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    雷公藤內(nèi)酯醇對三陰性乳腺癌細(xì)胞的作用及機(jī)制*

    2022-05-05 05:33:44王進(jìn)軍楊是修胡思杏
    關(guān)鍵詞:小室培養(yǎng)液亞型

    王進(jìn)軍, 文 斌, 金 陽, 楊是修, 王 可, 朱 彤, 胡思杏

    1武漢市中醫(yī)醫(yī)院風(fēng)濕科,武漢 430010 2恩施土家族苗族自治州中心醫(yī)院推拿科,恩施 445099 3湖北中醫(yī)藥大學(xué)針灸骨傷學(xué)院,武漢 430065

    乳腺癌是女性最常見的腫瘤之一,在過去的幾十年里,發(fā)病率持續(xù)上升[1]。三陰性乳腺癌(triple-negative breast cancer,TNBC)是乳腺癌的一個亞型,其典型特征是雌激素受體(estrogen receptor,ER)、孕激素受體(progesterone receptor,PR)和人表皮生長因子受體2(human epithelial growth factor receptor 2,HER2)均為陰性,目前缺乏有效的靶向治療[2]。TNBC可進(jìn)一步分為基底樣亞型1(basal-like 1,BL1)、基底樣亞型2(basal-like 2,BL2)、間充質(zhì)亞型(mesenchymal,M)和管腔雄激素受體亞型(luminal androgen receptor,LAR)[3]。其中LAR亞型高表達(dá)雄激素受體(androgen receptor,AR)及其下游靶點(diǎn)[4]。Gerratana等[5]綜述了AR的生物學(xué)進(jìn)展,并指出AR可作為TNBC亞型的新興治療靶點(diǎn)。雷公藤內(nèi)酯(triptolide,TP)是從雷公藤中提取的中藥單體,具有多種生物學(xué)功能[6-7]。研究表明,TP可通過調(diào)控細(xì)胞凋亡途徑來發(fā)揮抗癌作用[8-10]。Wu等[11]研究結(jié)果顯示,TP和AG1024以劑量依賴的方式抑制2種TNBC細(xì)胞系的增殖活力。Varghese等[12]研究表明,TP可抑制TNBC細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)自噬并激活細(xì)胞凋亡。但有關(guān)TP對AR調(diào)控機(jī)制的研究鮮有報道,因此,本研究旨在探討TP對TNBC細(xì)胞MDA-MB-468的作用及其可能的機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人三陰性乳腺癌細(xì)胞MDA-MB-468(中國科學(xué)院上海細(xì)胞庫),L15培養(yǎng)液(Solarbio公司),胎牛血清(AusGeneX公司),CCK-8(Meilune公司),雷公藤內(nèi)酯醇(Aladdin公司),Pifithrin-α(MCE公司),Matrigel膠(Jichun公司),Transwell小室(Corning公司),Annexin Ⅴ-FITC/PI凋亡檢測試劑盒(HaiGene公司),Trizol(Ambion公司),SYBR FAST qPCR Master Mix(KAPA Biosystems公司),裂解液和BCA蛋白濃度測定試劑盒(Solarbio公司),PVDF轉(zhuǎn)移膜和化學(xué)發(fā)光試劑(Millipore公司),兔抗雄激素受體抗體、兔抗p53抗體、兔抗GAPDH和羊抗兔IgG(Bioswamp公司)。

    1.2 細(xì)胞復(fù)蘇與培養(yǎng)

    將凍存的細(xì)胞從液氮罐中取出,于37℃水浴中解凍。將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至離心管中,400×g離心3 min,棄上清,加入1 mL培養(yǎng)液后轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中。加入4 mL含10%胎牛血清的L15進(jìn)行培養(yǎng),置于37℃、100%空氣的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。

    1.3 CCK-8檢測

    收集細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度接種于96孔板,每孔3×103個細(xì)胞,每孔體積為100 μL,置于37℃、100%空氣培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜,使細(xì)胞貼壁。將細(xì)胞分為5組,對照組細(xì)胞正常進(jìn)行培養(yǎng),其他4組為培養(yǎng)液中分別加入濃度為12.5、25、50和100 nmol/L TP,繼續(xù)培養(yǎng)24、48和72 h。取出細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔加入10 μL CCK-8溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h。酶標(biāo)儀檢測450 nm波長處吸光度值。計(jì)算細(xì)胞存活率,篩選TP最佳濃度(50 nmol/L)和作用時間(48 h)。

