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    推拿對神經(jīng)病理性疼痛大鼠miR-21-5P、ERK、STAT3的影響*

    2022-03-03 09:06:38吳娉婷梁英業(yè)謝柳紅盧棟明陳曉紅唐宏亮
    關(guān)鍵詞:機(jī)械手術(shù)模型

    吳娉婷,肖 易,梁英業(yè),謝柳紅,丁 瑤,盧棟明,陳曉紅,唐宏亮

    (1.廣西中醫(yī)藥大學(xué) 南寧 530000;2.廣西中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院 南寧 530000;3.廣西中醫(yī)藥大學(xué)附屬防城港醫(yī)院 防城港 538000)

    神經(jīng)病理性疼痛(Neuropathic pain,NPP)是由軀體感官神經(jīng)系統(tǒng)的病變或疾病引起的疼痛,流行病學(xué)研究的系統(tǒng)回顧報道神經(jīng)病理性疼痛的患病率為6.9-10%[1]。由于NPP擁有極其復(fù)雜的的病理生理學(xué),NPP也被認(rèn)為是目前神經(jīng)原性疼痛綜合征臨床治療的主要挑戰(zhàn)[2]。盡管國內(nèi)外在NPP的發(fā)病機(jī)制和治療方面已經(jīng)取得了巨大的進(jìn)展,但目前治療這一疾病的方法包括藥物干預(yù)(三環(huán)類抗抑郁藥、曲馬多以及低劑量的阿片類藥物等)、物理療法和脊髓刺激等,其中藥物干預(yù)容易誘導(dǎo)強(qiáng)迫性濫用,而物理療法和脊髓刺激的效果有限且適用性不廣。因此深入探索疼痛的發(fā)病機(jī)制,尋找疼痛治療靶點(diǎn),對提高疼痛治療效果有著深遠(yuǎn)的意義。

    MicroRNAs[3]越來越被認(rèn)為是免疫和神經(jīng)元基因表達(dá)的調(diào)節(jié)因子,是NPP病理生理學(xué)的潛在主開關(guān)。且越來越多的證據(jù)強(qiáng)調(diào),神經(jīng)病理性疼痛的誘導(dǎo)和維持伴隨著MicroRNAs表達(dá)的變化,而這些MicroRNAs表達(dá)的變化似乎與神經(jīng)損傷、痛覺過敏和神經(jīng)可塑性相關(guān)[4]。最近的研究表明[5]miR-21在神經(jīng)病理性疼痛晚期損傷的背根神經(jīng)節(jié)(Dorsal root ganglia,DRG)神經(jīng)元增加,而阻斷miR-21可以緩解神經(jīng)病理性疼痛。與此同時研究顯示[6]miR-21-5P在DRG神經(jīng)元中高表達(dá),而鞘內(nèi)注射miR-21-5P拮抗劑可以降低神經(jīng)病理性疼痛的超敏反應(yīng)和炎癥巨噬細(xì)胞在DRG中的募集程度。但miR-21-5P在脊髓背角的表達(dá)尚不明確。本團(tuán)隊的前期研究已經(jīng)反復(fù)印證了推拿的鎮(zhèn)痛作用[7-8],也從神經(jīng)傳遞角度闡明了推拿的鎮(zhèn)痛機(jī)制[9-10]。但其機(jī)制尚未完全闡述清楚,還有待進(jìn)一步研究。因此本實(shí)驗(yàn)從微小RNA角度出發(fā)闡明神經(jīng)病理性疼痛在脊髓背角當(dāng)中的發(fā)病機(jī)制以及推拿的鎮(zhèn)痛機(jī)制,為完善推拿治療NPP的效應(yīng)研究提供研究依據(jù)。

    1 材料與儀器

    1.1 實(shí)驗(yàn)動物

    40只健康雄性SD大鼠,SPF級,體重210-240 g,月齡為6周。由湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動物有限公司提供,許可證號:SCXK(湘)2019-0004。大鼠飼養(yǎng)在廣西中醫(yī)藥防治醫(yī)學(xué)分子生物實(shí)驗(yàn)室動物房中,濕度恒定,室溫18-20℃,按時更換墊料以及給予飼料、飲水,適應(yīng)性喂養(yǎng)7天。本實(shí)驗(yàn)研究過程符合廣西中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院動物使用及倫理委員會審查。

    1.2 主要試劑及儀器

    microRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa),TB Green PCR熒光試劑(TaKaRa),抗STAT3抗體(PTG),抗ERK抗體(PTG),蛋白定量試劑盒(BCA法)(碧云天),IL-1β ELISA試劑盒(賽默飛),Thermo Scientific Piko Real 96 PCR儀(賽默飛公司,美國),Bio-Rad Powerpac HC電泳儀及ChemiDoc MP Touch Hot圖像掃描儀(Bio-Rad公司,美國),電子von Frey 2393及熱板痛覺測試儀(IITC公司,美國),酶標(biāo)儀(Thermo,美國)。

    2 方法

    2.1 動物分組

    將40只SD雄性大鼠隨機(jī)分為5組:正常組(n=8)、假手術(shù)組(n=8)、模型組(n=8),假推拿組(n=8)、推拿組(n=8)。

    2.2 造模方法

    參照課題組前期研究[11],模型組、推拿組和假推拿組建立大鼠L5脊神經(jīng)結(jié)扎(SNL)模型。按照3 mL·kg-1的大鼠體重配置10%的水合氯醛進(jìn)行腹腔麻醉后,定位每只大鼠的左側(cè)后上棘,剃除該部位及周邊的毛發(fā)備皮。常規(guī)消毒后于后上棘左側(cè)與脊柱垂直切開,約2 cm長,與脊柱平行。分離左側(cè)棘旁的筋膜和肌肉后,顯露脊柱。用小咬鉗去除L5橫突,暴露L5脊神經(jīng),用5-0可吸收縫線將神經(jīng)結(jié)扎,僅單側(cè)結(jié)扎。假手術(shù)組僅暴露L5脊神經(jīng)2-3 min,不結(jié)扎。最后用生理鹽水清洗手術(shù)創(chuàng)口,并給予碘伏消毒,逐層關(guān)閉傷口??p合傷口后將大鼠放入籠中觀察,直至麻醉恢復(fù),以免窒息導(dǎo)致死亡。造模成功的標(biāo)準(zhǔn)為術(shù)后大鼠患側(cè)出現(xiàn)跛行、撤足、抬足。

