趙雨薇,戴月英,甄艷杰,李 煒,沈麗霞
(河北北方學院藥學系,河北省神經(jīng)藥理學重點實驗室,河北 張家口 075000)
阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD),以漸進性記憶缺失和行為異常為主要臨床表現(xiàn)的中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病[1]。引起AD的機制尚不明確,主要存在諸如氧化應激、線粒體損傷、Aβ毒性等假說,Aβ沉積、神經(jīng)炎癥的發(fā)生和氧化應激等均會引起線粒體損傷[2],線粒體因其能控制細胞的能量狀態(tài)和細胞凋亡,被認為在調(diào)節(jié)衰老和與年齡相關(guān)的神經(jīng)元變性中發(fā)揮中央細胞器作用[3]。線粒體電子因在衰老組織中的運輸效率較低,損害ATP的合成從而導致氧化劑產(chǎn)生增加[4],這種變化可能引起細胞凋亡而致大腦衰老,造成認知功能喪失[5]。以往的研究表明[6],Aβ誘導破壞膜的性質(zhì)和改變線粒體的動力學,引發(fā)線粒體膜電位的崩潰,誘導釋放因子透過線粒體膜于細胞質(zhì)中,發(fā)生凋亡級聯(lián)反應,促進AD的發(fā)生和發(fā)展[7]。
槲皮素(quercetin,Que)結(jié)構(gòu)與雌二醇類似,是一種天然的植物雌激素,在改善心血管疾病和神經(jīng)系統(tǒng)方面有一定作用[8]。課題組前期研究表明,Que可通過雌激素受體介導信號通路的激活,減少Aβ25-35毒性損傷的PC12細胞凋亡[9]。根據(jù)往期實驗結(jié)果,本實驗繼續(xù)采用20 μmol·L-1Aβ25-35毒性損傷的PC12細胞作為AD體外模型,17β-雌二醇(17β-estradiol,17β-E2)與50 μmol·L-1金雀異黃素(genistein,Gen)作為陽性對照,進一步探討Que通過雌激素受體介導線粒體途徑的機制而抑制Aβ25-35毒性損傷引起的細胞凋亡。
1.1.1細胞株 PC12細胞,中國科學院昆明細胞庫。
1.1.2藥物與試劑 槲皮素(100081-201610)和金雀異黃素(111704-201703)購于中國藥品生物制品檢定研究所;Aβ25-35(Y0044)購于北京博奧森;Rhodamine 123(C2007)購于碧云天生物技術(shù);Bradford蛋白濃度測定試劑盒(BCA法)(BL521A)購于Biosharp公司;琥珀酸脫氫酶(SDH)測試盒(A022)和超微量Na+,K+-ATP酶測試盒(A070-2)購于南京建成生物工程研究所;CyTM3-conjugated Affini Pure Goat Anti-Mouse IgG(101887)購于Jackson Immuno Research 公司;辣根過氧化物酶標記羊抗鼠二抗 IgG(H+L)(4103945)購于 Novus Biologicals 公司;β-action(SC47778)購于聯(lián)科生物公司;17β-雌二醇(ab120657)、雌激素受體完全拮抗劑ICI182,780(ab120131)、anti-Estrogen Receptor alpha antibody(ab32063)、anti-Estrogen Receptor beta antibody(ab3576)、Anti-Bcl-2 antibody(ab59348)、Anti-Bax antibody(ab182733)、Anti-active caspase-3 antibody(ab49822)、重組Anti-Cytochrome C antibody(ab133504)購于美國Abcam公司;
1.1.3儀器 CO2培養(yǎng)箱(Thermo 公司);超速冷凍離心機(Sigma公司);激光共聚焦顯微鏡(OLYMPUS公司);熒光倒置顯微鏡(Nikon公司);體視學顯微鏡(Leica公司);多功能酶標儀(Tecan公司);化學發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)(Protein Simple公司)。
1.2.1線粒體膜電位的測定 細胞以每孔1×104的密度接種于培養(yǎng)皿24 h后。實驗分組為Control組、Aβ25-35毒性損傷組、Aβ25-35與17β-E2、Gen、Que(40、60、80 μmol·L-1)分別共孵育組,給藥24 h后,加入37 ℃預溫育的Rhodamine 123染色液1 mL,作用20 min后;DAPI復染,使用激光共聚焦顯微鏡進行觀察拍照。