    將細(xì)胞分為4組:對照組、TP組(50 nmol/L TP作用48 h)、p53抑制劑組(20 μmol/L Pifithrin-α作用48 h)和TP+p53抑制劑組(50 nmol/L TP+20 μmol/L Pifithrin-α作用48 h)進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    1.4 Transwell小室檢測

    接種前將24孔板和Transwell小室在PBS中浸泡5 min,在Transwell小室中鋪80 μL Matrigel膠,放置30 min。采用無血清培養(yǎng)液洗滌細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1×105個/mL接種到Transwell小室內(nèi),每個小室0.5 mL細(xì)胞懸液;在Transwell小室下層24孔板中加入0.75 mL含10%胎牛血清的培養(yǎng)液,37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。取出培養(yǎng)板,棄去培養(yǎng)液,加入1 mL PBS清洗1次,每孔加入1 mL 4%甲醛室溫固定20 min。吸去固定液,PBS清洗1次,每孔加入1 mL 0.5%結(jié)晶紫溶液染色30 min后PBS清洗3次,晾干。用棉簽擦去Transwell小室內(nèi)未侵襲的細(xì)胞,顯微鏡下觀察,計(jì)數(shù)每個視野中的細(xì)胞數(shù)。

    1.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測

    收集各組細(xì)胞,取1×106個細(xì)胞重懸,400×g,4℃離心5 min,棄上清。加入1 mL PBS重懸細(xì)胞,400×g離心5 min,棄上清。加入200 μL PBS重懸細(xì)胞,加入10 μL Annexin Ⅴ-FITC和10 μL PI,輕輕混勻,4℃避光孵育30 min。加入300 μL PBS,進(jìn)行流式細(xì)胞儀上機(jī)檢測。

    1.6 qRT-PCR檢測

    收集各組細(xì)胞,加1 mL Trizol提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增體系為:10 μL SYBR FAST qPCR Master Mix,0.5 μL上游引物,0.5 μL下游引物,1 μL cDNA模板,8 μL ddH2O。反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性3 min,95℃變性5 s,56℃退火10 s,72℃延伸25 s,共40個循環(huán)。其中GAPDH作為內(nèi)參進(jìn)行樣品間的校正,使用2-ΔΔCt法進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。引物序列見表1。

    表1 qRT-PCR引物序列Table 1 qRT-PCR primer sequence

    1.7 Western blot檢測

    收集各組細(xì)胞約1×106個,加200 μL裂解液4℃,12000×g離心10 min,取上清,BCA蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度。以每孔20 μg蛋白上樣量進(jìn)行SDS-PAGE電泳分離蛋白,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。5%脫脂奶粉4℃封閉過夜,分別加入兔抗HIF-1α(稀釋比1∶1000)、兔抗VEGF(稀釋比1∶1000)、兔抗Myc(稀釋比1∶1000)、兔抗MMP-2(稀釋比1∶1000)、兔抗MMP-9(稀釋比1∶1000)和兔抗GAPDH(稀釋比1∶1000),室溫孵育1 h。洗膜后,加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG,室溫孵育1 h。洗膜后加入化學(xué)發(fā)光試劑,曝光顯影后,讀取蛋白條帶灰度值。

    1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    2 結(jié)果

    2.1 篩選TP最佳作用濃度和時間

    采用CCK-8檢測MDA-MB-468細(xì)胞增殖活力,篩選TP最佳作用濃度和時間。結(jié)果如圖1所示,不同濃度TP分別作用MDA-MB-468細(xì)胞24、48和72 h后,隨著TP濃度升高及作用時間延長,細(xì)胞增殖活力逐漸下降。當(dāng)TP濃度為50 nmol/L且處理48 h時,細(xì)胞存活率為(63.69±1.37)%。因此后續(xù)實(shí)驗(yàn)均為50 nmol/L TP作用48 h處理MDA-MB-468細(xì)胞。

