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    sRNA STnc1220基因缺失株對(duì)鼠傷寒沙門菌生物學(xué)特性和致病力的影響

    2022-03-22 10:04:32寧程程季春輝王立霞張亞萍孟慶玲才學(xué)鵬
    華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2022年1期
    關(guān)鍵詞:沙門親本質(zhì)粒

    李 娜,寧程程,郭 蘊(yùn),季春輝,王立霞,張亞萍,孟慶玲,喬 軍,才學(xué)鵬

    (1.石河子大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,新疆 石河子 832003;2.中國(guó)獸藥監(jiān)察所,北京 100081)

    沙門菌被世界衛(wèi)生組織(World Health Organization,WHO)確定為引起重大疾病和死亡的食源性病原體[1]。沙門菌在自然界中分布廣泛,可感染人類、家畜和家禽,引起人類腸炎和畜禽、犬、貓及試驗(yàn)動(dòng)物發(fā)生副傷寒;同時(shí)還可導(dǎo)致在牛、羊和馬流產(chǎn)及急性胃腸炎,具有較強(qiáng)的致病性。對(duì)于老人、兒童以及有免疫缺陷的人還會(huì)造成生命危險(xiǎn)[2]。抗生素的長(zhǎng)期使用,導(dǎo)致沙門菌引起的感染日趨嚴(yán)重,對(duì)全球公共衛(wèi)生造成嚴(yán)重威脅[3-4]。因此,深入研究沙門菌侵染和致病的分子機(jī)制,對(duì)于該病的科學(xué)防控及公共衛(wèi)生安全具有重要的意義。

    細(xì)菌非編碼小RNA(sRNAs)是細(xì)菌的一種重要調(diào)控分子,通常位于基因間隔區(qū)(IGRs)中,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)基因表達(dá)方面發(fā)揮重要作用[5-6]。細(xì)菌sRNAs在不同的環(huán)境中廣泛表達(dá),可調(diào)節(jié)包括鐵穩(wěn)態(tài)、外膜蛋白的生物合成、群體感應(yīng)和毒力等多種生命活動(dòng)過(guò)程[7-8]。近年來(lái)隨著高通量測(cè)序技術(shù)的不斷發(fā)展,已在沙門菌 SL1344株的基因組中發(fā)現(xiàn)并鑒定了280種sRNAs[9],然而其大部分sRNAs的生物學(xué)特性暫不清楚,Srikumar等[10]研究發(fā)現(xiàn),sRNASTnc1220在沙門菌感染巨噬細(xì)胞時(shí)該基因表達(dá)水平顯著下調(diào),推測(cè)STnc1220可能與沙門菌侵染及環(huán)境應(yīng)激相關(guān)。然而,至今sRNASTnc1220生物學(xué)功能尚不清楚。

    本研究通過(guò)克隆STnc1220基因,分析其分子特征,并利用λ-Red重組技術(shù)對(duì)sRNASTnc1220進(jìn)行基因缺失株的構(gòu)建,比較缺失株與親本株之間生物學(xué)特性的差異,旨在為揭示sRNASTnc1220在沙門菌環(huán)境應(yīng)激和毒力的調(diào)控作用及機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 菌株、質(zhì)粒和試劑

    鼠傷寒沙門菌SL1344標(biāo)準(zhǔn)毒株、大腸桿菌(E.coli)DH5α、RAW264.7細(xì)胞、質(zhì)粒 pKD46、pKD3、pCP20和PBR322 均由石河子大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室保存。試驗(yàn)動(dòng)物均為6周齡BALB/c小鼠(雌雄各半),購(gòu)自新疆醫(yī)科大學(xué)。PCR Mix、DNA Marker,pMD19-T載體和T4DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶均購(gòu)自大連寶生物公司。

    1.2 引物設(shè)計(jì)

    根據(jù)GenBank中已經(jīng)發(fā)布的沙門菌 SL1344株基因組序列(登錄號(hào):FQ312003.1),使用DNAStar軟件設(shè)計(jì)引物。P1/P2用于sRNASTnc1220擴(kuò)增及缺失驗(yàn)證,P3/P4引物用于擴(kuò)增打靶片段,其5′端含有50 bp部分與sRNASTnc1220基因序列同源,3′端與氯霉素抗性基因cat(來(lái)源于質(zhì)粒pKD3)同源。引物均由北京華大生物公司合成(表 1)。

