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    下調(diào)DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA 抗心房顫動大鼠心肌纖維化的機(jī)制研究

    2022-07-03 03:58:10楊淑玲谷云飛楊定憲高愛玲尚偉陳瀅伊張光
    中國循環(huán)雜志 2022年6期
    關(guān)鍵詞:血清型心房房顫

    楊淑玲,谷云飛,楊定憲,高愛玲,尚偉,陳瀅伊,張光

    心房顫動(房顫)是常見的室上性心律失常,發(fā)生率較高,嚴(yán)重時可導(dǎo)致心力衰竭[1-2]。其病因復(fù)雜,與心房肌電重構(gòu)、結(jié)構(gòu)重塑和自主神經(jīng)失調(diào)有關(guān);其中心肌纖維化導(dǎo)致的結(jié)構(gòu)重塑是房顫重要的病理生理因素[3]。心房炎癥與心肌纖維化密切相關(guān)[4-5]。

    絲裂原激活的蛋白激酶(MAPK)通路的激活在心房纖維化中起著核心作用[6],p38 絲裂原激活的蛋白激酶(p38 MAPK)/核因子κB(NF-κB)通路是體內(nèi)重要的炎癥通路,與房顫和不良的心房纖維化有關(guān)[7]。

    據(jù)報道,長鏈非編碼RNA(lncRNA)在結(jié)構(gòu)重塑和肌電重構(gòu)中起著重要作用,如lncRNA H19[8]和lncRNA MIAT[9]與心臟纖維化相關(guān)。有報道稱,DNA損傷激活的長鏈非編碼RNA(lncRNA NORAD)在急性心肌梗死中上調(diào),可促進(jìn)心肌纖維化和細(xì)胞凋亡,敲低其表達(dá)可減少梗死面積和纖維化改善病情[10];還可抑制高糖誘導(dǎo)的人腎小球系膜細(xì)胞纖維化和心肌細(xì)胞凋亡[11-12]。然而,lncRNA NORAD 在房顫誘導(dǎo)的心肌纖維化中的作用仍未明確。因此,本研究旨在探究lncRNA NORAD 對房顫大鼠心肌纖維化的影響及潛在機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物

    SPF 級雄性SD 大鼠48 只,體質(zhì)量200~220 g,購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司。

    將大鼠飼養(yǎng)在12 h 光照間隔12 h 黑暗、溫度(23±2)℃、相對濕度45%~60%的房間中,自由飲食和攝水。

    1.2 藥品、試劑及儀器

    乙酰膽堿(ACh)、氯化鈣(CaCl2)(Sigma-Aldrich 公司,美國);重組腺相關(guān)病毒血清型9(rAAV9)載體含用于沉默DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA 的小干擾RNA(rAAV9-siNORAD)基因及其陰性對照(rAAV9-NC)、實時熒光定量PCR引物(GenePharm 公司,中國);p38 MAPK 抑制劑SB203580(Med Chem Express 公司,美國);RIPA裂解液、BCA 試劑盒(碧云天生物科技公司,中國);Masson 三色染色試劑盒(Solarbio 公司,中國);總RNA 提取試劑盒(天根生化科技有限公司,中國);雙鏈DNA 染料試劑(SYBR Green)(上海聯(lián)邁生物工程有限公司,中國);肌酸激酶同工酶(CKMB)、心肌肌鈣蛋白I(cTnI)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素-6(IL-6)ELISA 檢測試劑盒(上海酶聯(lián)生物科技有限公司,中國);兔源一抗絲裂原活化蛋白激酶激酶6(MKK6)、p38MAPK、磷酸化p38MAPK(p-p38MAPK)、NF-κB p65、磷酸化NF-κB p65(p-NF-κB p65)、β-肌動蛋白(β-actin)及二抗辣根過氧化酶(HRP)標(biāo)記的山羊抗兔IgG(Abcam 公司,英國)。

    NanoDrop 2 000 分光光度計(Thermo Scientific公司,美國);ABI 7 500 實時熒光定量PCR 儀系統(tǒng)(美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司);動物心電圖系統(tǒng)(Nasiff Associates 公司,美國);iMark680 多功能酶標(biāo)儀、蛋白轉(zhuǎn)膜裝置(Bio-Rad 公司,美國);BX61 電動顯微鏡(Olympus 公司,日本)。

