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    殺菌/中和內(nèi)毒素的雙功能雜合抗菌肽LLH 的設(shè)計(jì)及特性研究

    2022-04-20 12:04:30王瑞琪劉辰鵬姚宏紀(jì)熊婧妍李國玉
    關(guān)鍵詞:雜合抗菌肽內(nèi)毒素

    王瑞琪,劉辰鵬,姚宏紀(jì),熊婧妍,李國玉,張 勇

    (1. 海南醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,海南 ??冢?571199;2. 哈爾濱商業(yè)大學(xué)藥物工程技術(shù)研究中心,黑龍江 哈爾濱

    150076)

    隨著抗生素耐藥問題日趨嚴(yán)峻,細(xì)菌感染對(duì)人類健康的威脅越來越大。開發(fā)新型抗菌藥物對(duì)于緩解抗生素耐藥問題及臨床細(xì)菌感染治療壓力迫在眉睫,尤其針對(duì)革蘭氏陰性細(xì)菌[1]。革蘭氏陰性細(xì)菌治療過程中除了抑制或殺滅細(xì)菌外,臨床上還面臨著細(xì)菌殺滅過程中釋放的內(nèi)毒素引起的炎癥因子風(fēng)暴等問題[2],如敗血癥的治療[3]。設(shè)計(jì)新型具有殺菌和中和內(nèi)毒素雙重功能的藥物是解決革蘭氏陰性細(xì)菌感染治療過程面臨的內(nèi)毒素問題的有效途徑之一。

    LBP(86-99)(RVQGRWKVRASFFK)為L(zhǎng)PS(內(nèi)毒素)結(jié)合蛋白,能夠與血清中內(nèi)毒素結(jié)合,發(fā)揮中和內(nèi)毒素的作用,但其對(duì)革蘭氏陰性細(xì)菌的抗菌活性較弱[4]。HLF(1-11)(GRRRRSVQWCA)為人源的乳鐵蛋白多肽,無毒性,穩(wěn)定性好,抗菌譜廣,但無內(nèi)毒素中和效果[5]。本研究通過GGGS 的4 肽Linker 實(shí)現(xiàn)LBP(86-99)與HLF(1-11)多肽的雜合,得到具有高抗菌活性和高效內(nèi)毒素中和作用的新型雜合抗菌LLH,為新型抗革蘭氏陰性細(xì)菌的抗菌藥物的設(shè)計(jì)與開發(fā)提供新思路和參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌 種 大 腸 桿 菌Escherichia coli(E. coli)ATCC 25922,E. coliATCC DH5α 由 本 實(shí) 驗(yàn) 室保存。

    1.1.2 主要試劑及儀器 酵母浸粉,胰蛋白胨,瓊脂,NaCl 等試劑購自于北京索萊寶科技有限公司;顯色基質(zhì)鱟試劑盒購自于北京索萊寶科技有限公司;主要儀器有海爾生物安全柜(HR900-IIA2);細(xì)菌恒溫培養(yǎng)箱(INNOVA44R),多功能酶標(biāo)儀(Syn?ergyHTX),離心機(jī)等。

    1.2 方法

    1.2.1 雙功能雜合肽的設(shè)計(jì)和合成 LBP(86-99)(RVQGRWKVRASFFK)為具有中和內(nèi)毒素功能的多肽,但抗菌活性較弱;HLF(1-11)(GRRRRS?VQWCA)為人源的乳鐵蛋白多肽,具有一定的廣譜抗菌活性,抗菌活性較弱,不具有中和內(nèi)毒素功能。通過GGGS 4 肽Linker 進(jìn)行偶聯(lián)設(shè)計(jì)出新型的雜合肽LLH,見表1。各多肽均由生工生物工程(上海)股份有限公司采用固相合成法合成,純度>98%。采用EMBOSS 和ExPASy 生物信息學(xué)相關(guān)軟件對(duì)各多肽進(jìn)行理化結(jié)構(gòu)參數(shù)、二級(jí)結(jié)構(gòu)、疏水性進(jìn)行預(yù)測(cè)分析。