    表1 PCR擴(kuò)增所需引物Tab.1 Primers required for PCR amplification

    1.3 沙門菌 STnc1220基因擴(kuò)增及分子特征分析

    提取SL1344基因組并作為模板,P1/P2為引物PCR擴(kuò)增出沙門菌非編碼sRNASTnc1220。PCR反應(yīng)體系:PCR Mixture 10 μL,H2O 7 μL,DNA 模板 2 μL,上下游引物各 0.5 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,53 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min,16 ℃保存。對(duì)目的條帶進(jìn)行膠回收,與pMD19-T載體經(jīng)16 ℃過(guò)夜連接,篩選陽(yáng)性單菌落并送測(cè)序。對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行啟動(dòng)子序列分析。利用RNAtarget 2在線軟件(http://RNA.informatik.uni-freiburg.de/)進(jìn)行STnc1220所調(diào)控靶基因的預(yù)測(cè)。

    1.4 沙門菌 STnc1220基因缺失株的構(gòu)建

    提取pKD3質(zhì)粒并作為模板,P3/P4為引物PCR擴(kuò)增出含有STnc1220基因上、下游同源臂的打靶片段,進(jìn)行重疊融合PCR(SOE-PCR)擴(kuò)增。將目的基因進(jìn)行回收和測(cè)序。制備SL1344感受態(tài)細(xì)胞,電轉(zhuǎn)入pKD46質(zhì)粒,然后將擴(kuò)增出的打靶片段電轉(zhuǎn)入SL1344-pKD46 感受態(tài)細(xì)胞,用含有 Amp 和 Cm 抗性的 LB 平板篩選陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子(ΔSTnc1220∷cat)進(jìn)行PCR鑒定和測(cè)序驗(yàn)證。將pCP20質(zhì)粒電轉(zhuǎn)化入ΔSTnc1220∷cat感受態(tài)細(xì)胞中(已消除pKD46質(zhì)粒),用含有氨芐抗性的LB平板進(jìn)行篩選,獲得缺失株ΔSTnc1220。

    1.5 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌生長(zhǎng)及生化特性的影響

    將3株菌在LB液體培養(yǎng)基連續(xù)傳代培養(yǎng)至50代,選取第10,20,30,40,50代細(xì)菌,用STnc1220基因內(nèi)部引物P1/P2進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定其是否具備遺傳穩(wěn)定性。參照文獻(xiàn)[11]的方法,分別將3株菌接種BHI培養(yǎng)基中,將過(guò)夜培養(yǎng)物按1∶100轉(zhuǎn)接新BHI,37 ℃同步振搖培養(yǎng),通過(guò)測(cè)定菌液OD600繪制各菌株生長(zhǎng)曲線。挑取3株菌的單菌落至木糖、棉子糖、葡萄糖、氰化鉀、枸櫞酸鈉、硫化氫等生化鑒定管,放置37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)靜置培養(yǎng)18~24 h,按操作說(shuō)明書觀察其生化特性。

    1.6 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌生物被膜形成的影響

    將親本株和缺失株過(guò)夜培養(yǎng)次日轉(zhuǎn)接于新鮮LB培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至菌液OD600≈0.2,以每孔200 μL加入96孔微孔板中,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h。按照參考文獻(xiàn)[12]方法,將菌液吸出后用200 μL去離子水清洗3次,室溫晾30 min后每孔加入1%結(jié)晶紫100 μL染色45 min,PBS清洗3次;將96孔微孔板置于室溫自然晾干,加入95%的乙醇進(jìn)行脫色,酶標(biāo)儀測(cè)定其OD600。

    1.7 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌環(huán)境應(yīng)激的影響

    挑取親本株和缺失株的單菌落于BHI培養(yǎng)基中,37 ℃ 180 r/min培養(yǎng)12 h,以1∶100比例分別轉(zhuǎn)接于pH=4.8、pH=9、4% NaCl、2 mmol/L的H2O2、3.8%乙醇的新鮮BHI液體培養(yǎng)基中,調(diào)整其初始OD600相同時(shí),置于37 ℃振蕩培養(yǎng)箱180 r/min振蕩培養(yǎng),每隔1 h取樣測(cè)OD600值并繪制生長(zhǎng)曲線。