    1.3 方法

    分組及建模:rAAV9-siNORAD 及其陰性對照(rAAV9-NC)用于實驗干預(yù)。SD 大鼠隨機(jī)分為對照組、房顫組、rAAV9-NC 組、rAAV9-siNORAD 組、SB203580 組 和rAAV9-siNORAD+SB203580 組,每組8 只。除對照組外,各組大鼠每天經(jīng)尾靜脈以1 ml/kg 的劑量注射ACh-CaCl2混合液(60 μg/ml ACh和10 mg/ml CaCl2),共7 d,誘導(dǎo)建立房顫模型[13]。于實驗前、建模后觀察并記錄大鼠的心電圖,若房顫大鼠出現(xiàn)P 波消失,代替為小f 波,頻率在350~600 次/min 的典型房顫心電圖,說明大鼠房顫模型制備成功[13]。

    建模后,rAAV9-NC 組 和rAAV9-siNORAD組大鼠尾靜脈分別注射rAAV9-NC 和rAAV9-siNORAD(2×1011個載體基因組顆粒/每只大鼠);SB203580 組大鼠給予1 mg/kg 的SB203580 尾靜脈注射;rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠經(jīng)尾靜脈注射1 mg/kg 的SB203580 和rAAV9-siNORAD,1 次/d,連續(xù)14 d。

    心電圖記錄與分析:實驗前和建模后,戊巴比妥鈉(40 mg/kg)腹腔注射使大鼠麻醉。將12 導(dǎo)聯(lián)心電圖的四肢導(dǎo)聯(lián)插入動物的四肢中,連接心電圖儀(紙速50 mm/s,電壓10 mm/mV),記錄各組大鼠心電圖變化,記錄并排除非竇性心律。實驗第22 d,再次對大鼠進(jìn)行心電圖測試,記錄房顫的發(fā)生率和持續(xù)時間。

    檢測血清心肌酶和炎性因子水平:心電圖檢測完成后,腹主動脈取血,靜置后以1 617 g 離心15 min,分離血清,按照ELISA 檢測試劑盒說明書的操作檢測CK-MB、cTnI、TNF-α、IL-6 水平[14]。具體操作為:將50 μl 的大鼠血清加入包被的96 孔板的每個孔中,然后在37℃下孵育60 min。反應(yīng)結(jié)束后,用洗滌緩沖液洗滌孔3 次,然后在每個孔中加入HRP 標(biāo)記的抗體,37℃孵育30 min。棄去孔內(nèi)液體,用洗滌緩沖液洗滌孔3 次,再向每孔加入底物A、B 各50 μl,混勻后37℃避光溫育10 min。最后加入終止緩沖液,在450 nm 波長處測量光密度(OD),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算CK-MB、cTnI、TNF-α 和IL-6 水平。

    Masson 染色檢測心房組織纖維化:取大鼠心臟,用磷酸鹽緩沖液(PBS)(主要成分為Na2HPO4、KH2PO4、NaCl 和KCl,pH 7.4)洗滌血液。分離左心房組織,并分為三部分,兩部分于-80℃冰箱保存,分別用于實時熒光定量PCR 和蛋白免疫印跡(Western blot)實驗;最后一部分用4%多聚甲醛固定,石蠟包埋、切片,進(jìn)行Masson 三色染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察膠原蛋白沉積,計算心房膠原容積分?jǐn)?shù)(CVF)[15]。膠原纖維染成藍(lán)色。每個樣品選擇三個視野,用Image-Pro Plus 6.0 軟件分析結(jié)果。CVF(%)=心肌膠原纖維面積/所測視野面積×100%。

    實時熒光定量PCR 檢測心房組織lncRNA NORAD、Ⅰ型膠原(COL1-A1)和Ⅲ型膠原(COL3-A1)mRNA 表達(dá):取-80 ℃冰箱保存的部分左心房組織。用總RNA 提取試劑盒提取總RNA。使用分光光度計對總RNA 進(jìn)行定量檢測。按照試劑盒說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。收集cDNA 用于實時熒光定量PCR 擴(kuò)增[16]。反應(yīng)體系(20 μl):cDNA(200 ng/μl)2 μl,SYBR?Premix Ex TaqTM(2×)10 μl,上下游引物(引物序列見表1)各0.4 μl,ddH2O 7.2 μl。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性10 min;95℃變性10 s,60℃退火60 s,72℃延伸60 s,進(jìn)行40個循環(huán)。使用2-ΔΔCT方法以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)作為內(nèi)參對照計算目的基因的相對表達(dá)量。

