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      鈣感受器STIM1參與主動脈平滑肌細(xì)胞衰老的作用研究*

      2022-05-06 05:36:40秦曉玥王義蓉李穗敏陳淑貞鄺素娟鄧春玉
      中國病理生理雜志 2022年4期
      關(guān)鍵詞:平滑肌培養(yǎng)液主動脈

      曾 鵬 , 秦曉玥 , 王義蓉 , 李穗敏 , 陳淑貞 , 鄺素娟 ,楊 慧 , 饒 芳 , 鄧春玉 1,,4△

      [1華南理工大學(xué)醫(yī)學(xué)院,廣東 廣州 510006;2華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510006;3廣東省人民醫(yī)院(廣東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院)醫(yī)學(xué)研究部臨床藥理重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州 510080;4廣東省心血管病研究所心血管內(nèi)科,廣東 廣州 510100]

      年齡相關(guān)性心血管疾病常伴隨著血管老化。血管老化能顯著增加年齡相關(guān)心血管疾病的風(fēng)險,如動脈粥樣硬化、高血壓和糖尿病血管病變等[1]。血管平滑肌細(xì)胞(vascular smooth muscle cells,VSMCs)是動脈中膜的主要組成部分,衰老VSMCs 的積累是導(dǎo)致血管老化的重要原因。年齡、血管緊張素Ⅱ、氧化應(yīng)激、炎癥和小分子化合物等多種因素均能加速VSMCs 衰老。正常的VSMCs 是靜止的,具有承擔(dān)血管收縮功能的收縮表型,能夠有效維持正常的血管結(jié)構(gòu)與功能;衰老的VSMCs 由收縮表型轉(zhuǎn)化為分泌表型,并釋放大量促炎因子和促重構(gòu)因子,加重血管的重構(gòu)及血管硬化,參與血管老化的進(jìn)展[2]。目前,VSMCs衰老的具體分子機(jī)制尚未被完全闡明。

      鈣庫操縱性鈣通道(store-operated calcium channels,SOCC)已被證明在免疫細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞等細(xì)胞中有表達(dá),并參與調(diào)節(jié)免疫功能、血管收縮和細(xì)胞增殖遷移等[3]。鈣感受器基質(zhì)相互作用分子1(stromal interaction molecule 1,STIM1)和鈣離子通道蛋白ORAI1 是SOCC 的主要分子基礎(chǔ)。STIM1 主要分布在內(nèi)質(zhì)網(wǎng),部分分布在胞膜和微管上,能夠感受內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣庫Ca2+耗竭信號,聚集、遷移至細(xì)胞膜與ORAI1結(jié)合,介導(dǎo)細(xì)胞外鈣內(nèi)流,促進(jìn)血管收縮,并能激活多種轉(zhuǎn)錄因子,包括SRF、NFAT 和cAMP 等[4]。STIM1 能對高血壓、高糖等多種刺激原發(fā)生反應(yīng),并參與高血壓、糖尿病血管病變及心肌肥厚等多種心血管疾病的發(fā)生、發(fā)展[5]。下調(diào)STIM1表達(dá)能有效控制血管重構(gòu)及心肌肥厚,但平滑肌特異性STIM1基因敲除(smooth muscle-specificSTIM1gene knockout,sm-STIM1-KO)小鼠的生存率較野生型小鼠顯著下降。STIM1 在阿爾茨海默病模型的神經(jīng)母細(xì)胞瘤SH-SY5Y 細(xì)胞中下調(diào),體外敲除STIM1基因加速 SH-SY5Y 細(xì)胞衰老[6]。但是 STIM1 是否參與血管衰老的進(jìn)展目前尚不清楚。本研究以STIM1蛋白表達(dá)改變?yōu)榍腥朦c(diǎn),通過過氧化氫(hydrogen peroxide,H2O2)誘導(dǎo)的 VSMCs 衰老模型觀察 STIM1表達(dá)變化,構(gòu)建和觀察sm-STIM1-KO 小鼠衰老變化,并在細(xì)胞水平干預(yù)STIM1 表達(dá)變化,探討其在VSMCs衰老中的作用。