    1.8 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌細(xì)胞黏附和侵襲能力的影響

    取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的RAW264.7細(xì)胞用無(wú)菌PBS洗滌3次后用DMEM重懸備用,用預(yù)冷無(wú)菌 PBS將新鮮培養(yǎng)的親本株和缺失株洗滌后調(diào)整OD600為0.5后置于冰上。參考文獻(xiàn)[13]的方法,菌液以感染復(fù)數(shù)MOI=10侵染細(xì)胞,分別進(jìn)行細(xì)胞黏附、侵襲試驗(yàn),梯度稀釋,涂板計(jì)數(shù)。

    1.9 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌致病力的影響

    將沙門菌 SL1344、ΔSTnc1220培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期,收集菌體并用預(yù)冷的無(wú)菌PBS洗滌3次,以無(wú)菌 PBS重懸菌體并進(jìn)行連續(xù)10倍倍比稀釋。分別以1.0×108,1.0×107,1.0×106,1.0×105,1.0×104,1.0×103cfu/mL的劑量腹腔感染 BALB/c小鼠,注射無(wú)菌PBS作為對(duì)照組,攻毒之后觀察10 d,記錄小鼠發(fā)病及死亡情況,使用改良寇氏法計(jì)算每株菌的半數(shù)致死量LD50。分別對(duì)6周齡小鼠注射1.0×104cfu/mL的親本株、缺失株進(jìn)行腹腔感染。取感染第5 天的小鼠處死后無(wú)菌收集它們的肝臟和脾臟,經(jīng)固定后制作成組織切片進(jìn)行病理學(xué)觀察。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 沙門菌 sRNA STnc1220基因擴(kuò)增及分子特征分析

    以P1/P2引物擴(kuò)增出的片段大小為275 bp,測(cè)序結(jié)果顯示,其中sRNASTnc1220基因大小為73 bp,位于基因ssaK和ssaL之間。預(yù)測(cè)顯示在sRNASTnc1220的上游5′-UTR區(qū)域存在-10和-35區(qū)啟動(dòng)子核心序列。靶基因預(yù)測(cè)分析發(fā)現(xiàn),sRNA的47—54位可與barA基因mRNA的5′-UTR端-50—-57位堿基互補(bǔ)配對(duì)(圖1)。

    A.STM STnc1220基因克?。篗.DNA Marker DL2000;1.陰性對(duì)照;2.sRNA STnc1220基因。B.STM STnc1220基因的測(cè)序分析。C.sRNA STnc1220與靶基因barA的互補(bǔ)配對(duì)位置。A.STM STnc1220 gene clone:M.DNA Marker DL2000;1.Negative control;2.sRNA STnc1220 gene.B.Sequencing analysis of STM STnc1220 gene.C.Complementary pairing position of sRNA STnc1220 and target gene barA.

    2.2 沙門菌 STnc1220基因缺失株的構(gòu)建與鑒定結(jié)果

    以pKD3質(zhì)粒為模板,P3/P4引物擴(kuò)增出的打靶片段為1 159 bp,與預(yù)期大小一致(圖2-A)。以P1/P2引物擴(kuò)增出的sRNASTnc1220、ΔSTnc1220∷cat、ΔSTnc1220片段大小分別為275 ,1 261,330 bp(圖2-B)。PCR擴(kuò)增及測(cè)序結(jié)果證明缺失株ΔSTnc1220構(gòu)建成功。

    A.STnc1220打靶片段:M.Marker DL2000;1.陰性對(duì)照;2.打靶片段。B.沙門菌ΔSTnc1220的鑒定:M.Marker DL2000;1.陰性對(duì)照;2.sRNA STnc1220基因;3.ΔSTnc1220∷cat擴(kuò)增產(chǎn)物;4.ΔSTnc1220基因擴(kuò)增產(chǎn)物。A.STnc1220 targeting fragment:M.Marker DL2000;1.Negative control;2.Targeting fragment.B.Identification of STM ΔSTnc1220:M.Marker DL2000;1.Negative control;2.sRNA STnc1220 gene;3. ΔSTnc1220∷cat amplification product;4.ΔSTnc1220 gene amplification product.