    表1 引物序列及產(chǎn)物長度

    Western blot 檢測心房組織p38 MAPK/NF-κB通路相關(guān)蛋白表達(dá):剩余左心房組織在RIPA 裂解液中裂解,4℃,12 000 g 離心15 min。收集上清液,BCA 法測定蛋白質(zhì)濃度。取等量蛋白樣品通過SDS-PAGE 電泳分離,并轉(zhuǎn)移到PVDF 膜上。然后,將膜封閉并與一抗(MKK6、p38 MAPK、p-p38 MAPK、NF-κB p65、p-NF-κB p65、β-actin,1:1 000)在4℃下孵育過夜。次日將膜用含Tween-20的TBST 緩沖液(主要成分為50 mmol/L Tris、150 mmol/L NaCl、0.05% Tween-20,pH 8.0)洗滌3 次,每次10 min,然后在室溫下與HRP 標(biāo)記的羊抗兔IgG 二抗(1:4 000)在黑暗中孵育1 h。最后,增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光法(ECL)顯色,凝膠成像儀觀察蛋白條帶并拍照,分析結(jié)果,β-actin 為內(nèi)參對照。

    1.4 統(tǒng)計學(xué)方法

    數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism 8.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,計量資料以均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。多組間比較采用單因素方差分析,組間多重比較行LSD-t檢驗;計數(shù)資料以例(%)表示,差異比較行卡方檢驗。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組大鼠房顫的發(fā)生率和持續(xù)時間的比較

    心電圖結(jié)果顯示,實驗前各組大鼠的心律正常;建模后,對照組大鼠可觀察到規(guī)則的P 波,心律正常;房顫大鼠可觀察到P 波消失,出現(xiàn)大小不等、不規(guī)則的f 波,R-R 間期變化不規(guī)則,提示成功建立了房顫模型(圖1)。實驗結(jié)束后,與房顫組相比,rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組大鼠房顫的發(fā)生率均降低,且持續(xù)時間均明顯縮短(P均<0.05);與rAAV9-siNORAD 組 和SB203580 組相比,rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠房顫的發(fā)生率均降低,持續(xù)時間明顯縮短(P均<0.05,表2)。

    圖1 正常大鼠及心房顫動大鼠心電圖

    表2 實驗結(jié)束后各組大鼠房顫發(fā)生率和持續(xù)時間比較()

    表2 實驗結(jié)束后各組大鼠房顫發(fā)生率和持續(xù)時間比較()

    注:房顫:心房顫動;rAAV9-NC:重組腺相關(guān)病毒血清型9 陰性對照;rAAV9-siNORAD:重組腺相關(guān)病毒血清型9 載體含用于沉默DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA 的小干擾RNA;SB203580:p38 絲裂原激活的蛋白激酶抑制劑。與對照組比 *P<0.05;與房顫組比△P<0.05;與rAAV9-siNORAD 組比 ▲P<0.05;與SB203580 組比 #P<0.05

    2.2 各組大鼠血清CK-MB、cTnI、炎性因子水平的比較(表3)

    表3 各組大鼠血清CK-MB、cTnI、炎性因子水平比較()

    表3 各組大鼠血清CK-MB、cTnI、炎性因子水平比較()

    注:房顫:心房顫動;rAAV9-NC:重組腺相關(guān)病毒血清型9 陰性對照;rAAV9-siNORAD:重組腺相關(guān)病毒血清型9 載體含用于沉默DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA 的小干擾RNA;SB203580:p38 絲裂原激活的蛋白激酶抑制劑:cTnI:心肌肌鈣蛋白I;CK-MB:肌酸激酶同工酶;TNF-α:腫瘤壞死因子-α;IL-6:白細(xì)胞介素-6。與對照組比*P<0.05;與房顫組比△P<0.05;與rAAV9-siNORAD 組比較 ▲P<0.05;與SB203580 組比較#P<0.05