1.2.2SDH的測定 細胞以1×108L-1密度將接種于6孔細胞培養(yǎng)板中,實驗分組為Control組、Aβ25-35毒性損傷組、Aβ25-35與17β-E2、Gen、Que(40、60、80 μmol·L-1)分別共孵育組和雌激素受體完全拮抗毒性損傷組。按說明書提取分離各組線粒體,獲取各組線粒體懸液,按照SDH測試盒測定線粒體SDH活力。
1.2.3Na+,K+-ATP 酶活力的測定 細胞以1×108L-1密度將接種于6孔細胞培養(yǎng)板中,實驗分組同“1.2.2”,按照Na+,K+-ATP酶測試盒測定線粒體Na+,K+-ATP酶活力。
1.2.4Western blot檢測相關(guān)蛋白 細胞分組同“1.2.2”,提取各組細胞總蛋白,BCA法定量各組蛋白,制膠,上樣,BIO-RAD凝膠電泳和轉(zhuǎn)膜,室溫封閉液封閉2 h后,加入一抗 β-actin(1 ∶500)、雌激素受體 α / β(1 ∶500)、Bcl-2(1 ∶1 000)、Bax(1 ∶2 000)、caspase-3(1 ∶600)、Cytochrome C(1 ∶5 000),4 ℃孵育過夜。TBST進行清洗3次(每次10 min)。室溫孵育二抗(Goat anti-mouse IgG/HRP,1 ∶4 000)2 h。TBST 進行清洗3次(每次10 min),使用ECL曝光顯影后,分析各組條帶灰度值。
2.1 Que 對線粒體膜電位的影響與正常對照組相比,毒性損傷組熒光較強,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01);與毒性損傷組相比,Aβ25-35+17β-E2、Aβ25-35+Gen、Aβ25-35+Que(60 μmol·L-1)組熒光強度均明顯降低(P<0.01)(Fig 1A,B)。表明Que 可改善Aβ25-35毒性損傷造成的PC12細胞內(nèi)線粒體膜電位降低,作用與陽性藥17β-E2和Gen效果相似。
Fig 1 Effect of Que and Aβ25-35 on mitochondrial membrane potential in PC12 cells(×600)A:Fluorescence of mitochondrial membrane potential of PC12 cells; B: Quantification of the mitochondrial membrane potential mean fluorescent n=4). **P<0.01 vs control; ##P<0.01 vs Aβ25-35
2.2.1Que對線粒體SDH酶活力的影響 如Fig 2A中所示,與正常組相比,Aβ25-35毒性損傷組 SDH 活力水平明顯減少(P<0.01)。低中高劑量濃度的 Que(40、60和80 μmol·L-1)和 Aβ25-35共孵育24 h后的細胞 SDH 活力水平與毒性損傷組相比明顯增加(P<0.01)。提示Que可提高PC12損傷細胞的線粒體琥珀酸脫氫酶活力,效果與17β-E2和Gen相似。
Fig 2 Effect of Que on SDH activity on PC12 n=4)A: Effect of Que on PC12 cell SDH activity injured by Aβ25-35 toxicity. B: Effect of Que on PC12 cell SDH activity pretreated with ICI182,780. *P<0.05,**P<0.01 vs control; ##P<0.01 vs Aβ25-35; △△P<0.01 vs Aβ25-35+Que(60 μmol·L-1)
含有ICI182,780抑制劑預處理組中,Aβ25-35+ICI182,780+Que組細胞的線粒體琥珀酸脫氫酶活力與Aβ25-35+Que相比明顯被抑制(P<0.01)(Fig 2B),表明在Que提高PC12損傷細胞的線粒體 SDH 酶活力過程中,具有ER受體通路的參與。
2.2.2Que對線粒體Na+,K+-ATP酶活力影響 如Fig 3A中所示,Aβ25-35+Que(40、60和80 μmol·L-1)組Na+,K+-ATP活力分別為(1.38±0.03)U·mgprot、(1.71±0.04)U·mgprot和(1.28±0.05)U·mgprot,與毒性損傷組相比差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。結(jié)果表明,Que 可提高毒性損傷的PC12細胞內(nèi)線粒體Na+,K+-ATP酶活力,效果與17β-E2和Gen相似。
