(xué)分析,構(gòu)建pcDNA3.1-CYP11A1過表達(dá)重組載體和siRNA-CYP11A1,分離并鑒定兔卵巢顆粒細(xì)胞,通過細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)在兔卵巢顆粒細(xì)胞中過表達(dá)和干擾CYP11A1基因的表達(dá),分析其與繁殖性能相關(guān)基因HSD17B1、BMP15和FSHR的關(guān)系,以驗(yàn)證該基因是否參與調(diào)控卵巢功能。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 動物 3只體重(3.00±0.24)kg、健康的4~6月齡性成熟新西蘭白兔母兔,由江蘇省南京市金陵種兔場提供。

    1.1.2 主要試劑 動物組織總RNA提取試劑盒(DP431)、無內(nèi)毒素質(zhì)粒小提中量(DP118)試劑盒均購自天根生化科技(北京)有限公司;HiScript Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis(+gDNA wiper)、ChamQ SYBR qPCR Master Mix、2×Phanta Max Master Mix以及ClonExpress Ⅱ One Step Cloning Kit均購自諾唯贊生物科技有限公司;pcDNA3.1(+)載體為揚(yáng)州大學(xué)動物遺傳資源實(shí)驗(yàn)室保存;TaKaRa MiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit、限制性內(nèi)切酶NheⅠ和XhoⅠ、大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞均購自寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司;Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑購自Invitrogen公司;Opti-MEM培養(yǎng)基、胎牛血清購自Gibco公司;DMEM/F12培養(yǎng)基購自HyClone公司;雙抗(青霉素-鏈霉素混合液,100×)、4%多聚甲醛固定液、Triton X-100均購自北京索萊寶科技有限公司;Anti-FSHR一抗和羊抗兔IgG H&L(FITC)二抗分別購自Affinity和Abcam公司。

    1.2 方法

    1.2.1CYP11A1基因克隆和pcDNA3.1-CYP11A1過表達(dá)重組載體構(gòu)建 根據(jù)GenBank中兔CYP11A1基因的序列,利用CE Design軟件設(shè)計(jì)含有NheⅠ和XhoⅠ酶切位點(diǎn)的一步克隆引物CDS-CYP11A1(表1),引物由北京擎科生物科技有限公司合成。以兔卵巢組織cDNA為模板,對CYP11A1基因CDS序列全長進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系50 μL:cDNA 2 μL,上、下游引物(10 μmol/L)各2 μL,2×Phanta Max Master Mix 25 μL,ddH2O補(bǔ)至50 μL。PCR反應(yīng)程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸3 min,共35個循環(huán);72 ℃延伸7 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,切取目的條帶用DNA凝膠回收試劑盒回收純化。膠回收純化后,在同源重組酶Exane?Ⅱ的作用下37 ℃反應(yīng)30 min進(jìn)行連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,并涂勻在含氨芐西林的LB固體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)14 h。次日,隨機(jī)挑選單克隆菌落,置于含氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基中,200 r/min振蕩12 h,利用無內(nèi)毒素質(zhì)粒小提中量試劑盒提取質(zhì)粒,由北京擎科新業(yè)有限公司進(jìn)行測序。

    1.2.2 系統(tǒng)進(jìn)化樹構(gòu)建 通過Mega 5.1軟件比對家兔(登錄號:XP_008251956.1)CYP11A1蛋白與雞(登錄號:NP_001001756.2)、豬(登錄號:NP_999592.1)、家鼠(登錄號:NP_001333716.1)、人(登錄號:ALQ33469.1)、牛(登錄號:AAI33390.1)、綿羊(登錄號:NP_001087258.1)、馬(登錄號:NP_001075990.1)、猩猩(登錄號:PNI37685.1)和犬(登錄號:XP_038298856.1)的相似性,構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