    1.2.2 最小抑菌濃度(MIC)和最小殺菌濃度(MBC)測(cè)定 最小抑菌濃度測(cè)定方法參考前期研究[6],具體如下:合成后多肽和陽性藥氨芐青霉素(Amp)用無菌LB 液體培養(yǎng)基配制成濃度為256 μmol/L 的母液,并進(jìn)行2 倍比稀釋。取50 μL 系列不同濃度的多肽溶液和Amp 溶液加入無菌96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每個(gè)濃度3 個(gè)平行,以無菌LB 液體培養(yǎng)基為陰性對(duì)照,制備MIC 板。E. coliATCC 25922 和E. coliATCC DH5α 采 用LB 液 體 培 養(yǎng) 基培養(yǎng),37 ℃振蕩培養(yǎng)至OD600nm為0.4,將大腸桿菌菌液制備成濃度為0.5 麥?zhǔn)媳葷針?biāo)準(zhǔn)的菌懸液,用預(yù)熱(37 ℃)無菌LB 液體培養(yǎng)基1 000 倍稀釋,向每個(gè)制備好的MIC 板樣品孔中加50 μL 菌懸液(初始菌濃度約為1.0×105cfu/mL),37 ℃恒溫孵育16~18 h,觀察并記錄MIC 結(jié)果。并對(duì)各處理孔的菌液進(jìn)行10 倍梯度稀釋后,每個(gè)梯度稀釋液取50 μL 涂布于LB 固體培養(yǎng)基,3 個(gè)重復(fù),37 ℃恒溫孵育16~24 h,直至長(zhǎng)出菌落,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。以多肽處理孔中菌落數(shù)低于初始接種量的99.9%的培養(yǎng)孔所對(duì)應(yīng)的最低濃度為MBC。

    1.2.3 殺菌動(dòng)力學(xué)曲線測(cè)定 同1.2.2 制備E. coliATCC 25922 和ATCC DH5α 的1.0×105cfu/mL 濃度的菌懸液。取50 μL 菌懸液至每個(gè)96 孔板的培養(yǎng)孔中,并分別加入終濃度為1×,2×,4×MIC 的LLH 雜合肽溶液,37 ℃培養(yǎng)箱孵育。同時(shí),加入相同體積的LB 培養(yǎng)基和2×MIC 終濃度的Amp 作為空白對(duì)照和陽性對(duì)照處理。分別在0、1、2、4、6、12 h時(shí)間點(diǎn)取樣涂布LB 固體培養(yǎng)基,37 ℃倒置培養(yǎng)18~24 h,統(tǒng)計(jì)單菌落數(shù),繪制時(shí)間-殺菌曲線。

    1.2.4 內(nèi)毒素中和實(shí)驗(yàn) 樣品制備:如1.2.2 制備E.coliATCC 25922 菌懸液,終濃度為1.0×105cfu/mL(三角瓶250 ℃干烤2 h 去除熱原,其它耗材均采購無熱原耗材)。向96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中加入90 μL菌懸液,并加入10 μL 一定濃度的LLH 雜合肽,使終濃度為4×MIC,加入無熱原等體積生理鹽水和2×MIC Amp 為對(duì)照處理。以不接種細(xì)菌和藥物,加入等體積無熱原生理鹽水組為空白對(duì)照組。每組6 個(gè)復(fù)孔,37 ℃靜置孵育處理2 h。

    細(xì)菌內(nèi)毒素檢測(cè):每個(gè)處理組選擇3 個(gè)平行復(fù)孔,收集菌液上清,用于內(nèi)毒素水平測(cè)定。其檢測(cè)原理如下:鱟試劑為鱟科動(dòng)物東方鱟的血液變形細(xì)胞溶解物的冷凍干燥品,細(xì)菌內(nèi)毒素能夠激活鱟試劑中的C 因子,激活凝固酶原形成凝固酶,進(jìn)而分解顯色基質(zhì)產(chǎn)生黃色的對(duì)硝基苯胺(pNA),pNA 與偶氮化試劑偶聯(lián)形成pNA 偶氮化物(λ=545 nm)。在一定時(shí)間內(nèi),pNA 偶氮化物的生成量與細(xì)菌內(nèi)毒素濃度成正相關(guān)。具體測(cè)定方法和操作步驟參考顯色基質(zhì)鱟試劑盒(T7571,索萊寶)。

    細(xì)菌數(shù)量檢測(cè):每個(gè)處理組選擇3 個(gè)平行復(fù)孔,用于菌落平板計(jì)數(shù),檢測(cè)培養(yǎng)液中活菌數(shù)量,評(píng)價(jià)LLH 的抗菌活性。

