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    紫蘇caleosin基因克隆及表達分析

    2022-05-24 01:28:54史華平董書言周雅莉王計平李潤植
    激光生物學(xué)報 2022年2期
    關(guān)鍵詞:紫蘇克隆種子

    王 超,史華平,董書言,邢 志,周雅莉,王計平*,李潤植

    (1. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院(作物科學(xué)研究所),太谷 030801; 2. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)(山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院)果樹研究所,太谷 030815)

    紫蘇(Perilla frutescensL. Britt.)是唇形科紫蘇屬的一年生草本植物,又名香蘇、紅蘇等[1],原產(chǎn)于中國中南部地區(qū),在我國已有2000多年的栽培歷史,現(xiàn)廣泛分布于全國各地[2]。紫蘇在我國北方主要用作油料作物,少部分作為藥材來使用;在南方地區(qū),紫蘇以藥用為主,食用為輔[3-4]。紫蘇種子含油率高達45%~55%,其中不飽和脂肪酸含量豐富,占總含油量的90%以上,是日常食用油中不飽和脂肪酸含量較多的一種新型油料作物。

    植物種子中儲存著大量中性脂,主要成分為三酰甘油(triacylglycerol,TAG)。TAG在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜中裝配后向外凸起,磷脂單分子層結(jié)合在其外部形成大小不等的油體,油體融合成一定大小后,油體蛋白對其進行包裹便形成穩(wěn)定的成熟油體,從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)釋放到細胞液中[5]。TAG主要為種子萌發(fā)及幼苗的生長提供碳源和能量,而油體是負責(zé)儲存TAG的一個特殊細胞器[6]。油體蛋白主要分為三類:油質(zhì)蛋白(oleosin)、油體鈣蛋白(caleosin)和油體甾醇蛋白(steroleosin)[6]。caleosin和oleosin均能使油體更加穩(wěn)定。Chen等[7]分析推測,在使用相同含量的TAG時,等量caleosin能比oleosin覆蓋更多的油體面積,表明caleosin可以更有效地結(jié)合油體,是一種高效油體蛋白[8]。目前,在藻類植物[9]、蓖麻[10]、油菜[11]、小麥[12]、芍藥[13]、水稻[14]、擬南芥[15]等物種中,caleosin基因均已被克隆并進行功能分析。

    caleosin作為環(huán)化酶催化不飽和脂肪酸,形成環(huán)氧脂肪酸,而環(huán)氧脂肪酸與植物中氧脂素代謝相關(guān),能調(diào)控植物抗逆性并產(chǎn)生自身免疫[16]。在干旱脅迫時,caleosin N端可以感受內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜腔內(nèi)的Ca2+濃度變化,而C端發(fā)生磷酸化修飾,從而在干旱脅迫信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中起重要的調(diào)控作用[14]。在水稻[14]、雨生紅球藻[9]、擬南芥[17]等研究中發(fā)現(xiàn),caleosin基因參與了植物對環(huán)境脅迫的響應(yīng)。本文從紫蘇轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中篩選獲得PfClo1基因的開放閱讀框(open reading frame,ORF)序列,并對其進行分子克隆及生物信息學(xué)分析,通過實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)研究PfClo1基因在紫蘇不同組織、不同品種及干旱脅迫處理幼苗中的表達特性,初步探討PfClo1基因的生物學(xué)功能,為進一步深入研究PfClo1基因在紫蘇油脂合成中的功能及對干旱脅迫的響應(yīng)機制提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    紫蘇品種為山西農(nóng)業(yè)大學(xué)分子農(nóng)業(yè)與生物能源研究所保存的‘晉紫蘇1號’和‘并紫蘇1號’。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 材料處理

