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    斑翅果蠅YolkProtein1基因原核表達(dá)及抗體制備

    2022-04-27 12:59:04祝晴王瑞娟覃冬云陳浩代曉彥劉艷周紫章翟一凡
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年3期

    祝晴 王瑞娟 覃冬云 陳浩 代曉彥 劉艷 周紫章 翟一凡

    摘要:斑翅果蠅(Drosophilasuzukii)是一種農(nóng)業(yè)害蟲,在世界范圍內(nèi)分布廣泛,可對多種水果產(chǎn)生不可逆損害,造成巨大經(jīng)濟損失。本試驗對斑翅果蠅YolkProtein1(Ds-YP1)基因進(jìn)行原核表達(dá),并對Ds-YP1蛋白的功能結(jié)構(gòu)域和信號肽進(jìn)行預(yù)測,克隆多肽并構(gòu)建pET-32a-c(+)-Ds-YP1原核表達(dá)載體,IPTG誘導(dǎo)表達(dá)并免疫小鼠制備抗體;用成功制備的抗體進(jìn)行斑翅果蠅蛋白WesternBlot驗證。結(jié)果表明構(gòu)建的pET-32a-c(+)-Ds-YP1表達(dá)載體在大腸桿菌中表達(dá)了His-Ds-YP1融合蛋白,通過免疫小鼠成功制備并純化了Ds-YP1多克隆抗體。制備的Ds-YP1多克隆抗體不但能識別His-Ds-YP1融合蛋白,而且能識別斑翅果蠅Ds-YP1蛋白,具有較好的特異性。本研究成功制備了斑翅果蠅Ds-YP1的多克隆抗體,對進(jìn)一步研究YolkProtein蛋白作用機制具有重要意義。

    關(guān)鍵詞:斑翅果蠅;卵黃蛋白;原核表達(dá);抗體

    斑翅果蠅(Drosophilasuzukii)是一種入侵性、破壞性作物害蟲,最早在日本發(fā)現(xiàn)[1],雄性在每個翅膀上均有一個黑點[2,3]。斑翅果蠅不像其他大多數(shù)果蠅物種只攻擊腐爛的水果[4,5],其更喜歡未受損的成熟水果[4,5];利用鋸齒狀產(chǎn)卵器可刺穿果實(如櫻桃和一些漿果)相對堅硬的表皮并在其中產(chǎn)卵,在2008年首次侵入美國時就對其造成了約50億美元的損失[6-8]。

    卵黃蛋白(yolkprotein)是一種對生殖極為重要的糖脂蛋白,是所有卵生脊椎動物和無脊椎動物卵黃的主要成分[9,10]。其前體在雌性脂肪體內(nèi)合成,釋放到循環(huán)系統(tǒng)中,并通過受體介導(dǎo)的內(nèi)吞作用運輸?shù)缴L中的卵母細(xì)胞中,或由卵巢濾泡細(xì)胞直接合成作為營養(yǎng)源被利用;經(jīng)20-羥基蛻皮酮調(diào)控后也可在少數(shù)雄性體內(nèi)合成,但量比雌蟲低數(shù)千倍[11,12]。大多數(shù)果蠅體內(nèi)存在至少兩種YP基因,有些果蠅例如黑腹果蠅(D.melanogaster)存在3種[13]。在表達(dá)方面YP1表達(dá)含量往往更高,其次是YP2,其在卵巢與脂肪體中的表達(dá)也并不一致[14]。

    有關(guān)果蠅的生殖滯育已有報道,但關(guān)于斑翅果蠅的滯育卻鮮有人研究[15]。本實驗室前期已對其滯育溫度、光周期與滯育率進(jìn)行研究,在此基礎(chǔ)上繼續(xù)對其滯育機制進(jìn)行探究[16,17]。本研究通過對斑翅果蠅的YolkProtein1(Ds-YP1)基因進(jìn)行分析,構(gòu)建pET-32a-c(+)-Ds-YP1原核表達(dá)載體,表達(dá)并制備蛋白特異性抗體,以期為卵黃蛋白的作用機制研究提供支持。