    1.2.5 溶血性測(cè)定 LLH 雜合肽細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn)通過多肽對(duì)兔紅細(xì)胞溶血性進(jìn)行測(cè)定,參考方法如下。將LLH 雜合肽溶解于無菌生理鹽水中,配置成濃度為230 μmol/L(800 μg/mL)的母液,2 倍倍比稀釋至濃度為0.1 μg/mL。通過兔耳緣靜脈采集5 mL 血液,4 ℃,1 500 r/min,離心5 min,去血清,收集紅細(xì)胞,無菌生理鹽水洗滌紅細(xì)胞3 次,至上清無色透明。制備8%紅細(xì)胞懸浮液,取100 μL 紅細(xì)胞懸浮液和LLH 雜合肽系類濃度溶液加入96 孔板,37 ℃孵育處理1 h,1 500 r/min 離心5 min,吸取上清至ELISA 酶標(biāo)板檢測(cè)540 nm 下紫外吸光值。無菌生理鹽水和0.1% Triton X-100 分別為0%和100%溶血對(duì)照實(shí)驗(yàn)。溶血程度計(jì)算公式如下:

    溶血度(%)=[(Abs540nm雜合肽LLH-Abs540nm生理鹽水)/(Abs540nm0.1% Triton X-100-Abs540nm生理鹽水)]×100%

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    本研究相關(guān)數(shù)據(jù)采用Graphpad Prism 5.0 進(jìn)行數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析和制圖,不同處理組間兩兩比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用Two-way ANOVA 檢驗(yàn),P<0.05 為差異顯著。

    2 結(jié)果

    2.1 多肽設(shè)計(jì) -

    以HLF 和LBP 為 母 體 肽,通 過GGGS 4 肽Linker 實(shí)現(xiàn)LBP 與HLF 多肽雜合,設(shè)計(jì)獲得LBPLinker-HLF(LLH)雜合肽。相關(guān)多肽的分子量、電荷數(shù)、等電點(diǎn),兩親性和疏水性參數(shù)見表1。相對(duì)于母體肽HLF,雜合肽LLH 所攜帶電荷數(shù)增加至+9,兩親性指數(shù)增加至45.33,另外,疏水參數(shù)GRA?VY 值降低。

    表1 多肽序列及理化參數(shù)Tab 1 Polypeptide sequence and physicochemical parameters

    2.2 LLH 雜合肽二級(jí)結(jié)構(gòu)特征

    通過EMBOSS/garnier 軟件GOR 法對(duì)LLH 二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果表明,LLH 主要呈現(xiàn)β-折疊和β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu),見圖1A;通過EMBOSS/Pepwin?dowall 分析序列疏水性情況,結(jié)果表明,LLH 的10aa-20aa 肽段呈現(xiàn)較強(qiáng)的疏水性,兩端呈現(xiàn)親水特征,見圖1B。

    圖1 LLH 二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)和疏水性預(yù)測(cè)Fig 1 Prediction of LLH secondary structure and hydro?phobicity

    2.3 LLH 的抗菌作用

    選 擇2 株E. coli菌 株(ATCC 25922,ATCC DH5α)對(duì)LBP(86-99)和HFL(1-11)抗大腸桿菌活性進(jìn)行評(píng)估,結(jié)果如表2 所示,LBP(86-99)和HFL(1-11)均表現(xiàn)一定的抗大腸桿菌活性,其對(duì)ATCC 25922 的MIC 分別為16 μmol/L 和64 μmol/L,而只有LBP(86-99)對(duì)ATCC DH5α 表現(xiàn)出一定的抗菌活 性,MIC 為8 μmol/L。 雜 合 抗 菌 肽LLH 對(duì)ATCC 25922 和ATCC DH5α 的MIC 分 別 為4μmol/L 和4 μmol/L,相對(duì)于母體肽,抗菌活性明顯增強(qiáng)。進(jìn)一步對(duì)MBC 進(jìn)行測(cè)定,LLH 雜合肽抗大腸桿菌的MBC 值均是MIC 值的1~2 倍,LLH 雜合肽具有較強(qiáng)的殺菌作用。與傳統(tǒng)抗生素Amp 相比,綜合MIC 和MBC 測(cè)定結(jié)果,雜合肽LLH 活性優(yōu)于Amp,見表2。

    表2 雜合肽LLH 的MIC 和MBC (μmol/L)Tab 2 MIC and MBC of heterozygous peptide LLH (μmol/L)