    選取均勻一致、籽粒飽滿的‘晉紫蘇1號’種子放入清洗干凈的小燒杯中,用自來水沖洗20 min,置于10 mL離心管中,用無菌水沖洗3次(每次3 min),然后用75%的酒精消毒處理40 s,無菌水沖洗3次。準(zhǔn)備好鋪有濾紙的培養(yǎng)皿,加入自來水(浸濕濾紙即可),將處理好的紫蘇種子整齊均勻地擺放到濾紙上常溫暗培養(yǎng)。待紫蘇長出2片子葉時光照培養(yǎng)(光照16 h、暗培養(yǎng)8 h、濕度80%),待長出4片真葉時選取長勢良好的幼苗進行20%聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)干旱脅迫處理。分別在脅迫處理后0、3、6、9、12、24 h各取5株幼苗全株放入1.5 mL離心管中,做好標(biāo)記后放入液氮中速凍,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    在大田中取不同油脂含量的紫蘇品種(‘并紫蘇1號’的含油率為35.6%,‘晉紫蘇1號’的含油率為46.8%)的根、莖、葉、花及不同發(fā)育時期的種子(開花后10、20、30、40 d),液氮速凍,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2PfClo1和PfClo2基因的鑒定及生物信息學(xué)分析

    在運用高通量測序獲得的紫蘇轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(使用根、莖、葉、花、開花后10、20、30、40 d的種子混樣測定)中篩選獲得PfClo1和PfClo2兩個基因片段。

    通過NCBI-BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)進行同源序列比對后,使用在線分析軟件對PfClo基因進行生物信息學(xué)分析。利用ProtParam在線分析軟件(https//web.expasy.org/protparam/)對基因進行基本理化性質(zhì)的分析;利用PSORT在線分析軟件(https://Psort.hgc.jp/form2.html)對基因進行亞細胞定位預(yù)測;利用SOPMA在線分析軟件(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)進行蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)的預(yù)測;利用SWISS-MODEL在線分析軟件(https://swissmodel.expasy.org/interactive)構(gòu)建蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)模型;利用NCBI-CDD在線分析軟件(https://www.ncbi.nlmnih.gov/structure/cdd/wrpsb.cgi)分析基因的保守域和功能結(jié)構(gòu)域;使用DNAMAN軟件進行多序列比對分析,使用MEGA 7.0、Clustal W軟件進行系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建和分析。

    1.2.3PfClo1和PfClo2基因在紫蘇不同組織中的表達特性分析

    使用艾德萊生物公司的EASYspin植物RNA快速提取試劑盒提取-80℃保存的紫蘇材料的RNA,使用ABM反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,稀釋至100 ng/μL后-20℃保存?zhèn)溆谩@肞rimer 6.0設(shè)計熒光定量引物(表1),以Actin2作為內(nèi)參基因。使用2×RealStar Green Power Mixture試劑盒(購自Genstar公司),通過熒光定量分析儀進行qRT-PCR擴增。qRT-PCR反應(yīng)體系(20.0 μL):2×RealStar Green Power Mixture 10.0 μL、PfClo1/2F 0.5 μL、Pf-Clo1/2R 0.5 μL、cDNA模板 1.0 μL、ddH2O 8.0 μL。擴增程序:94℃ 10 min,95℃ 15 s,55℃ 1 min,40個循環(huán)。每個樣品重復(fù)3次。通過表達譜分析,選取PfClo1基因進行后續(xù)研究。

    1.2.4 引物設(shè)計

    使用Primer 6.0軟件設(shè)計PCR引物(表1)。

    1.2.5PfClo1基因的克隆

    通過表達譜分析,選取PfClo1基因進行克隆,利用Primer 6.0設(shè)計全長引物(表1),以紫蘇葉片cDNA為模板,按照2íTS-INGKE Master Mix(北京擎科生物公司)試劑盒體系和程序進行PCR擴增,將PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后使用SanPrep柱式DNA回收試劑盒(上海生工生物工程股份有限公司)回收,測定回收產(chǎn)物的質(zhì)量濃度,連接到Pmd19-T載體中,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,涂板挑取單克隆,菌檢為陽性后送至上海生工生物工程股份有限公司測序。