    2.3 沙門菌 STnc1220基因缺失株生長(zhǎng)與生化特性分析

    PCR擴(kuò)增結(jié)果顯示,連續(xù)傳代的第10,20,30,40,50代的細(xì)菌,其凝膠電泳擴(kuò)增條帶大小一致,表明缺失株沙門菌ΔSTnc1220具有良好的遺傳穩(wěn)定性(圖3)。生長(zhǎng)曲線結(jié)果表明,親本株和缺失株在37 ℃培養(yǎng)條件下的生長(zhǎng)速率基本相同,表明sRNASTnc1220基因缺失不影響鼠傷寒沙門菌的生長(zhǎng)特性(圖4)。缺失株ΔSTnc1220和親本株的生化特性相同,證明sRNASTnc1220基因缺失不影響鼠傷寒沙門菌的生化特性。

    圖3 ΔSTnc1220遺傳穩(wěn)定性PCR驗(yàn)證Fig.3 Identification genetically stable of ΔSTnc1220 by PCR

    圖4 生長(zhǎng)曲線測(cè)定Fig.4 Growth curve measurement

    2.4 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌生物被膜形成的影響

    生物膜形成結(jié)果顯示,測(cè)得的野生株OD600為1.22,缺失株OD600為1.17,由此可知,野生株和缺失株生物膜形成能力差異不顯著(P>0.05),表明缺失株沙門菌ΔSTnc1220不影響生物被膜的形成。

    2.5 STnc 1220基因缺失對(duì)沙門菌環(huán)境應(yīng)激的影響

    與親本株相比,缺失株在pH=4.8、pH=9和含有2 mmol/L 30% H2O2條件下差異性不顯著(P>0.05);在4% NaCl的BHI液體培養(yǎng)基中,缺失株在7 h后生長(zhǎng)速率明顯高于親本株(P<0.05); 在含有3.8%乙醇的條件下,缺失株在4~8 h的生長(zhǎng)顯著高于親本株(P<0.05)(圖5)。

    不同小寫字母表示差異顯著( P<0.05)。Different lowercase letters indicate significant differences(P<0.05).

    2.6 STnc1220基因缺失對(duì)沙門菌細(xì)胞黏附和侵襲能力的影響

    與親本株SL1344相比,缺失株ΔSTnc1220對(duì)細(xì)胞的侵襲率下降了88.66%;黏附率下降了62.76%,(圖6),提示STnc1220缺失后沙門菌細(xì)胞黏附和侵襲能力極顯著降低(P<0.01)。

    同組織間不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01);不同組織間未做顯著性分析。Different capital letters in the same tissue showed significant differences(P<0.01);There was no significantly different analysis between different tissues.

    2.7 STnc 1220基因缺失對(duì)沙門菌致病力的影響

    沙門菌 SL1344和ΔSTnc1220的LD50分別是6.46×104,1.48×105cfu/mL,但缺失株小鼠生存時(shí)間明顯延長(zhǎng)(表2、圖7),表明缺失株沙門菌ΔSTnc1220毒力顯著低于親本株。解剖及觀察組織切片發(fā)現(xiàn),與PBS對(duì)照組相比,SL1344和ΔSTnc1220均出現(xiàn)明顯的病理學(xué)變化(圖8)。肝臟出現(xiàn)出血,邊緣明顯,組織學(xué)出現(xiàn)肝索排列不規(guī)則,竇狀隙擴(kuò)張,出現(xiàn)細(xì)胞核溶解,單核細(xì)胞浸潤(rùn);脾臟明顯腫大,出現(xiàn)紅髓白髓界限模糊,紅髓充血、散在性出血,白髓變小,有大量淋巴細(xì)胞浸潤(rùn)。與SL1344相比,ΔSTnc1220的組織病理學(xué)改變較輕,表明STnc1220基因缺失可降低沙門菌對(duì)小鼠器官的病理?yè)p傷能力。

    表2 6周齡小鼠腹腔注射SL1344、ΔSTnc1220菌株后LD50的測(cè)定Tab.2 Determination of LD50 after intraperitoneal injection of SL1344 and ΔSTnc1220 strains in 6-week-old mice

    圖7 不同菌株感染小鼠死亡生存曲線Fig.7 Death and survival curve of mice by intraperitoneal infected with different strains

    圖8 SL1344、ΔSTnc1220感染小鼠臟器的病理學(xué)變化Fig.8 Pathological changes of organs in mice infected with SL1344 and ΔSTnc1220