      材料和方法

      1 動物

      SPF 級 6~8 周齡雄性 C57BL/6(sm-STIM1-WT)和sm-STIM1-KO 小鼠各20只,購于江蘇集萃藥康生物科技有限公司,許可證號為SCXK(蘇)2018-0008,在華南理工大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心喂養(yǎng)至20 周后開展實(shí)驗(yàn)。本研究所有動物實(shí)驗(yàn)均已通過廣東省人民醫(yī)院的動物實(shí)驗(yàn)倫理審查(No. GDRE201208a)。

      2 主要試劑和儀器

      ORAI1 抗 體(13130-1-AP)購 自 Proteintech;STIM1 抗體(#4916)、p53 抗體(#2524)、GAPDH 抗體(#97166)、β-actin 抗體(#4970)和衰老相關(guān)β-半乳糖苷酶(senescence-associated β-galactosidase,SA-β-Gal)染 色 試 劑 盒(#9860)購 自 CST;p21 抗 體(ab109520)和p16INK4a抗體(ab108349)購自Abcam;特級澳洲胎牛血清和0.25%胰蛋白酶-EDTA 購自Gibco;STIM1siRNA(序列見表1)、過表達(dá)質(zhì)粒及腺病毒購自上海吉凱基因有限公司;Lipofectamine 3000 轉(zhuǎn)染試劑購自Invitrogen;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。DK-8D 型電熱恒溫水槽(上海醫(yī)用恒溫設(shè)備廠);蛋白電泳儀和轉(zhuǎn)膜儀(北京市六一儀器廠);CO2培養(yǎng)箱和 5415D 型微量臺式離心機(jī)(Eppendorf);BS110S 型精密天平(Sartoriu);垂直電泳儀和Model 680 全自動酶標(biāo)儀(Bio-Rad)。

      表1 STIM1 siRNA序列Table 1. The sequences of STIM1 siRNA

      3 主要方法

      3.1 構(gòu)建 sm-STIM1-KO 小鼠 方法如前所述[7]。采用Cre-loxP基因重組技術(shù)制備sm-STIM1-KO小鼠。首先培育Tagln-Cre-KI+小鼠與STIM1fl/fl小鼠雜交,導(dǎo)致小鼠平滑肌細(xì)胞中STIM1基因的外顯子2 特異性完全敲除,構(gòu)建sm-STIM1-KO 小鼠,Tagln-Cre-KI+/--STIM1-WT(sm-STIM1-WT)作為對照組。通過PCR檢測雜交小鼠子代鼠尾DNA 提取物基因敲除情況并篩選出sm-STIM1-KO 小鼠。提取小鼠主動脈組織蛋白,Western blot 技術(shù)檢測STIM1蛋白水平變化,驗(yàn)證平滑肌STIM1基因敲除是否成功。

      3.2 細(xì)胞培養(yǎng)、siRNA 轉(zhuǎn)染及腺病毒感染 人主動脈 平 滑 肌 細(xì) 胞 株 HA-VSMC(CRL-1999 ?)購 自ATCC。用含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液培養(yǎng),將細(xì)胞放置于37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞密度增長到70%時,進(jìn)行傳代。siRNA 轉(zhuǎn)染前1 d,接種1×105個細(xì)胞在含1 mL 完全培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿中。125 μL Opti-MEM 無血清培養(yǎng)液和 3 μL siRNA充分混合,靜止5 min。再將125μL Opti-MEM無血清培養(yǎng)液與3μL Lipofectamine 3000 混合,靜置5 min。將混合轉(zhuǎn)染試劑與siRNA 稀釋液混合,室溫靜置20 min,將上述轉(zhuǎn)染混合物加入培養(yǎng)皿中,再補(bǔ)充500μL完全培養(yǎng)液。將培養(yǎng)皿置于37 ℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h后更換新鮮的培養(yǎng)液。腺病毒感染前1 d,接種1×105個細(xì)胞在含1 mL 完全培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿中。將含過表達(dá)STIM1質(zhì)粒的腺病毒(5×1012PFU/L)與培養(yǎng)基混合后加入培養(yǎng)皿中,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。Western blot檢測STIM1蛋白表達(dá)變化。