    2.4 LLH 的殺菌動(dòng)力特征

    通過體外殺菌-時(shí)間曲線探究LLH 雜合肽在不同濃度和時(shí)間下的殺菌能力進(jìn)行檢測(cè),選擇大腸桿菌ATCC 25922 和ATCC DH5α 作為代表菌株。經(jīng)活菌計(jì)數(shù)檢測(cè)E. coliATCC 25922 和E. coliATCC DH5α 初 始接種量 為(4.54±0.09)log10cfu/mL 和(4.91±0.11)log10cfu/mL,未經(jīng)LLH 干預(yù)處理的,37oC 孵育12 h 后,E. coliATCC 25922 和E. co?liATCC DH5α 分 別 增 加 至(8.27±0.10)log10cfu/mL 和(8.41±0.09)log10cfu/mL。 經(jīng)1×MIC,2×MIC、4×MIC 的LLH 處 理1 h 后,E. coliATCC 25922 菌落數(shù)分別減少了1.1、1.5、2.2 log10cfu/mL,而E. coliATCC DH5α 菌落數(shù)分別減少了0.6、1.4、1.9 log10cfu/mL,由此表明,1 h 處理后,90%以上的E. coli均被殺死。處理12 h 后,E. coliATCC 25922 菌落數(shù)分別減少了3.2、3.5、3.5 log10cfu/mL,見圖2A,而E. coliATCC DH5α 菌落數(shù)分別減少了3.5、3.9、3.9 log10cfu/mL。相對(duì)于未經(jīng)LLH 處理組的LB medium 組,4×MIC 的LLH 組菌落數(shù)下降了7.2 log10cfu/mL。由此可見,LLH 對(duì)E. coli表現(xiàn)出較強(qiáng)的殺菌活性,且持續(xù)12 h 未見反彈,見圖2。

    圖2 LLH 雜合肽殺菌動(dòng)力學(xué)曲線Fig 2 Bactericidal kinetic curve of LLH heterozygous peptide

    2.5 LLH 雜合肽中和內(nèi)毒作用

    選擇E.coliATCC 25922 作為受試菌,進(jìn)一步研究LLH 雜合肽殺菌過程對(duì)內(nèi)毒素釋放的影響。4×MIC 的LLH 雜合肽處理2 h 后,E. coliATCC 25922 數(shù) 量 顯 著 下 降3.5 log10cfu/mL,2×MIC 的Amp 菌落數(shù)下降2.59 log10cfu/mL,提示4×MIC LLH 雜合肽和2×MIC Amp 均表現(xiàn)出了一定的殺菌作用。

    相同處理?xiàng)l件,筆者通過對(duì)細(xì)菌培養(yǎng)液上清中內(nèi)毒素水平進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果表明,4×MIC LLH 雜合肽處理組相對(duì)于正常組,內(nèi)毒素檢測(cè)水平顯著降低,而2×MIC Amp 處理組內(nèi)毒素水平顯著高于4×MIC LLH 雜合肽處理組。與正常組相比,2×MIC Amp 處理組的內(nèi)毒水平也顯著升高,見圖3。

    圖3 LLH 雜合肽對(duì)內(nèi)毒素的中和作用Fig 3 Neutralization effect of LLH hybrid peptide on endotoxin

    2.6 LLH 雜合肽的溶血性

    筆者進(jìn)一步探究了LLH 雜合肽對(duì)哺乳動(dòng)物紅細(xì)胞的破壞而引起的溶血性情況。結(jié)果如圖,0~115 μmol/L(400 μg/mL)的不同濃度LLH 雜合肽溶血性程度都低于1%,低于200 μg/mL 濃度時(shí),溶血性低于0.1%,見圖4。因此,LLH 雜合肽對(duì)哺乳動(dòng)物紅細(xì)胞不具有毒性,可應(yīng)用于哺乳動(dòng)物體內(nèi)殺菌,具有潛在臨床應(yīng)用價(jià)值。

    圖4 LLH 的溶血性Fig 4 Hemolysis of LLH

    3 討論

    抗生素耐藥問題一直以來都是臨床抗感染治療面臨的重要挑戰(zhàn),尤其是革蘭氏陰性菌的感染,對(duì)人類健康造成極大威脅[7,8]。為了緩解傳統(tǒng)抗生素耐藥性壓力,新型的抗耐藥性、高活性、低毒性的抗菌藥物開發(fā)刻不容緩??咕淖鳛榫哂歇?dú)特殺菌機(jī)制,高效快速殺菌活性及不易產(chǎn)生耐藥性等特點(diǎn)[9],被認(rèn)為是潛在新型抗菌藥物,已被廣泛關(guān)注并寄予厚望。

    對(duì)于革蘭氏陰性菌感染,尤其以敗血癥,膿毒癥為代表相關(guān)疾病,其治療過程中單純的殺菌還不能滿足臨床治療目的[10,11]。革蘭氏陰性細(xì)菌生長(zhǎng)或抗菌藥物殺菌的過程往往會(huì)伴隨內(nèi)毒素的釋放,進(jìn)而誘發(fā)炎癥因子風(fēng)暴,誘發(fā)相關(guān)疾病,如敗血癥,嚴(yán)重威脅患者生命[12]。殺滅細(xì)菌和中和內(nèi)毒是革蘭氏陰性細(xì)菌治療面臨的重要挑戰(zhàn)。本研究基于此雙重功能,通過GGGS 柔性linker 實(shí)現(xiàn)兩個(gè)分別具有內(nèi)毒素中和作用和快速殺菌作用的多肽雜合,實(shí)現(xiàn)雙重功能有效發(fā)揮,并不具有顯著溶血性。