    與對照組相比,房顫組大鼠血清CK-MB、cTnI、TNF-α、IL-6 水平均明顯升高(P均<0.05);與房顫組相比,rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組大鼠血清CK-MB、cTnI、TNF-α、IL-6 水平均明顯降低(P均<0.05);與rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組相比,rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠血清CKMB、cTnI、TNF-α、IL-6 水平均明顯降低(P均<0.05)。

    2.3 各組大鼠心房組織纖維化比較

    Masson 染色結(jié)果顯示,房顫組大鼠的心房組織有明顯的纖維化改變,膠原纖維增生,排列紊亂,CVF 較對照組明顯增加[(35.29±5.35)%vs.(1.41±0.23)%,P<0.05],房顫組和rAAV9-NC 組CVF[(32.63±4.82)%]及在心臟間質(zhì)和血管周圍組織的纖維化方面差異均無統(tǒng)計學(xué)意義。與房顫組相比,rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組大鼠心房組織均可見藍(lán)染的膠原纖維減少,CVF 分別為(21.48±2.79)%、(24.15±2.86)%均明顯降低(P均<0.05);與rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組相比,rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠心房組織均可見藍(lán)染的膠原纖維最少,CVF[(14.36±2.20)%]明顯降低(P均<0.05),見圖2。

    圖2 各組大鼠心房組織Masson 染色(×200)

    2.4 各組大鼠心房組織lncRNA NORAD、COL1-A1和COL3-A1 的mRNA 表達(dá)比較(表4)

    表4 各組大鼠心房組織lncRNA NORAD、COL1-A1 和COL3-A1 的mRNA 表達(dá)比較()

    表4 各組大鼠心房組織lncRNA NORAD、COL1-A1 和COL3-A1 的mRNA 表達(dá)比較()

    注:房顫:心房顫動;rAAV9-NC:重組腺相關(guān)病毒血清型9 陰性對照;rAAV9-siNORAD:重組腺相關(guān)病毒血清型9 載體含用于沉默DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA 的小干擾RNA;SB203580:p38 絲裂原激活的蛋白激酶抑制劑;lncRNA NORAD:DNA 損傷激活的長鏈非編碼RNA;COL1-A1:Ⅰ型膠原;COL3-A1:Ⅲ型膠原。與對照組比*P<0.05;與房顫組比△P<0.05;與rAAV9-siNORAD 組比較▲P<0.05;與SB203580 組比#P<0.05

    與對照組相比,房顫組大鼠心房組織lncRNA NORAD、COL1-A1 和COL3-A1 的mRNA 水平明顯升高(P均<0.05);與房顫組相比,rAAV9-siNORAD組和SB203580 組大鼠心房組織lncRNA NORAD、COL1-A1 和COL3-A1 的mRNA 水平明顯降低(P均<0.05);rAAV9-siNORAD 組 和SB203580 組相比,rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠心房組織COL1-A1和COL3-A1 的mRNA 水平明顯降低(P均<0.05)。

    2.5 各組大鼠心房組織p38 MAPK/NF-κB 通路相關(guān)蛋白表達(dá)比較(圖3)

    圖3 各組大鼠心房組織p38 MAPK/NF-κB 通路相關(guān)蛋白水平比較

    與對照組相比,房顫組大鼠心房組織MKK6 蛋白水平、p-p38 MAPK/p38 MAPK 和p-NF-κB p65/NF-κB p65 的比值均明顯升高(P均<0.05);與房顫組相比,rAAV9-siNORAD 組和SB203580 組大鼠心房組織MKK6 蛋白水平、p-p38 MAPK/p38 MAPK和p-NF-κB p65/NF-κB p65 的比值均明顯降低(P均<0.05);與rAAV9-siNORAD組和SB203580組相比,rAAV9-siNORAD+SB203580 組大鼠心房組織MKK6蛋白水平、p-p38 MAPK/p38 MAPK 和p-NF-κB p65/NF-κB p65 的比值均明顯降低(P均<0.05)。