    表1 引物信息Tab. 1 Primer information

    1.2.6PfClo1基因在不同紫蘇品種中的差異表達及對干旱脅迫響應(yīng)分析

    提取‘晉紫蘇1號’和‘并紫蘇1號’不同組織的RNA及‘晉紫蘇1號’干旱脅迫處理后的葉片RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA后通過熒光定量分析儀進行qRT-PCR擴增。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 PfClo蛋白的理化性質(zhì)分析

    PfClo1蛋白的分子式為C1841H3075N609O780S121,相對分子質(zhì)量為50100.54,理論等電點為5.19(呈酸性),不穩(wěn)定系數(shù)為40.76,屬于不穩(wěn)定蛋白,脂肪酸系數(shù)為26.60,親水性系數(shù)為0.678,屬于疏水性蛋白。PSORT軟件預(yù)測PfClo1蛋白定位于細胞質(zhì),屬于胞內(nèi)蛋白。PfClo2蛋白的分子式為C1755H2930N582O732S120,相對分子質(zhì)量為47743.23,理論等電點為5.18(呈酸性),不穩(wěn)定系數(shù)為40.28,屬于不穩(wěn)定蛋白,脂肪酸系數(shù)為29.73,親水性系數(shù)為0.775,屬于疏水性蛋白。PSORT軟件預(yù)測PfClo2蛋白定位于細胞質(zhì),屬于胞內(nèi)蛋白。

    2.2 PfClo蛋白的結(jié)構(gòu)分析

    圖1 紫蘇PfClo蛋白二級結(jié)構(gòu)Fig. 1 The secondary structure of PfClo protein in perilla藍色線條:α-螺旋;紅色線條:延伸鏈;綠色線條:β-折疊;紫色線條:無規(guī)則卷曲。Blue line: α-helix; Red line: Extended strand; Green line: β-sheet; Purple line: Random coil.

    圖2 紫蘇PfClo蛋白三級結(jié)構(gòu)Fig. 2 The tertiary structure prediction of PfClo protein in perilla(a)PfClo1蛋白;(b)PfClo2蛋白。(a) Pfclo1 protein; (b) Pfclo2 protein.

    2.3 PfClo蛋白的多序列比對分析

    利用在線軟件進行紫蘇PfClo基因編碼氨基酸的多序列比對及功能結(jié)構(gòu)域分析,結(jié)果如圖3所示,PfClo蛋白與芝麻(Sesamum indicum,NM_001304394.1)、丹參(Salvia miltiorrhizaXM_042171389.1)、煙草(Nicotiana tabacum,XM_016615461.1)和擬南芥(Arabidopsis,AT4G26740.1)的caleosin家族成員具有相似結(jié)構(gòu),具有鈣結(jié)合基序、酪蛋白激酶Ⅱ磷酸化位點等保守結(jié)構(gòu)域。

    圖3 紫蘇與其他物種caleosin的氨基酸序列比對Fig. 3 Amino acid sequence alignment of caleosin from perilla and other species鈣結(jié)合基序和酪蛋白激酶II磷酸化位點的片段用紅線標(biāo)出,名稱在底部標(biāo)出。Pf:紫蘇;Si:芝麻;Sm:丹參;Nt:煙草;At:擬南芥。The fragments of calcium binding motif and casein kinase II phosphorylation site are marked with red horizontal line and the names are marked at the bottom. Pf: Perilla frutescens; Si: Sesamum indicum; Sm: Salvia miltiorrhiza; Nt: Nicotiana tabacum; At: Arabidopsis thaliana.