    1.2.3 CYP11A1生物信息學(xué)預(yù)測 用ProtParam在線軟件(https:∥web.expasy.org/cgi-bin/protparam/)[11]分析CYP11A1蛋白的氨基酸組成;用ProtScale在線軟件(https:∥web.expasy.org/cgi-bin/protscale/)[12]分析親/疏水性;用PSORT Ⅱ在線軟件(https:∥psort.hgc.jp/)[13]預(yù)測CYP11A1蛋白的亞細(xì)胞定位;用NetPhos在線軟件(http:∥www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)[14]預(yù)測磷酸化位點(diǎn);用CDD database在線軟件(https:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)[11]預(yù)測保守結(jié)構(gòu)域;用在線軟件SOPMA(https:∥npsa-prabi.ibcp.fr/)[15]預(yù)測蛋白的二級結(jié)構(gòu);用SWISS-MODEL在線軟件(https:∥swissmodel.expasy.org/)[16]預(yù)測蛋白的三級結(jié)構(gòu);用STRING數(shù)據(jù)庫(https:∥string-db.org/cgi/input.pl)[17]進(jìn)行CYP11A1蛋白互作分析。

    1.2.4 兔卵巢顆粒細(xì)胞的分離與鑒定 3只母兔每只大腿肌肉外側(cè)注射孕馬血清促性腺激素80 IU,6 h后以耳緣靜脈注射空氣法處死,立即采集卵巢組織并置于含雙抗的PBS中清洗。將卵巢置于含雙抗的DMEM/F12培養(yǎng)基中,用1 mL注射器針頭刺破卵泡,37 ℃沉降15 min,收集細(xì)胞液,用200目不銹鋼細(xì)胞篩過濾,濾液1 000 r/min離心5 min,棄上清,用DMEM/F12(含15%胎牛血清、1%雙抗)培養(yǎng)基吹打混勻細(xì)胞后接種到6孔板中,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育24 h,PBS清洗3遍,4%多聚甲醛室溫固定30 min;用PBS清洗3次,0.3% Trition X-100處理60 min;PBS洗3次,1% BSA室溫封閉60 min;PBS清洗3次,加入Anti-FSHR一抗(1∶250)4 ℃過夜孵育,用PBST清洗后加入山羊抗兔IgG(FITC,1∶2 000),37 ℃孵育60 min;用PBST清洗,加入DAPI染色10 min,置于熒光顯微鏡下觀察并拍照。

    1.2.5 過表達(dá)和干擾兔顆粒細(xì)胞中CYP11A1基因的表達(dá) 根據(jù)兔CYP11A1基因的CDS序列,由蘇州吉瑪基因股份有限公司設(shè)計(jì)并合成3對siRNA(siRNA-1、siRNA-2、siRNA-3)及其陰性對照(NC)(表2)。待顆粒細(xì)胞匯合度達(dá)到70%時接種到24孔板中,按照Lipofectamine 2000說明書進(jìn)行過表達(dá)和下調(diào)CYP11A1基因在顆粒細(xì)胞中的表達(dá)。用Opti-MEM稀釋pcDNA3.1-CYP11A1質(zhì)粒、pcDNA3.1(+)、3對siRNA、NC,分別與轉(zhuǎn)染試劑混合孵育15 min后,加到DMEM/F12培養(yǎng)的顆粒細(xì)胞中,培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞備用。

    表1 引物信息

    表2 siRNA信息

    1.2.6 實(shí)時熒光定量PCR檢測基因的表達(dá) Trizol法提取兔卵巢組織以及各轉(zhuǎn)染組顆粒細(xì)胞的總RNA并反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。根據(jù)GenBank中家兔CYP11A1基因及繁殖相關(guān)基因HSD17B1、FSHR、BMP15的mRNA序列,利用Primer-BLAST設(shè)計(jì)引物,引物信息見表1。引物均由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司合成。以GAPDH作為內(nèi)參基因,進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR。PCR反應(yīng)體系20 μL:cDNA 1 μL,上、下游引物(0.5 μmol/L)各0.4 μL,50 × ROX Reference Dye 0.4 μL,2 × ChamQ SYBR qPCR Master Mix 10 μL,ddH2O補(bǔ)至20 μL。PCR反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃變性10 s,60 ℃延伸30 s,共40個循環(huán)。熔解曲線:95 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 15 s。