    1:對照組;2:12.5 nmol/L TP;3:25 nmol/L TP;4:50 nmol/L TP;5:100 nmol/L TP圖1 TP不同作用濃度和時間對MDA-MB-468細(xì)胞增殖活力的影響Fig.1 Effects of TP at different concentrations and time lengths on proliferation activity of MDA-MB-468 cells

    2.2 TP抑制三陰性乳腺癌細(xì)胞增殖

    采用CCK-8檢測TP對MDA-MB-468細(xì)胞增殖的影響。結(jié)果如圖2所示,與對照組相比,TP組細(xì)胞增殖活力顯著降低(P<0.05);與TP組相比,p53抑制劑組細(xì)胞增殖活力顯著升高(P<0.05);與p53抑制劑組相比,TP+p53抑制劑組細(xì)胞增殖活力顯著降低(P<0.05)。

    1:對照組;2:TP組;3:p53抑制劑組;4:TP+p53抑制劑組;與對照組比較,*P<0.05;與TP組比較,#P<0.05;與p53抑制劑組比較,△P<0.05圖2 TP對MDA-MB-468細(xì)胞增殖的影響Fig.2 Effect of TP on proliferation of MDA-MB-468 cells

    2.3 TP抑制三陰性乳腺癌細(xì)胞侵襲

    采用Transwell小室檢測TP對MDA-MB-468細(xì)胞侵襲的影響。結(jié)果如圖3所示,與對照組相比,TP組侵襲細(xì)胞數(shù)顯著減少(P<0.05);與TP組相比,p53抑制劑組侵襲細(xì)胞數(shù)顯著增多(P<0.05);與p53抑制劑組相比,TP+p53抑制劑組侵襲細(xì)胞數(shù)顯著減少(P<0.05)。

    1:對照組;2:TP組;3:p53抑制劑組;4:TP+p53抑制劑組;與對照組比較,*P<0.05;與TP組比較,#P<0.05;與p53抑制劑組比較,△P<0.05圖3 TP對MDA-MB-468細(xì)胞侵襲的影響(×200)Fig.3 Effect of TP on invasion of MDA-MB-468 cells(×200)

    2.4 TP促進(jìn)三陰性乳腺癌細(xì)胞凋亡

    采用流式細(xì)胞術(shù)檢測TP對MDA-MB-468細(xì)胞凋亡的影響。結(jié)果如圖4所示,與對照組相比,TP組細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.05);與TP組相比,p53抑制劑組細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05);與p53抑制劑組相比,TP+p53抑制劑組細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。表明TP可顯著促進(jìn)MDA-MB-468細(xì)胞凋亡。

    1:對照組;2:TP組;3:p53抑制劑組;4:TP+p53抑制劑組;與對照組比較,*P<0.05;與TP組比較,#P<0.05;與p53抑制劑組比較,△P<0.05圖4 TP對MDA-MB-468細(xì)胞凋亡的影響Fig.4 Effect of TP on apoptosis of MDA-MB-468 cells

    2.5 TP對MDA-MB-468細(xì)胞中AR和p53表達(dá)的影響

    采用qRT-PCR和Western blot檢測TP對MDA-MB-468細(xì)胞中AR和p53表達(dá)水平的影響。結(jié)果如圖5和圖6所示,與對照組相比,TP組細(xì)胞中AR表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);p53表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與TP組相比,p53抑制劑組細(xì)胞中AR表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),p53表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);與p53抑制劑組相比,TP+p53抑制劑組細(xì)胞中AR表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),p53表達(dá)水平顯著升高(P<0.05)。

    1:對照組;2:TP組;3:p53抑制劑組;4:TP+p53抑制劑組;與對照組比較,*P<0.05;與TP組比較,#P<0.05;與p53抑制劑組比較,△P<0.05圖5 TP對MDA-MB-468細(xì)胞中AR和p53 mRNA表達(dá)的影響Fig.5 Effects of TP on AR and p53 mRNA expression in MDA-MB-468 cells