      3.3 H2O2誘導(dǎo)細(xì)胞衰老 方法如前所述[7],H2O2短時間暴露導(dǎo)致細(xì)胞衰老,長時間暴露導(dǎo)致細(xì)胞凋亡和壞死。平滑肌細(xì)胞傳代至9~12 代開始處理,提前1 d 將每孔1×105的細(xì)胞均勻種于6 孔板中。為誘導(dǎo)細(xì)胞過早衰老,使用無血清培養(yǎng)液稀釋70% H2O2溶液至200 μmol/L 處理平滑肌細(xì)胞,對照組細(xì)胞中加入PBS 處理。1 h 后更換為正常培養(yǎng)液繼續(xù)孵育48 h,SA-β-Gal染色檢測細(xì)胞衰老變化。

      3.4 SA-β-Gal 染色 提前1 d 消化重懸細(xì)胞鋪于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,細(xì)胞密度70%左右時,按照SA-β-Gal染色試劑盒說明使用。吸去培養(yǎng)液后PBS漂洗3次,加入固定液室溫固定15 min。去除固定液后PBS洗3次,調(diào)整染色工作液pH到6.0,并加1 mL工作液入6 孔板中。密封,避光放入無CO2,37 ℃干燥恒溫孵育箱過夜。在倒置顯微鏡中觀察細(xì)胞,衰老的細(xì)胞呈現(xiàn)核周藍(lán)染,并用ImageJ 6.0 軟件計算染色細(xì)胞陽性率。

      3.5 Western blot 實(shí)驗(yàn) 從C57BL/6 小鼠中,分離小鼠胸主動脈,去除血管周圍組織和血液,PBS 漂洗3次后加入適量含PMSF和磷酸酶抑制劑的RIPA 裂解液,冰上裂解15 min。在液氮中充分碾磨,收集組織裂解液4 ℃、13 210×g離心15 min,取上清分裝至EP管中。BCA 法測濃度后配成等體積的30μg 蛋白樣品,并加入SDS-PAGE 蛋白上樣緩沖液,100 ℃煮沸10 min。用10%SDS-PAGE 分離蛋白樣品后,轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上。5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,TBST 洗滌3次,每次15 min。膜同1∶1 000 稀釋Ⅰ抗過夜孵育,后加入 1∶5 000 稀釋Ⅱ抗孵育 1 h。TBST 洗滌 3 次,每次15 min,均勻加入ECL 化學(xué)發(fā)光液避光孵育顯影。利用ImageJ 6.0軟件進(jìn)行灰度分析。

      4 統(tǒng)計學(xué)處理

      采用SPSS 25.0統(tǒng)計軟件對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。兩樣本均數(shù)間比較采用Student'st檢驗(yàn);多樣本均數(shù)間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間的兩兩比較采用Student-Newman-Keuls 檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 STIM1 和ORAI1 在H2O2誘導(dǎo)的衰老主動脈平滑肌細(xì)胞中的表達(dá)

      利用H2O2處理平滑肌細(xì)胞構(gòu)建細(xì)胞衰老模型,鏡下觀察處理組細(xì)胞呈扁平狀、體積增大、顆粒增加,SA-β-Gal 陽性細(xì)胞率顯著增高(P<0.01);Western blot檢測衰老細(xì)胞中SOCC 相關(guān)蛋白STIM1和ORAI1的表達(dá)變化,結(jié)果顯示,與對照組相比,H2O2處理組中 STIM1 和 ORAI1 的 表達(dá)顯著下 調(diào)(P<0.05),見圖1。