    基于小肽柔性Linker 為鉸鏈連接兩個(gè)具有功能活性的多肽或蛋白質(zhì)亞基實(shí)現(xiàn)雙重功能的發(fā)揮是新型多功能多肽或蛋白藥物設(shè)計(jì)和開發(fā)的效手段[12-14]。這些Linker 多以(GGGGS)n 或(G)n 形式,被廣泛用于不同功能的多肽或蛋白的融合構(gòu)建,實(shí)現(xiàn) 多 種 功能 的 發(fā) 揮,如LHP7[14]和Syn-GNU7 雜 合肽[12]??紤]到母體肽均為短的多肽,盡可能減少柔性鉸鏈區(qū)Linker 序列對(duì)母體肽結(jié)構(gòu)和功能影響,筆者選擇GGGS 4 肽Linker。結(jié)果表明,這種雜合構(gòu)建的新型LLH 雜合肽具有內(nèi)毒素中和作用和更強(qiáng)的抗菌活性。結(jié)果也進(jìn)一步證實(shí)了,通過柔性Link?er 實(shí)現(xiàn)多功能多肽或蛋白的設(shè)計(jì)策略是可行的。

    新型雜合抗菌肽LLH 表現(xiàn)出類似LBP(86-89)的內(nèi)毒素中和作用(LPS 結(jié)合作用),同時(shí),表現(xiàn)出顯著的抗E. coli活性(MIC,4~8 μmol/L),且強(qiáng)于母體肽LBP 和HLF。通過二級(jí)結(jié)構(gòu)分析表明,LLH 雜合肽正電荷數(shù)增加至+9,兩親性和疏水性位于兩母體肽之間。諸多研究表明,抗菌肽的正電荷跟其抗菌活性密切相關(guān),正電荷越多,其與細(xì)菌細(xì)胞膜結(jié)合作用可能越強(qiáng)[15,16]。同時(shí),兩親性和疏水性的平衡也是抗菌肽抗菌活性發(fā)揮的關(guān)鍵因素[15]。因此,筆者推測(cè),LLH 雜合肽抗菌活性的增強(qiáng)可能與其正電荷的增加及兩親性和疏水性的平衡有關(guān),具體機(jī)制有待后續(xù)進(jìn)一步的研究。

    溶血性是反映藥物對(duì)哺乳動(dòng)物紅細(xì)胞毒性的重要參數(shù)??咕拈_發(fā)為臨床抗菌藥物的限制因素之一就是細(xì)胞毒性[17]。一些抗菌肽雖然具有廣泛的抗菌活性和獨(dú)特抗菌特性,但其無差別破壞細(xì)胞膜易引起溶血[18]??茖W(xué)家可以通過對(duì)抗菌肽進(jìn)行改造,如增加柔性Linker[19]、側(cè)鏈[20]、凈電荷[21]、疏水性[22]等方式,提高抗菌肽的殺菌活性同時(shí)降低溶血性。筆者通過柔性Linker 連接實(shí)現(xiàn)的中和內(nèi)毒素和增效抗菌活性的新型雙功能雜合肽LLH 并未表現(xiàn)出顯著的溶血性,表明臨床應(yīng)用具有一定的安全性。

    總之,借助柔性Linker GGGS 多肽,實(shí)現(xiàn)了母體肽LBP(86-99)和HFL(1-11)中和內(nèi)毒素和高效抗菌活性雙重功能的發(fā)揮,為新型抗大腸桿菌等革蘭氏陰性細(xì)菌感染藥物的設(shè)計(jì)提供思路和參考。同時(shí),LLH 表現(xiàn)出顯著中和內(nèi)毒素作用,強(qiáng)大快速的抗大腸桿菌活性(MIC,4~8 μmol/L)和無溶血性,提示其是潛在用于治療大腸桿菌感染的抗菌肽。

    作者貢獻(xiàn)度說明:

    張勇:負(fù)責(zé)實(shí)驗(yàn)的設(shè)計(jì),數(shù)據(jù)的處理,文章的撰寫;李國玉:負(fù)責(zé)文稿審校,實(shí)驗(yàn)指導(dǎo);王瑞琪、劉辰鵬、姚宏紀(jì)、熊婧妍:負(fù)責(zé)實(shí)驗(yàn)的實(shí)施,數(shù)據(jù)的收集。

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