    1:對照組;2:TP組;3:p53抑制劑組;4:TP+p53抑制劑組;與對照組比較,*P<0.05;與TP組比較,#P<0.05;與p53抑制劑組比較,△P<0.05圖6 TP對MDA-MB-468細(xì)胞中AR和p53蛋白表達(dá)的影響Fig.6 Effects of TP on AR and p53 protein expression in MDA-MB-468 cells

    3 討論

    TNBC為乳腺癌的一種亞型,具有高度異質(zhì)性,侵襲性強(qiáng),且預(yù)后較差[13]。TP是從中藥雷公藤中分離出的一種二萜類生物活性化合物,具有有效的抗癌作用,涉及多個分子靶點(diǎn)和信號通路[14-15]。胡清福等[16]研究結(jié)果表明,TP可誘導(dǎo)TNBC細(xì)胞凋亡,其作用機(jī)制可能與抑制細(xì)胞中BRCA1的表達(dá)及磷酸化水平有關(guān)。孫巍等[17]研究結(jié)果顯示,TP可通過抑制RCC1/PARP1信號通路的傳導(dǎo),阻止順鉑引起的DNA損傷修復(fù),增強(qiáng)TNBC細(xì)胞對順鉑的敏感性。有研究顯示10%~50%的TNBC患者表達(dá)AR[18-21],且AR可作為治療TNBC的新興靶點(diǎn)[5],目前也有較多研究報道了TP在TNBC治療中的作用,但有關(guān)TP對TNBC細(xì)胞中AR的調(diào)控機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。

    本研究將不同濃度TP作用于MDA-MB-468細(xì)胞篩選出TP的最佳作用濃度后,CCK-8、Transwell小室實(shí)驗(yàn)和流式細(xì)胞術(shù)檢測的結(jié)果顯示,TP能顯著抑制MDA-MB-468細(xì)胞增殖和侵襲,促進(jìn)細(xì)胞凋亡。p53是細(xì)胞內(nèi)重要的抑癌基因,在TNBC中失活時可促進(jìn)轉(zhuǎn)移擴(kuò)散和復(fù)發(fā)[22]。姚方輝[23]研究發(fā)現(xiàn),TP可能通過上調(diào)p53啟動線粒體凋亡途徑從而促進(jìn)TNBC細(xì)胞凋亡。本研究結(jié)果顯示,p53抑制劑處理后,MDA-MB-468細(xì)胞增殖活力和侵襲能力顯著升高,凋亡率顯著降低;而TP和p53抑制劑聯(lián)合處理后,逆轉(zhuǎn)了p53抑制劑對MDA-MB-468細(xì)胞的作用,這表明TP可能通過p53發(fā)揮抑制MDA-MB-468細(xì)胞增殖和侵襲,促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用。AR是一種類固醇激素受體,是目前TNBC靶向治療的研究熱點(diǎn)。Liu等[24]和Traina等[25]研究結(jié)果表明,AR抑制劑藥物恩雜魯胺可抑制TNBC細(xì)胞增殖活力,患者臨床受益率可達(dá)33%。在本研究中,為了探討TP是否能通過p53調(diào)控AR影響MDA-MB-468細(xì)胞增殖、侵襲和凋亡,我們也設(shè)置了p53抑制劑組以及TP與p53抑制劑聯(lián)合處理組。本研究結(jié)果顯示,TP可顯著抑制MDA-MB-468細(xì)胞中AR的表達(dá);抑制p53表達(dá)可上調(diào)AR表達(dá)水平;當(dāng)TP與p53抑制劑聯(lián)合作用時,TP可逆轉(zhuǎn)p53抑制劑對AR的促進(jìn)作用,表明TP可通過p53調(diào)控MDA-MB-468細(xì)胞中AR的表達(dá)。

    綜上所述,TP可抑制TNBC細(xì)胞增殖和侵襲,促進(jìn)細(xì)胞凋亡,其作用機(jī)制可能與上調(diào)p53的表達(dá)進(jìn)而下調(diào)AR的表達(dá)水平有關(guān)。為TP治療TNBC的臨床應(yīng)用提供了理論基礎(chǔ)。

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