    3 討論

    近年來,研究證實lncRNA 參與房顫的進(jìn)展,并在心房纖維化中起重要作用,lncRNA NORAD 與心肌細(xì)胞損傷和心肌纖維化密切相關(guān)[10-12]。尾靜脈注射ACh-CaCl2屬于藥物誘導(dǎo)建模,是目前建立房顫模型常用方法[13,17],而且有報道稱,ACh-CaCl2建模后大鼠心房出現(xiàn)纖維化改變[13]。因此,本研究采用此方法成功建立了大鼠房顫模型,并在房顫大鼠中觀察到lncRNA NORAD 上調(diào),血清心肌損傷標(biāo)志物(cTnI、CK-MB)和炎性因子(TNF-α、IL-6)水平升高,纖維化標(biāo)志物膠原蛋白表達(dá)也上調(diào),并且心房纖維化的程度增加。這提示,lncRNA NORAD的升高可能與房顫大鼠心房纖維化程度有關(guān)。

    腺相關(guān)病毒(AAV)可用于在體內(nèi)基因轉(zhuǎn)移實驗,且不同血清型對組織器官的嗜性各有不同,其中AAV9 在全身具有更廣泛的表達(dá)分布,對心臟具有明顯親和性,已被廣泛使用[18-19]。本研究采用rAAV9-siNORAD 注射到大鼠體內(nèi)以敲低lncRNA NORAD,結(jié)果顯示敲低lncRNA NORAD 可以降低房顫的發(fā)生率和持續(xù)時間,并降低COL1-A1 和COL3-A1 的mRNA 水平以及血清心肌損傷標(biāo)志物和炎性因子水平,減輕心房纖維化。提示下調(diào)lncRNA NORAD 可減輕房顫大鼠心房纖維化。

    炎癥介導(dǎo)的心肌纖維化在房顫發(fā)展中起關(guān)鍵作用[20]。p38 MAPK 是MAPK 家族控制炎癥反應(yīng)最重要的成員,參與心臟重塑過程中與肥大和炎癥相關(guān)的有害信號通路的激活,并參與心肌成纖維細(xì)胞中基質(zhì)金屬蛋白酶和膠原蛋白的調(diào)節(jié)[21-22]。在細(xì)胞受到刺激后,NF-κB p65 可發(fā)生磷酸化,上調(diào)IL-6 和TNF-α 水平,加劇心肌梗死后的炎癥反應(yīng)和心肌纖維化程度[23]。而且在心肌梗死后發(fā)生房顫的大鼠模型中,NF-κB p65 和p38 MAPK 的磷酸化水平增加,降低其磷酸化水平可緩解心肌梗死誘導(dǎo)的房顫的發(fā)生率和持續(xù)時間[7]。MKK6 是一種負(fù)責(zé)p38 MAPK 磷酸化的重要MAPK 激酶,可在應(yīng)激刺激后激活p38 MAPK。本研究結(jié)果顯示,房顫大鼠心房組織中MKK6 蛋白和p-p38 MAPK/p38 MAPK 和p-NF-κB p65/NF-κB p65 比值升高;說明房顫中p38 MAPK/NF-κB p65 通路被激活。敲低lncRNA NORAD 后,房顫大鼠心房組織MKK6 蛋白和p-p38 MAPK/p38 MAPK、p-NF-κB p65/NF-κB p65 比值明顯降低,且與單獨(dú)應(yīng)用p38 MAPK 抑制劑SB203580 作用效果相似;且SB203580 和rAAV9-siNORAD 的聯(lián)合應(yīng)用對p38 MAPK/NF-κB p65 通路和心肌纖維化的抑制作用優(yōu)于兩者單獨(dú)應(yīng)用。提示,下調(diào)lncRNA NORAD 可能通過抑制p38 MAPK/NF-κB p65 通路激活對房顫大鼠發(fā)揮抗心肌纖維化作用。

    綜上所述,下調(diào)lncRNA NORAD 可減輕房顫大鼠心肌纖維化,其作用機(jī)制可能與抑制p38 MAPK/NF-κB p65 通路有關(guān)。本研究僅從動物水平上進(jìn)行了初步探究,下一步將從體外細(xì)胞水平論證結(jié)果,并對右心房病理學(xué)變化深入觀察探究。此外,由于NORAD 為非編碼RNA,存在多個靶點(diǎn),多方面調(diào)控的作用,是否能通過其他通路發(fā)揮作用,需進(jìn)一步探索。

    利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突

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