    3 結(jié)論與討論

    現(xiàn)有的研究發(fā)現(xiàn),sRNA可通過(guò)堿基配對(duì)與靶mRNA相互結(jié)合,通過(guò)多種方式在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因的表達(dá),從而調(diào)節(jié)細(xì)菌的物質(zhì)代謝、環(huán)境適應(yīng)性、毒力等多個(gè)生理過(guò)程[14]。目前,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的細(xì)菌sRNA對(duì)靶基因mRNA的調(diào)控主要包括以下幾種:第一,sRNA與靶mRNA的結(jié)合,可增強(qiáng)靶基因mRNA穩(wěn)定性,防止Rnase E對(duì)靶基因mRNA的降解,發(fā)揮正調(diào)控作用[15]。其次,sRNA與靶mRNA的結(jié)合形成雙鏈后,可誘導(dǎo)Rnase Ⅲ的降解,對(duì)靶基因的表達(dá)發(fā)揮負(fù)調(diào)控作用[16]。第三,sRNA與靶mRNA的結(jié)合,可打開靶基因mRNA遮蔽核糖體結(jié)合位點(diǎn)(RBS)的二級(jí)結(jié)構(gòu),有利于核糖體30S與RBS的結(jié)合,從而促進(jìn)靶蛋白的翻譯。此外,sRNA可與靶mRNA上的RBS結(jié)合,抑制核糖體30S與RBS的結(jié)合,從而抑制靶蛋白的翻譯[17]。Houserova等[14]研究鑒定了在沙門菌SL1344基因組中差異表達(dá)的475個(gè)sRNA,然而大部分sRNA 的生物學(xué)功能和致病性尚不清楚。Kim等[18]發(fā)現(xiàn),sRNARaoN可抑制NADPH氧化酶介導(dǎo)的ROS產(chǎn)生,控制亞硝化氧化應(yīng)激抗性。Chien等[19]驗(yàn)證了在厭氧環(huán)境下,sRNAFnrS可以通過(guò)與其靶基因堿基配對(duì)來(lái)抑制 mRNAMetE+基因的表達(dá)。陳斌杰等[20]發(fā)現(xiàn),sRNARyhB可增強(qiáng)沙門菌的侵襲力進(jìn)而調(diào)控沙門菌的毒力。Meng等[5]研究表明,sRNASTnc640可以調(diào)控腸炎沙門菌菌毛基因的表達(dá),影響?zhàn)じ絹?lái)抑制沙門菌的毒力。由于沙門菌 sRNA對(duì)靶mRNA的調(diào)控方式具有明顯的多樣性,這可能也是沙門菌具有廣泛的感染譜(能在多種動(dòng)物體內(nèi)生存繁殖)和較強(qiáng)的環(huán)境適應(yīng)能力(耐酸和胞內(nèi)生存)的重要原因之一。

    在細(xì)菌中,許多 sRNA可以直接感知多種環(huán)境信號(hào)[10]。本研究結(jié)果顯示,STnc1220的缺失后增強(qiáng)了對(duì)高滲、乙醇環(huán)境的適應(yīng)能力,表明 sRNASTnc1220在對(duì)外界應(yīng)激環(huán)境發(fā)揮了一定作用。同時(shí),本研究通過(guò)RNAtarget 2軟件預(yù)測(cè)出 sRNASTnc1220的47—54位堿基可和barAmRNA的5′-UTR端-50—-57位堿基互補(bǔ)配對(duì),提示STnc1220調(diào)控的靶基因?yàn)閎arA。有研究發(fā)現(xiàn),barA是入侵基因表達(dá)和細(xì)菌穿透上皮細(xì)胞所需的磷酸化類型的傳感器激酶,與反應(yīng)調(diào)節(jié)分子SirA構(gòu)成了一個(gè)雙組分調(diào)節(jié)劑,誘導(dǎo)SPI-1基因的表達(dá)以響應(yīng)未知的細(xì)胞外信號(hào)[21]。Fortune等[22]研究證實(shí)ΔbarA對(duì)細(xì)胞的侵襲能力與親本株相比顯著降低;Altier等[23]發(fā)現(xiàn),barA的缺失對(duì)入侵基因表達(dá)的調(diào)控顯著降低。因此,本研究推測(cè)STnc1220可通過(guò)調(diào)控靶基因barA的表達(dá)來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)菌的致病力,上述推測(cè)還需要通過(guò)進(jìn)一步研究來(lái)證實(shí)。

    總之,本研究通過(guò)λ-Red方法構(gòu)建了沙門菌STnc1220基因缺失株ΔSTnc1220,驗(yàn)證了STM-ΔSTnc1220的部分生物學(xué)特性,證實(shí)STnc1220在沙門菌侵襲黏附細(xì)胞及致病力上發(fā)揮了重要的調(diào)控作用。

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