    1材料與方法

    1.1供試?yán)ハx

    斑翅果蠅采自山東省泰安市櫻桃園,由本實驗室人工飼養(yǎng)。飼養(yǎng)條件:溫度(25±1)℃,濕度(50±5)%,光周期16L∶8D。成、幼蟲皆用人工飼料飼喂,成蟲期補給20%糖水。人工飼料配方:麥麩39.1g、蔗糖20.8g、啤酒酵母5.3g、山梨酸0.17g、尼泊金乙酯0.1g、對羥基苯甲酸甲酯0.07g、抗壞血酸0.09g、維生素溶液1mL、水100mL

    1.2序列分析

    斑翅果蠅YP1基因序列下載自NCBI,序列AccessionNO.為XM_017081211.2。分別用InterProScan5(http://www.ebi.ac.uk/Tools/pfa/iprscan5/)和signalP4.1Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)對Ds-YP1的功能結(jié)構(gòu)域和信號肽進(jìn)行預(yù)測。用DNAMAN(version6)進(jìn)行序列翻譯及展示。

    1.3引物設(shè)計

    用VectorNTI軟件與NCBI的Primer-BLAST進(jìn)行引物設(shè)計(表1)。由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

    1.4RNA提取和cDNA合成

    取10只斑翅果蠅置于1.5mL離心管中,放于液氮速凍研磨,按R6934-01TotalRNAKitⅡ(Omega)試劑盒使用說明提取RNA,最后加入20μLNuclease-FreeWater洗脫RNA,-80℃保存。

    按TQ2501-02M-MLVFirstStrandcDNASynthesisKit(Omega)試劑盒說明書合成cDNA,合成產(chǎn)物保存于-20℃冰箱備用。

    1.5PCR擴增

    以斑翅果蠅cDNA為模板進(jìn)行PCR擴增,擴增體系(50μL):2×phantaMaxBuffer25μL,dNTPMix(10mmol/Leach)1μL,上下游引物Ds-YP1-1F/R或Ds-YP1-2F/R各2μL,cDNA1μL,phantaMaxSuper-FidelityDNAPolymerase1μL,Nuclease-FreeWater補足至50μL。反應(yīng)程序:94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,62℃退火30s,72℃延伸1min,共35個循環(huán);72℃延伸5min。PCR結(jié)束后用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(120V、25min)。

    1.6重組表達(dá)載體構(gòu)建

    擴增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,切取凝膠中的目標(biāo)條帶,用膠回收試劑盒(北京聚合美生物科技有限公司)進(jìn)行回收。將膠回收產(chǎn)物與pET-32a-c(+)(Novagen)一起用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ(Thermo)、NotⅠ(Thermo)進(jìn)行雙酶切。將酶切后DNA產(chǎn)物與載體產(chǎn)物膠回收后,用T4連接酶(Takara)進(jìn)行連接,組成pET-32a-c(+)-Ds-YP1重組表達(dá)載體。

    將酶連產(chǎn)物轉(zhuǎn)入EscherichiacoliDH5α(天根生化科技有限公司),在含有氨芐青霉素抗性的LB固體培養(yǎng)基上涂板,用無菌玻璃涂布器將菌液輕輕涂布均勻,封口膜封口后,倒置于37℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)12~16h。挑取單菌落至LB液體培養(yǎng)基中,37℃過夜培養(yǎng),進(jìn)行陽性克隆鑒定,體系為10μL:2×TaqMasterMix5μL,T70.4μL,T7Terminator0.4μL,菌液1μL,ddH2O補足至10μL,反應(yīng)程序同1.5。

    將鑒定正確的菌液送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行測序,測序結(jié)果用VectorNTI軟件進(jìn)行比對。選擇測序結(jié)果正確的克隆提取質(zhì)粒(Vazyme,F(xiàn)astPurePlasmidMiniKit),-20℃保存。

    1.7蛋白誘導(dǎo)表達(dá)

    將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入E.coliBL21(天根生化科技有限公司)中,在含有氨芐青霉素抗性的LB固體培養(yǎng)基上%板,待長出菌落后挑單菌落于LB液體培養(yǎng)基中,37℃、220r/min培養(yǎng),菌液OD600值達(dá)到0.6左右時加入IPTG誘導(dǎo)劑至終濃度0.1mmol/L,37℃、150r/min培養(yǎng)6h,之后4℃、8000r/min離心10min收集菌體。