      2 sm-STIM1-KO小鼠的構(gòu)建

      利用Cre-loxP 基因重組技術(shù)構(gòu)建sm-STIM1-KO小鼠,提取鼠尾DNA 基因組篩選出sm-STIM1-KO 小鼠;HE 染色觀察到sm-STIM1-KO 小鼠主動脈組織結(jié)構(gòu)未見顯著改變;Western blot 結(jié)果顯示,sm-STIM1-KO 小鼠主動脈STIM1 蛋白表達(dá)基本消失(P<0.01),平滑肌特異性STIM1基因敲除成功,見圖2。

      3 sm-STIM1-KO小鼠主動脈衰老相關(guān)蛋白的變化

      收集相同月齡(5 月齡)的sm-STIM1-WT 小鼠及sm-STIM1-KO 小鼠主動脈組織,Western blot 檢測組織中 p53、p21 及 p16 的表達(dá)變化,SA-β-Gal 染色檢測sm-STIM1-KO 小鼠主動脈細(xì)胞衰老變化。結(jié)果顯示,與對照組相比,sm-STIM1-KO 小鼠主動脈中衰老相關(guān)蛋白p53、p21及p16的表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05),主動脈組織中SA-β-Gal 陽性細(xì)胞數(shù)量明顯增多,見圖3。

      4 STIM1體外下調(diào)加速平滑肌細(xì)胞衰老

      我們構(gòu)建了不同STIM1siRNA 序列,Western blot 顯示 3 條 siRNA 序列均能下調(diào) STIM1 蛋白水平,并在其中選擇效果最佳的STIM1siRNA #3,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn);轉(zhuǎn)染STIM1siRNA 后,平滑肌細(xì)胞中衰老相關(guān)蛋白p21 和p16 的表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05),SA-β-Gal染色陽性細(xì)胞顯著增加(P<0.01),見圖4。

      Figure 1. Relative protein expression of STIM1 and ORAI1 in H2O2-induced senescent aortic smooth muscle cells. A:Western blot was used to detect STIM1 and ORAI1 expression in H2O2-induced senescent aortic smooth muscle cells;B:the images of SA-β-Gal staining(scale bar=200 μm)and SA-β-Gal positive rate of H2O2-induced senescent aortic smooth muscle cells.Mean±SD. n=4.*P<0.05,**P<0.01 vs PBS group.圖1 STIM1和ORAI1在H2O2誘導(dǎo)的衰老的主動脈平滑肌細(xì)胞的表達(dá)

      Figure 2. Generation of sm-STIM1-KO mice. A:PCR results for the genotyping of mouse tail DNA exaction and Cre-recombinase(P:positive control;WT:wild-type,negative control;N:no-template control;M:D50 DNA marker);B:histopathological observation of the aorta from sm-STIM1-KO mice(HE staining,scale bar=50 μm);C:Western blot was used to detect STIM1 protein expression in aortic tissue of sm-STIM1-KO mice. Mean±SD. n=6.**P<0.01 vs sm-STIM1-WT group.圖2 制備平滑肌特異性STIM1基因敲除小鼠

      5 STIM1在體外上調(diào)能夠緩解平滑肌細(xì)胞衰老

      對H2O2處理衰老細(xì)胞后進(jìn)行腺病毒感染過表達(dá)STIM1(AdSTIM1+H2O2),Western blot 檢測到平滑肌細(xì)胞中鈣感受器STIM1 表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01),而衰老相關(guān)蛋白p21和p16的表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.05),見圖5。

      Figure 3. The levels of senescence-associated proteins in aortic tissue of sm-STIM1-KO mice. A:the protein levels of p53,p21 and p16 in aortic tissue of sm-STIM1-KO mice were determined by Western blot;B:increased positive cells in the aorta of sm-STIM1-KO mice were observed by SA-β-Gal staining(scale bar=50 μm). Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs sm-STIM1-WT group.圖3 平滑肌特異性STIM1基因敲除小鼠主動脈衰老相關(guān)蛋白的表達(dá)