Fig 3 Effect of Que on Na+,K+-ATPase activity on PC12 n=4)A: Effect of Que on PC12 cell Na+,K+-ATPase activity injured by Aβ25-35 toxicity. B: Effect of Que on PC12 cell Na+,K+-ATPase activity pretreated with ICI182,780. **P<0.01 vs control; ##P<0.01 vs Aβ25-35; △△P<0.01 vs Aβ25-35+Que(60 μmol·L-1)
含有ICI182,780抑制劑預處理組中,Aβ25-35+ICI182,780+Que 組細胞線粒體的Na+,K+-ATP 酶活力與Aβ25-35+Que組相比被明顯抑制(P<0.01)(Fig 3B),表明ER受體通路的阻斷影響了Que 對 Na+,K+-ATP酶活力的保護。
2.3 Western blot 檢測 ERα、ERβ 以及 Bcl-2、Bax、active-caspase-3 與 Cytochrome C蛋白表達與正常對照組相比,毒性損傷組明顯下調(diào)ERα表達(P<0.01),陽性藥(17β-E2、Gen)和Que分別與Aβ25-35共同孵育后,均明顯升高了ERα表達(P<0.01),而毒性損傷組和藥物(17β-E2、Gen和Que)+Aβ25-35共同孵育后ERβ蛋白組間表達差異無顯著性(P>0.05)(Fig 4A,B,C)。藥物(17β-E2、Gen和Que)+Aβ25-35組與毒性損傷組相比,上調(diào)了Bcl-2表達(P<0.05)(Fig 5A,B),下調(diào)Bax、active-caspase-3 與Cytochrome C蛋白的表達(P<0.05)(Fig 5A、C,F(xiàn)ig 5A、E,F(xiàn)ig 5A、F),提高了Bcl-2 / Bax蛋白表達比率(P<0.01)(Fig 5A、D)。使用ICI182,780抑制劑進行干預進一步探討Que神經(jīng)保護作用機制。結(jié)果發(fā)現(xiàn),Aβ25-35+Que(60 μmol·L-1)組與毒性損傷組相比,Bcl-2蛋白表達上調(diào)(P<0.01)(Fig 6A,B),Bax、active-caspase-3與Cytochrome C蛋白表達下調(diào)(P<0.01)(Fig 6A、C,F(xiàn)ig 6A,E,F(xiàn)ig 6A,F(xiàn)),且Bcl-2 / Bax比率上升(P<0.01)(Fig 6A、D);而ICI182,780+Aβ25-35組和ICI182,780+Aβ25-35+Que組與毒性損傷組相比線粒體凋亡關(guān)鍵蛋白表達差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。提示Que可通過激活經(jīng)典雌激素受體,抑制線粒體凋亡途徑關(guān)鍵蛋白的表達。
Fig 4 Effect of Que and Aβ25-35 on protein levels of ERα and ERβ in PC12 n=3)A: Detection of protein levels of ERα and ERβ by Western blot; B: Quantification analysis of ERα level; C: Quantification analysis of ERβ level. *P<0.05 vs control; ##P<0.01 vs Aβ25-35
Fig 5 Effect of Que and Aβ25-35 on protein levels of Bcl-2, Bax, active-caspase 3 and cytochrome C in PC12 n=3)1: Control; 2:Aβ25-35; 3:17β-E2; 4: Gen; 5: Que/40 μmol·L-1; 6: Que/60 μmol·L-1; 7: Que/80 μmol·L-1. A: Detection of protein levels of Bcl-2, Bax, active-caspase 3 and Cytochrome C by Western blot; B: Quantification analysis of Bcl-2 level; C: Quantification analysis of Bax level; D: Quantification analysis of Bcl-2/Bax level; E: Quantification analysis of active-caspase- 3 level; F: Quantification analysis of cytochrome C level. *P<0.05,**P<0.01 vs control; #P<0.05,##P<0.01 vs Aβ25-35