    在未誘導(dǎo)與誘導(dǎo)6h樣品菌體中加1×PBS(0.2g/mL),振蕩懸浮后用超聲波細(xì)胞粉碎機(寧波新芝生物科技有限公司)進(jìn)行破碎:功率20%,超聲每次2s,間隔3s,破碎至菌體均勻清亮。

    離心收集上清和沉淀,上清作為蛋白上清樣品;沉淀經(jīng)含8mol/L脲的1×PBS溶解后再離心得到上清液作為包涵體;超聲破碎后未經(jīng)離心的樣品作為混合物樣品。

    將蛋白上清、包涵體和混合物樣品在蛋白電泳儀(Bio-Rad)上進(jìn)行SDS-PAGE電泳,恒壓120V電泳至溴酚藍(lán)條帶跑出膠板下邊緣關(guān)閉電泳儀。將蛋白膠于考馬斯亮藍(lán)R250染色液中染色30min,過夜脫色后觀察蛋白表達(dá)情況。

    1.8WesternBl

    在SDS-PAGE電泳結(jié)束后,用濕轉(zhuǎn)電泳儀(Bio-Rad)在冰浴條件下進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,300mA恒流轉(zhuǎn)膜120min。結(jié)束后將0.45μmPVDF膜(MilliPore)浸入封閉液中,搖床常溫孵育1h,用TBST漂洗10min;加入用BSA稀釋10000倍的MouseantiHis-TagmAb(ABclonal)4℃過夜孵育;回收一抗后再用TBST漂洗3遍,每遍10min;加入用BSA稀釋10000倍的辣根酶標(biāo)記山羊抗小鼠IgG(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司),常溫?fù)u床孵育2h;TBST漂洗4遍,每遍10min;最后使用極超敏化學(xué)發(fā)光試劑盒(山東思科捷生物技術(shù)有限公司)顯色,于ChemiScope系列熒光及化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(上海勤翔科學(xué)儀器有限公司)中顯影。

    1.9抗體制備

    目的蛋白條帶切膠-20℃保存。將蛋白膠條放入干凈研缽中,研磨至黏稠狀,加0.9%生理鹽水稀釋備用。SPF級KM小鼠(濟南朋悅實驗動物繁育有限公司)7只,每只20g左右,喂養(yǎng)3天后用1mL針管45度角注射腹部位,每次每只小鼠注射300~500μL,注意排盡針管空氣。每周免疫一次,連續(xù)4周,第5周摘眼球取血。

    血液放于1.5mL離心管中,立即放入37℃水浴鍋1h,然后4℃放置6h,之后4℃、12000r/min離心15min,取上清,液氮速凍后放于-80℃凍存。

    1.10果蠅總蛋白提取

    提取蛋白全程均在冰上操作,研磨棒需預(yù)冷。取15只斑翅果蠅放入液氮速凍,加200μL研磨液進(jìn)行冰浴研磨,然后冰上靜置30min,每隔幾分鐘混勻一次;離心機預(yù)冷至4℃,12000r/min離心5min,取上清;加入蛋白上樣緩沖液100℃金屬浴5min;-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    2結(jié)果與分析

    2.1序列分析及克隆

    Ds-YP1序列開放閱讀框為1320bp,編碼蛋白共439個氨基酸。Ds-YP1蛋白具有信號肽(1~19aa)和完整的vitellgenin功能結(jié)構(gòu)域(129~410aa,圖1),去除信號肽后經(jīng)軟件預(yù)測分析,分子量為46.96kD。對完整的開放閱讀框進(jìn)行PCR克隆及測序,結(jié)果表明,序列長度與數(shù)據(jù)庫序列一致,且無突變堿基(圖2)。

    2.2重組表達(dá)載體的構(gòu)建

    首先選取不含信號肽的部分序列進(jìn)行擴增(圖3),將擴增目的片段與pET-32a-c(+)載體經(jīng)EcoRⅠ、NotⅠ酶切,經(jīng)連接轉(zhuǎn)化后構(gòu)成重組表達(dá)載體pET-32a-c(+)-Ds-YP1。構(gòu)建的載體用通用引物經(jīng)PCR和雙酶切鑒定,得到的片段大小與預(yù)期一致(圖4)。測序結(jié)果發(fā)現(xiàn)重組表達(dá)載體中的插入片段與Ds-YP1基因的序列完全一致,且無移碼現(xiàn)象。以上結(jié)果說明,pET-32a-c(+)-Ds-YP1重組表達(dá)載體構(gòu)建成功,可以用來誘導(dǎo)表達(dá)重組蛋白。