      Figure 4. Knockdown of STIM1 promoted senescence of vascular smooth muscle cells(VSMCs)in vitro. A:Western blot was used to detect the protein level of STIM1 in VSMCs after transfected with STIM1 siRNA;B:the SA-β-Gal positive cells were significantly increased after STIM1 knockdown(scale bar=200μm);C:the levels of senescence-related proteins p21 and p16 in VSMCs after transfected with STIM1 siRNA were determined by Western blot. Mean±SD. n=4.*P<0.05,**P<0.01 vs siNC group.圖4 體外敲減STIM1加速血管平滑肌細(xì)胞衰老

      Figure 5. Overexpression of STIM1 alleviated senescence of smooth muscle cells(VSMCs)in vitro. After pretreatment with H2O2,the protein levels of STIM1,p21 and p16 in VSMCs transfected with STIM1-overexpressing adenovirus were determined by Western blot. Mean±SD. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs AdCtrl group;#P<0.05,##P<0.01 vs AdCtrl+H2O2 group.圖5 體外過表達(dá)STIM1能夠緩解血管平滑肌細(xì)胞衰老

      討 論

      我們在構(gòu)建的細(xì)胞衰老模型中觀察到,SOCC 的兩個主要組成部分STIM1 和ORAI1 的蛋白水平顯著下調(diào),進(jìn)而在體內(nèi)通過平滑肌特異性敲除STIM1 和體外siRNA 干擾細(xì)胞的STIM1蛋白表達(dá),顯示STIM1的下調(diào)參與平滑肌細(xì)胞衰老的進(jìn)程。最后我們在H2O2誘導(dǎo)的衰老細(xì)胞模型中,通過過表達(dá)STIM1,緩解了細(xì)胞衰老。

      細(xì)胞衰老是一個復(fù)雜的過程,特征包括細(xì)胞生長停滯、細(xì)胞凋亡抵抗以及衰老相關(guān)分泌表型(SASP)等。年齡、氧化應(yīng)激、炎癥、藥物及輻射等導(dǎo)致端??s短、DNA 損傷激活P53/P21或者P16信號通路導(dǎo)致細(xì)胞周期停滯,衰老細(xì)胞的β 半乳糖苷酶的活性顯著上調(diào)[8]。與其他衰老的細(xì)胞類型相似,衰老VSMCs 的增殖能力顯著降低,VSMCs 轉(zhuǎn)化為合成表型,對收縮和舒張物質(zhì)的反應(yīng)性顯著變化,細(xì)胞外基質(zhì)顯著增加等。雖然到目前為止,VSMCs 的衰老對個體壽命的影響尚未明確,但是可以明確的是VSMCs 衰老能夠加速高血壓、糖尿病和動脈粥樣硬化等疾病的發(fā)展。研究平滑肌細(xì)胞衰老的分子機(jī)制能夠?yàn)橹委熝芩ダ咸峁┬碌姆较颉?/p>