    2.4 PfClo蛋白的系統(tǒng)進化樹分析

    在NCBI數(shù)據(jù)庫中使用Clustal W軟件將紫蘇PfClo蛋白與其他8種植物[芝麻(Sesamum indicum,NM_001304394.1)、丹參(Salvia miltiorrhiza,XM_042171389.1)、煙草(Nicotiana tabacumXM_016615461.1)、擬南芥(Arabidopsis,AT4G26740.1)、蓖麻(RicinuscommunisXM_002528321.3)、向日葵(Helianthus annuus,XM_022185293.2)、甘藍型油菜(Brassica napus,NM_001315834.1)、花生(Arachis hypogaea,XM_025820922.2)]的caleosin序列進行多序列比對,并用MEGA7.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)進化樹(圖4)。可以看出,PfClo1與丹參SmClo聚為一支,均屬于唇形科植物,親緣關(guān)系更為接近;PfClo2與蓖麻RcClo聚為一支,親緣關(guān)系更為接近。

    圖4 紫蘇與其他物種caleosin的系統(tǒng)進化樹Fig. 4 Phylogenetic tree of caleosin from perilla and other species

    2.5 PfClo1和PfClo2基因在‘晉紫蘇1號’不同 組織中的表達特性分析

    紫蘇PfClo基因在不同組織中的表達譜分析表明(圖5):PfClo1基因在根、莖、葉中基本不表達,在花中表達量較高,該基因主要在種子中表達,且隨著種子的發(fā)育表達量不斷增加,在開花后30 d表達量達到最高,是開花后10 d表達量的22.08倍;PfClo2基因僅在葉和花中微量表達,在根、莖、種子中均不表達。因此,本研究選取PfClo1基因進行后續(xù)試驗。

    圖5 ‘晉紫蘇1號’不同組織中PfClo1(a)和PfClo2(b)基因的表達特性Fig. 5 Expression characteristics of PfClo1 (a) and PfClo2 (b) genes in different tissues of ‘Jinzisu 1’不同小寫字母代表P<0.05水平上的差異顯著。R:根;S:莖;L:葉;F:花;10 d:開花后10 d的種子;20 d:開花后20 d的種子;30 d:開花后30 d的種子;40 d:開花后40 d的種子。下同。Different lowercase letters represent significant differences at the level of P<0.05 . R: Root; S: Stem; L: Leaf; F: Flower; 10 d: Seeds 10 days after flowering; 20 d: Seeds 20 days after flowering; 30 d: Seeds 30 days after flowering; 40 d: Seeds 40 days after flowering. The same below.

    2.6 紫蘇PfClo1基因的克隆

    從紫蘇轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中篩選并克隆獲得Pf-Clo1基因(圖6)。紫蘇PfClo1基因的cDNA全長序列為609 bp,編碼202個氨基酸殘基(圖7)。

    圖6 PfClo1基因克隆電泳圖Fig. 6 PfClo1 gene cloning electrophoresisM:Marker DL2000。M: Marker DL2000.

    圖7 紫蘇PfClo1的核苷酸序列和氨基酸序列Fig. 7 Nucleotide sequence and amino acid sequence of PfClo1起始密碼子用紅色框框出,終止密碼子以星號指示。The start codon is framed in red, the end codon is indicated by an asterisk.

    2.7 PfClo1基因在不同紫蘇品種中的表達特性分析

    紫蘇PfClo1基因在不同紫蘇品種中的表達特性分析表明(圖8),PfClo1基因在‘并紫蘇1號’種子中特異性表達,且開花后40 d表達量最高,但總體來說,相比高油品種‘晉紫蘇1號’,其相對表達水平較低,可見編碼caleosin的PfClo1基因在不同油脂含量的紫蘇材料中存在正相關(guān)關(guān)系。

    圖8 PfClo1基因在‘晉紫蘇1號’和‘并紫蘇1號’中的表達特性Fig. 8 Expression characteristics of PfClo1 gene in ‘Jinzisu 1’ and ‘Bingzisu 1’ varieties

    2.8 干旱脅迫條件下 PfClo1基因在‘晉紫蘇1號’中的表達特性分析

    PfClo1基因在20% PEG脅迫后的表達情況分析如圖9所示:隨著脅迫處理時間的延長,Pf-Clo1基因的表達量急劇上升,脅迫6 h時表達量是3 h表達量的9.92倍;隨后表達量繼續(xù)升高,12 h時PfClo1基因的表達量達到最高,為0 h表達量的6.78倍,3 h表達量的23.56倍,脅迫處理24 h時表達量開始下降。

    圖9 PfClo1基因干旱條件下在‘晉紫蘇1號’中的表達特性Fig. 9 Analysis of the expression characteristics of PfClo1 gene in ‘Jinzisu 1’ under drought conditions不同小寫字母代表P<0.05水平上的差異顯著。Different lowercase letters represent significant differences at the level of P<0.05.