Fig 6 Effect of Que and Aβ25-35 on protein levels of Bcl-2, Bax, active-caspase- 3 and cytochrome C in PC12 cells pretreated with ICI182,7801: Aβ25-35/20 μmol·L-1; 2: Que/60 μmol·L-1; 3: ICI/1 μmol·L-1. A: Detection of protein levels of Bcl-2, Bax, active-caspase- 3 and cytochrome C by Western blot; B: Quantification analysis of Bcl-2 level; C: Quantification analysis of Bax level; D: Quantification analysis of Bcl-2/Bax level; E: Quantification analysis of active-caspase- 3 level; F: Quantification analysis of cytochrome C level. *P<0.05,**P<0.01 vs control; ##P<0.01 vs Aβ25-35;△△P<0.01 vs Aβ25-35+Que(60 μmol·L-1)
大量研究表明,雌激素通過多種機制發(fā)揮神經(jīng)保護作用,但由于雌激素的不良反應造成臨床應用存在爭議,研究探討雌激素神經(jīng)保護作用的靶點,進一步認識神經(jīng)系統(tǒng)疾病發(fā)生與發(fā)展機制,開發(fā)防治神經(jīng)退行性疾病的雌激素受體調(diào)節(jié)劑,從而有可能為臨床上AD等神經(jīng)系統(tǒng)疾病的防治提供新的策略和思路。越來越多的證據(jù)表明,AD患者腦內(nèi)細胞淀粉樣蛋白沉積出現(xiàn)之前,線粒體功能障礙是認知老化和AD發(fā)病的早期事件,線粒體損傷又進一步誘導細胞凋亡和神經(jīng)元丟失,加劇AD的進展。減輕線粒體功能障礙并提供神經(jīng)保護作用的藥物有望用于AD治療。因此,改善線粒體損傷成為AD防治需要關(guān)注的問題。我們實驗研究揭示了Que可通過介導ERα作用于線粒體靶點起到神經(jīng)保護作用,從分子角度為 Que 在治療AD和線粒體途徑凋亡相關(guān)的神經(jīng)退行性疾病的潛在應用提供實驗依據(jù)。
由線粒體主導的細胞凋亡過程中關(guān)鍵環(huán)節(jié)為Cytochrome C的釋放,當細胞受到外界刺激產(chǎn)生凋亡信號,促進Bax過表達,并移位到線粒體膜上,打破線粒體膜電位的平衡,建立釋放因子通道,釋放Cytochrome C,與胞質(zhì)中caspase-9前體結(jié)合形成凋亡體,增強caspase-3活性,促進細胞凋亡。而激活Bcl-2可以抑制各種刺激引起的caspase-3凋亡途徑和Cytochrome C的釋放,并且Bcl-2 / Bax表達比值與線粒體膜通透性成正相關(guān)。本實驗表明,Que能夠明顯促進Bcl-2蛋白表達,升高線粒體膜電位,下調(diào)Bax、active-caspase-3的表達,減少Cytochrome C的釋放,調(diào)控Aβ25-35造成的細胞凋亡。另外,實驗發(fā)現(xiàn)Que還可提高毒性損傷的細胞內(nèi)線粒體琥珀酸脫氫酶(SDH)活力和線粒體Na+,K+-ATP酶活力,保證胞內(nèi)能量代謝正常運行,維持線粒體環(huán)境穩(wěn)態(tài)。
研究發(fā)現(xiàn)Bcl-2基因序列上含有雌激素反應位點,雌激素抑制細胞凋亡作用可能通過與ER結(jié)合直接促進Bcl-2的表達[10]。有證據(jù)已表明雌激素可通過介導ER調(diào)節(jié)線粒體功能障礙,以線粒體為靶向抑制H2O2誘導的神經(jīng)元凋亡[11]。為探討Que保護PC12細胞免受Aβ25-35造成的線粒體損傷是否通過介導雌激素受體,采用Aβ25-35毒性損傷處理PC12,Western blot 檢測到毒性損傷組ERα表達與對照組相比明顯下調(diào),Que、17β-E2、Gen和Aβ25-35分別共同孵育后,與Aβ25-35毒性損傷組相比ERα表達量明顯升高,ERβ 表達量組間無差異,表明Que可通過與17β-E2、Gen相似的保護作用機制,減少Aβ25-35毒性損傷造成的細胞凋亡;加入ICI182,780抑制劑進行干預后發(fā)現(xiàn)ICI182,780預孵育可減弱Que的抗凋亡作用,以及扭轉(zhuǎn)Que對線粒體功能的保護和線粒體凋亡相關(guān)蛋白表達的影響。