    1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    在Excel中完成各類數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì),以2-△△Ct法計(jì)算基因相對表達(dá)量,用SPSS 25.0進(jìn)行獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。

    2 結(jié) 果

    2.1 CYP11A1基因克隆及表達(dá)載體的構(gòu)建

    1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果表明,CYP11A1基因克隆片段大小為1 557 bp(圖1A),與預(yù)期大小相符;將其克隆至pcDNA3.1(+)載體,挑取陽性克隆,提取質(zhì)粒后測序,所獲序列長1 557 bp。將兔CYP11A1與pCDNA3.1(+)載體連接,獲得pcDNA3.1-CYP11A1質(zhì)粒(圖1B)。通過BLAST比對測序結(jié)果與NCBI提供的CYP11A1基因序列,發(fā)現(xiàn)序列相似性達(dá)到100%。

    M1,DL2000 DNA Marker;1,CYP11A1基因PCR擴(kuò)增結(jié)果;M2,DL5000 DNA Marker;2,pcDNA3.1-CYP11A1雙酶切鑒定

    2.2 系統(tǒng)進(jìn)化樹構(gòu)建

    CYP11A1蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹結(jié)果顯示,雞形成獨(dú)立分支,家兔與豬、鼠、人、牛、綿羊、馬、猩猩和犬構(gòu)成另外一個分支,并與家鼠、人和猩猩的分子進(jìn)化距離最近,表明親緣關(guān)系最近(圖2)。

    圖2 CYP11A1蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹

    2.3 CYP11A1基因生物信息學(xué)分析

    2.3.1 基本理化性質(zhì) 利用ExPASy在線軟件對兔CYP11A1氨基酸序列進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),CYP11A1蛋白分子質(zhì)量為51 016.38 u,分子式為C2297H3546N636O648S18。應(yīng)用ProtParam在線軟件分析顯示,CYP11A1基因編碼518個氨基酸,其中含量最高的為亮氨酸(Leu,10.6%),其次為精氨酸(Arg,7.6%)、纈氨酸(Val,7.4%)、丙氨酸(Ala,7.2%)(表3)。Protparam在線軟件預(yù)測顯示,CYP11A1蛋白理論等電點(diǎn)為7.40,正負(fù)電荷殘基總數(shù)均為50個,脂肪族氨基酸指數(shù)為82.16,不穩(wěn)定性指數(shù)為39.54,總平均親水性―0.339。氨基酸序列中親水性殘基的數(shù)量多于疏水性殘基(圖3),說明CYP11A1蛋白為親水性蛋白。

    表3 兔CYP11A1蛋白氨基酸組成

    圖3 兔CYP11A1蛋白親水性分析

    2.3.2 磷酸化位點(diǎn)和功能結(jié)構(gòu)域預(yù)測 NetPhos在線軟件預(yù)測顯示,CYP11A1蛋白有40個潛在磷酸化位點(diǎn),包括22個絲氨酸(Serine)、13個蘇氨酸(Threonine)和5個酪氨酸(Tyrosine)(圖4)。亞細(xì)胞定位預(yù)測結(jié)果顯示,CYP11A1蛋白主要分布于線粒體(52.2%),其次為細(xì)胞核(13.0%)和細(xì)胞質(zhì)(17.4%)(表4)。利用CDD工具預(yù)測發(fā)現(xiàn),CYP11A1蛋白含有1個P450家族的結(jié)構(gòu)域(圖5)。