    2.3重組蛋白在大腸桿菌中誘導(dǎo)表達(dá)

    將未誘導(dǎo)與誘導(dǎo)樣品的蛋白上清、包涵體和混合物樣品分別進(jìn)行SDS-PAGE電泳,考馬斯亮藍(lán)R250染色后,發(fā)現(xiàn)目的蛋白在蛋白上清、包涵體及混合物中都有表達(dá),且包涵體中表達(dá)量最高(圖5)。從WesternBlot檢測結(jié)果也可看出,目的蛋白與His抗體發(fā)生特異結(jié)合且與預(yù)期大小一致,證明重組蛋白正確表達(dá)(圖6)。

    2.4抗體制備與檢測

    將包涵體中的重組蛋白經(jīng)SDS-PAGE電泳后切膠回收免疫KM小鼠,4周后收集血清,檢測血清中的抗體Anti-Ds-YP1。將血清稀釋5000倍后,檢測未誘導(dǎo)與誘導(dǎo)樣品,結(jié)果顯示,條帶單一且效價高(圖7)。隨后用制備的Anti-Ds-YP1抗體WesternBlot檢測斑翅果蠅蛋白樣品,結(jié)果顯示,在抗體稀釋18000倍時,條帶清晰,信號強(圖8)。

    以上結(jié)果表明制備的Anti-Ds-YP1特異性強且效價高,結(jié)果與預(yù)期相符,可用于后續(xù)試驗。

    3討論與結(jié)論

    卵黃蛋白是卵黃發(fā)生時沉積在卵內(nèi)供胚胎發(fā)育營養(yǎng)所需的卵內(nèi)貯藏蛋白。昆蟲的卵黃蛋白主要分為卵黃蛋白原(vitellogenin)、卵黃多肽(yolkpolypeptides)和小卵黃蛋白(minorYP)三種[18]。其中卵黃蛋白原是一類大分子量的糖脂復(fù)合蛋白,與非昆蟲的卵黃蛋白原進(jìn)化上同源,可能起源于共同的祖先[19]。卵黃多肽存在于高等雙翅目昆蟲中,功能等同于其它昆蟲卵黃蛋白原,但是分子量較小,約為45kD[20]。小卵黃蛋白是在鱗翅目昆蟲卵內(nèi)分布的一類特異性蛋白[21]。本研究中,斑翅果蠅的卵黃蛋白大小為46.96kD,屬于卵黃多肽。

    雖然卵黃多肽功能上與卵黃蛋白原相似,但其進(jìn)化上卻完全不同,卵黃蛋白原與脊椎動物的血清載脂蛋白B(apolipoproteinB)具有較高的同源性,卵黃多肽與肝酯酶(hepaticlipases)和胰酯酶(pancreaticlipases)進(jìn)化上同源。在黑腹果蠅中有3種YP,主要在脂肪體和卵巢泡細(xì)胞中合成,但在不同組織中的分布和表達(dá)不同[22]。果蠅(Drosophilagrimshawi)中也有3種YP,在脂肪體中YP1合成最多,而YP2和YP3較少;在卵巢內(nèi),YP2合成最多,YP1較少,而YP3幾乎不存在[23]。本試驗用抗體檢測斑翅果蠅YP(圖8),發(fā)現(xiàn)在目的條帶上方存在條帶,這可能是斑翅果蠅的其它YP,其不同YP的含量不同可能與果蠅的發(fā)育時期和組織分布有關(guān)。

    本試驗通過構(gòu)建重組質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化大腸桿菌后進(jìn)行原核表達(dá),并用小鼠進(jìn)行抗原免疫,成功獲得了高質(zhì)量抗體。后續(xù)研究將利用該抗體對卵黃蛋白在斑翅果蠅中的功能進(jìn)行分析。本研究結(jié)果將有助于對斑翅果蠅生殖發(fā)育等機制開展更深入的研究,為果蠅防治工作提供新的途徑。

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