      細(xì)胞衰老與鈣調(diào)控紊亂密切相關(guān),靜息狀態(tài)下衰老細(xì)胞胞漿鈣濃度和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣含量增加,線粒體內(nèi)鈣含量減少。STIM1 通過感受內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣庫耗竭信號以及各種細(xì)胞應(yīng)激反應(yīng)介導(dǎo)鈣庫操縱性鈣內(nèi)流(store-operated Ca2+entry,SOCE),并參與細(xì)胞增殖、遷移和免疫等基本細(xì)胞過程。在體外長期培養(yǎng)的衰老神經(jīng)元模型中可觀察到 SOCE 受損[9],STIM1 和ORAI1 蛋白水平下降。在阿爾茨海默病細(xì)胞模型中,神經(jīng)細(xì)胞STIM1蛋白表達(dá)水平隨著神經(jīng)變性進(jìn)展而降低,而敲除SH-SY5Y 神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞系STIM1基因,誘導(dǎo)了細(xì)胞的衰老[6]。另外,在老年大鼠中SOCC 介導(dǎo)的主動脈血管收縮反應(yīng)顯著下降[10],表明STIM1 可能參與血管衰老的進(jìn)展。而本研究表明,在 H2O2誘導(dǎo)的 VSMCs 衰老模型中,SOCC 相關(guān)蛋白STIM1 和ORAI1 表達(dá)水平顯著下降。然而STIM1的表達(dá)變化是否參與VSMCs 衰老和血管老化發(fā)生、發(fā)展尚不清楚。STIM1基因全身敲除具有胚胎致死性,STIM1基因突變患者常常因?yàn)閲?yán)重的免疫缺陷而導(dǎo)致STIM1 在血管中的作用被掩蓋。我們通過CreloxP技術(shù)構(gòu)建了sm-STIM1-KO小鼠模型,能夠觀察在體情況下STIM1敲除對血管功能的影響。與野生型相比,sm-STIM1-KO 小鼠主動脈中衰老相關(guān)蛋白p53、p21及p16表達(dá)顯著上調(diào)。同時,體外實(shí)驗(yàn)中,敲減STIM1能加速 VSMCs 衰老,而過表達(dá)STIM1能抑制H2O2誘導(dǎo)的VSMCs衰老。鈣穩(wěn)態(tài)在衰老過程中被破壞,而調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)鈣水平可能影響衰老的進(jìn)展。文獻(xiàn)報道,L型鈣通道抑制劑硝苯地平處理可通過下調(diào)衰老細(xì)胞靜息胞漿鈣水平和提高線粒體鈣含量來改善衰老[11]。然而我們通過敲減STIM1抑制SOCE卻得到了相反的作用,這可能與STIM1對細(xì)胞靜息狀態(tài)下胞漿鈣濃度和線粒體鈣含量不同的影響相關(guān)。STIM1 除了與質(zhì)膜Ca2+通道ORAI1 結(jié)合,還通過與L型鈣通道蛋白CaV1.2直接相互作用,負(fù)調(diào)控其功能。而硝苯地平抑制L 型鈣通道的同時也能夠激活STIM1。H2O2誘導(dǎo)的衰老子宮內(nèi)膜干細(xì)胞中,毒胡蘿卜素耗竭內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣能夠抑制細(xì)胞內(nèi)鈣的上調(diào),這可能也與 STIM1 的激活有關(guān)[12]。STIM1缺陷還能夠通過下調(diào)IP3R3降低線粒體內(nèi)鈣含量,對線粒體的代謝功能產(chǎn)生不利影響。線粒體是氧化磷酸化的主要場所,受損的線粒體能夠釋放大量的ROS 引起細(xì)胞內(nèi)氧化還原失衡,并加速細(xì)胞衰老。我們的前期研究中觀察到SOCE 能夠通過調(diào)節(jié)線粒體動力學(xué)影響線粒體功能[13]。因此,我們猜測STIM1受損可能對細(xì)胞正常的鈣穩(wěn)態(tài),及線粒體功能產(chǎn)生不利影響,但是如何影響細(xì)胞衰老的分子機(jī)制仍然需要進(jìn)一步研究。

      綜上所述,我們從體內(nèi)和體外兩個方面的研究中發(fā)現(xiàn),STIM1 對維持血管功能穩(wěn)態(tài)非常重要,下調(diào)STIM1 表達(dá)可加速主動脈平滑肌細(xì)胞的衰老。我們通過調(diào)控STIM1 的表達(dá)觀察到STIM1 與平滑肌細(xì)胞的衰老密切相關(guān),這為血管衰老的治療提供了新的靶點(diǎn)。下一步我們將通過分子水平實(shí)驗(yàn)探討鈣感受器STIM1介導(dǎo)細(xì)胞衰老的可能機(jī)制。

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