    圖4 兔CYP11A1蛋白磷酸化位點(diǎn)預(yù)測

    表4 兔CYP11A1蛋白亞細(xì)胞定位預(yù)測

    圖5 兔CYP11A1蛋白功能結(jié)構(gòu)域預(yù)測

    2.3.3 二級結(jié)構(gòu)和三級結(jié)構(gòu)預(yù)測 利用ExPASy軟件預(yù)測CYP11A1蛋白二級結(jié)構(gòu)顯示,該蛋白包含α-螺旋(48.31%)、無規(guī)則卷曲(40.22%)、延伸鏈(7.42%)及β-轉(zhuǎn)角(4.04%)(圖6)。三級結(jié)構(gòu)為彎曲螺旋狀(圖7),具體組成與二級結(jié)構(gòu)一致。

    線條由長到短分別為α-螺旋、延伸鏈、β-折疊和無規(guī)則卷曲

    圖7 兔CYP11A1蛋白三級結(jié)構(gòu)預(yù)測

    2.2.4 蛋白互作分析 根據(jù)STRING數(shù)據(jù)庫分析得出,與CYP11A1蛋白互作的蛋白主要包括類固醇激素合成急性調(diào)節(jié)蛋白(STAR)、類固醇21-單加氧酶(CYP21A2)、類固醇17α單加氧酶(CYP17A1)和鐵氧化還原蛋白1(FDX1)等(圖8)。

    圖8 兔CYP11A1蛋白互作分析

    2.3 兔卵巢顆粒細(xì)胞的分離與鑒定

    分離的顆粒細(xì)胞培養(yǎng)24 h貼壁并呈梭形(圖9A),傳至第3代出現(xiàn)分化,細(xì)胞由梭形拉伸至多邊形,且單個細(xì)胞面積變大(圖9B)。免疫熒光鑒定發(fā)現(xiàn),兔顆粒細(xì)胞胞質(zhì)呈現(xiàn)綠色熒光(圖10),表明兔顆粒細(xì)胞表達(dá)FSHR,可用于后續(xù)試驗(yàn)。

    圖9 兔原代顆粒細(xì)胞(A)和第3代顆粒細(xì)胞(B)形態(tài)(40×)

    A,明場圖;B,熒光圖;C,DAPI染色;D,合并圖

    2.4 過表達(dá)和干擾CYP11A1基因?qū)Ψ敝诚嚓P(guān)基因表達(dá)的影響

    與pcDNA3.1組相比,pcDNA3.1-CYP11A1組CYP11A1、HSD17B1和FSHR基因的相對表達(dá)量均極顯著增加(P<0.01),BMP15基因的相對表達(dá)量顯著增加(P<0.05)(圖11);干擾CYP11A1基因的表達(dá)后,其在顆粒細(xì)胞中的相對表達(dá)水平顯著或極顯著降低(P<0.05;P<0.01)(圖12),選取效果最為顯著的siRNA-1進(jìn)行后續(xù)處理。siRNA-1干擾CYP11A1基因的表達(dá)后,HSD17B1基因的相對表達(dá)量顯著下降(P<0.05),BMP15和FSHR基因的相對表達(dá)量均極顯著下降(P<0.01)(圖13)。

    *,差異顯著(P<0.05);**,差異極顯著(P<0.01)。圖13同

    與NC組相比,*,差異顯著(P<0.05);**,差異極顯著(P<0.01);無*,差異不顯著(P>0.05)