    3 討論

    油體鈣蛋白基因caleosin在油體形成過程中起重要作用。Khalil等[18]、Marine等[19]研究發(fā)現(xiàn),過表達caleosin基因有利于合成更多數(shù)量的油體。在酵母中過表達caleosin基因會使酵母油脂積累量、油體數(shù)量增加,且油體體積增大[10],表明caleosin基因超表達可以誘導(dǎo)油脂的合成積累。丁勇等[11]、魏征等[14]的研究結(jié)果表明:油體蛋白N端存在能夠結(jié)合Ca2+的EF-hand區(qū)域,可能發(fā)揮調(diào)控信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的功能;中間部分存在疏水區(qū)域,能增加油體蛋白的疏水性,提高油體的穩(wěn)定性;C端帶有保守蛋白激酶磷酸化位點,能啟動油體合成途徑。紫蘇PfClo1屬于典型的caleosin家族,其C末端結(jié)構(gòu)域含有酪蛋白激酶II(casein kinase II,CKII)磷酸化位點,可推測其在油體成熟時參與Ca2+信號轉(zhuǎn)導(dǎo),這與上述研究結(jié)果一致。多序列比對及系統(tǒng)進化分析驗證了PfClo1與芝麻、丹參、擬南芥等植物的caleosin具有相似的結(jié)構(gòu)域及較近的親緣關(guān)系,推測該基因在紫蘇中編碼caleosin蛋白,調(diào)控油體合成,增加油體的穩(wěn)定性。

    caleosin基因在不同植物中的表達特性不同,在水稻不同組織中均有表達[14],在芍藥[13]和芝麻[20]種子中其表達量呈先升高后降低的趨勢。本研究通過分析紫蘇不同組織及種子發(fā)育不同時期caleosin基因的表達特性,發(fā)現(xiàn)其在花和種子中均有表達,在種子發(fā)育后期表達量達到高峰,與油體形成時期相符,推測該基因高量表達與油體形成有關(guān);通過分析不同紫蘇品種的差異表達,發(fā)現(xiàn)低油品種‘并紫蘇1號’的PfClo1基因表達量極低,推測編碼油體鈣蛋白的PfClo1基因的表達與紫蘇油脂的形成存在一定的正相關(guān)關(guān)系。

    為豐富滁河左岸堤頂路防浪墻景觀效果,左岸景觀中的防浪墻造型采用異形流線手法,蜿蜒在滁河岸邊,而景墻則采用山水畫卷圖案刻畫在異型混凝土上來顯現(xiàn)。該材料在生產(chǎn)過程中一次成型,后期無需其他工序。所有工作均在工廠完成,只需運輸至現(xiàn)場安裝即可,整個過程實現(xiàn)PC化,即計算機雕刻模型,先做好路徑,然后采用機器雕刻。

    向蘭舟等[17]在擬南芥中研究發(fā)現(xiàn),在高鹽、高溫脅迫及脫落酸(abscisic acid,ABA)誘導(dǎo)條件下,AtCLO3基因表達均上調(diào),其中高溫脅迫下表達顯著上調(diào)。魏征等[14]在水稻研究中發(fā)現(xiàn),PEG6000模擬干旱脅迫時,OsCLO-3和OsCLO-6在各個組織中的表達水平均有所上調(diào)。本研究通過分析紫蘇在干旱脅迫下caleosin基因的表達特性,可以看出在干旱脅迫6 h時表達量已明顯升高,脅迫12 h時達到高峰,表明PfClo1基因具有干旱應(yīng)答功能,能夠快速響應(yīng)干旱脅迫。

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