    圖13 干擾CYP11A1基因?qū)Ψ敝诚嚓P(guān)基因的影響

    3 討 論

    CYP11A1基因編碼的膽固醇側(cè)鏈裂解酶是一種線粒體酶,這種酶可以水解膽固醇側(cè)鏈生成孕烯醇酮,而孕烯醇酮會轉(zhuǎn)化成類固醇激素,從而影響性腺激素的合成[18]。本研究發(fā)現(xiàn),CYP11A1是1個相對穩(wěn)定的親水性蛋白,且磷酸化位點(diǎn)較為豐富,說明其可能與細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)或細(xì)胞周期有關(guān)[19]。CDD軟件預(yù)測發(fā)現(xiàn),CYP11A1包含1個亞鐵血紅素蛋白超家族結(jié)構(gòu)域P450,有研究報道該家族在生物合成和抗氧化方面具有重要作用[20]。蛋白互作分析顯示,CYP11A1與STAR、FDX1、CYP21A2以及CYP17A1蛋白聯(lián)系密切,而此類蛋白大多都與類固醇激素合成有關(guān)[21-22]。因此,CYP11A1作為類固醇合成激素中的第一個關(guān)鍵限速酶,其表達(dá)量的高低可能會影響其他蛋白的表達(dá)。系統(tǒng)進(jìn)化樹分析在一定程度上可以反映物種間的親緣關(guān)系,本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),兔CYP11A1蛋白與豬、鼠、人、牛、綿羊、馬、猩猩和狗構(gòu)成同一分支,說明該蛋白在這些物種進(jìn)化過程中相對保守。以上結(jié)果說明,CYP11A1是穩(wěn)定、親水、相對保守且具有抗氧化和類固醇激素合成功能的蛋白。

    顆粒細(xì)胞是卵巢的重要功能細(xì)胞,它可以在FSH的作用下分泌雌激素,并通過卵巢縫隙向卵母細(xì)胞輸送營養(yǎng)物質(zhì)[23]。本研究成功分離并鑒定了兔的卵巢顆粒細(xì)胞。顆粒細(xì)胞作為卵泡內(nèi)主要的類固醇激素分泌細(xì)胞,在卵泡發(fā)育過程中起著重要作用。已知HSD17B1基因負(fù)責(zé)調(diào)控人和嚙齒類動物體內(nèi)性激素的合成,其可以通過脫氫酶將3α轉(zhuǎn)化為雄激素,而雄激素可以影響哺乳動物卵泡的發(fā)育和閉鎖,在卵泡發(fā)育過程中起重要作用[24]。BMP家族可以誘導(dǎo)骨組織形成、控制動物生長發(fā)育,在生殖系統(tǒng)中具有十分重要的作用[25]。BMP15基因作為卵泡分泌生長因子,在卵泡早期發(fā)育過程扮演重要角色[26]。研究表明,在小鼠中敲除BMP15基因后,導(dǎo)致其繁殖力低下,排卵率和受精率顯著降低[27]。FSHR基因是FSH的受體,由于FSH無法直接穿透細(xì)胞膜,所以需要借助FSHR傳遞到靶細(xì)胞內(nèi)[28],表明FSHR基因的表達(dá)水平可以直接調(diào)控FSH的活性,進(jìn)而影響激素生成、刺激卵泡發(fā)育和成熟等。綜上所述,HSD17B1、BMP15和FSHR基因的表達(dá)影響著卵巢發(fā)育的過程。本研究結(jié)果表明,CYP11A1基因可以正向調(diào)控HSD17B1、BMP15和FSHR基因的表達(dá),說明CYP11A1基因可以影響繁殖性能相關(guān)基因的表達(dá)水平。因此,CYP11A1基因可能為調(diào)控母兔卵巢繁殖性能的新靶點(diǎn)。

    4 結(jié) 論

    本研究克隆了新西蘭白兔CYP11A1基因,其CDS全長為1 557 bp,編碼518個氨基酸。生物信息學(xué)分析表明,CYP11A1是穩(wěn)定、親水、相對保守且具有抗氧化和類固醇激素合成功能的蛋白。在兔卵巢顆粒細(xì)胞過表達(dá)CYP11A1基因后,HSD17B1、BMP15和FSHR基因的表達(dá)水平顯著上調(diào),而干擾CYP11A1基因可顯著下調(diào)這些基因的表達(dá)。說明CYP11A1基因可以影響繁殖相關(guān)基因的表達(dá),提示其在母兔的繁殖過程中可能發(fā)揮作用。

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