    2.3 干預(yù)方法

    推拿組選擇足少陽膽經(jīng)上的“環(huán)跳”、“陽陵泉”和“懸鐘”三個穴進(jìn)行干預(yù)。干預(yù)時用布袋將大鼠束縛防止掙扎,然后使用按摩推拿手法模擬儀(中國人民共和國發(fā)明專利號:ZL 200710187403.1)從造模后第1天開始進(jìn)行推拿治療。按摩推拿手法模擬儀按摩頭選用直徑10 mm的圓形光滑接觸面,刺激力量為4 N,手法模擬點(diǎn)法、揉法和撥法。每天1次,每次每穴每法1 min,每側(cè)共9 min,每次治療18 min(雙側(cè)),連續(xù)干預(yù)7天;假推拿組的大鼠同樣用布袋束縛防止掙扎,每天給予雙后肢18 min的輕輕撫摸,連續(xù)干預(yù)7天。正常組、模型組以及假手術(shù)組只觀察7天,不做任何干預(yù)處理。

    2.4 觀察指標(biāo)

    2.4.1 大鼠患側(cè)機(jī)械痛閾值(PWMT)的測定

    將大鼠提前放入鐵籠中適應(yīng)環(huán)境,當(dāng)大鼠停止自我梳理和探索活動時選用4 g、6 g、8 g、10 g、15 g、26 g、60 g、100 g的von-Frey纖維絲依次從鐵籠底部伸進(jìn)去刺激大鼠的患側(cè)足,當(dāng)大鼠出現(xiàn)抬足或舔趾等陽性反應(yīng)行為時,記錄所對應(yīng)的纖維絲的刺激強(qiáng)度。連續(xù)測3次,每次測量間隔15 s,取平均值即為機(jī)械痛閾值。于術(shù)前第1天及術(shù)后第3、7天進(jìn)行PWMT測量。

    2.4.2 大鼠患側(cè)熱痛閾值(PWTL)的測定

    按Hargreaves[12]法測定。當(dāng)測試儀達(dá)到預(yù)設(shè)溫度52.5℃時,將大鼠按組別依次放進(jìn)測試儀的有機(jī)玻璃動物籠內(nèi),等大鼠停止自我梳理和探索活動時按下計時器,當(dāng)大鼠患側(cè)足出現(xiàn)舔足、回縮或跳躍時測試儀上顯示的時間即為大鼠熱痛閾值(PWTL)。在沒有反應(yīng)的情況下,在30 s時將大鼠從熱板上取出,以避免組織損傷。每只大鼠測量3次,每次測量時間隔5 min,取平均值作為熱痛閾值。于術(shù)前第1天及術(shù)后第3、7天進(jìn)行PWTL測量。

    2.4.3 蛋白免疫印跡

    使用蛋白免疫印跡法檢測干預(yù)7天后的大鼠脊髓(L4-6)中ERK、STAT3的蛋白相對表達(dá)量。按照每100 mg組織加入1 mL蛋白裂解液的方法取L4-6段脊髓放入蛋白裂解液中進(jìn)行低溫勻漿,4℃ 12 000 rpm離心10 min,取上清液。各樣本蛋白濃度使用BCA蛋白濃度試劑盒測定。用SDS-PAGE分離蛋白,轉(zhuǎn)膜。5%脫脂奶粉封膜1 h,加入稀釋后的抗體(STAT3一抗,1∶1000;ERK一抗,1∶1000),放置4℃冰箱孵育過夜。清洗后孵育二抗(1∶5000)1 h。滴加ECL溶液,使用Bio-Rad ChemiDoc MP Touch Hot圖像掃描儀采集圖像。使用Image J軟件分析圖像結(jié)果。

    2.4.4 酶聯(lián)免疫吸附

    使用酶聯(lián)免疫吸附法檢測干預(yù)7天后的大鼠血清中IL-1β含量,所有操作步驟按照試劑盒的操作說明進(jìn)行。終止反應(yīng)后,立即用酶標(biāo)儀在450 nm波長測量各孔的光密度(OD值)。

    2.4.5 熒光定量PCR

    使用熒光定量PCR法檢測干預(yù)7天后的大鼠脊髓(L4-6)中miR-21-5P mRNA表達(dá)。用Trizol試劑提取總RNA,然后按照PCR產(chǎn)品試劑盒的操作說明進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。miR-21-5P、β-actin基因序列引物由TaKaRa公司提供,引物序列見表1。反應(yīng)條件:95℃ 30 s;95℃ 5 s,60℃ 30 s,45個循環(huán);95℃ 5 s,60℃ 1 min,95℃;50℃ 30 s。將所得Ct值按照2-△△ct方法進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。

    表1 熒光定量PCR的引物序列

    2.5 統(tǒng)計學(xué)分析

    數(shù)據(jù)采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較,方差齊者用LSD檢驗(yàn),方差不齊者用Tamhane’s T2檢驗(yàn)。不符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)采用秩和檢驗(yàn)。以P〈0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    3 結(jié)果

    3.1 各組大鼠的PWMT比較

    術(shù)前各組大鼠的機(jī)械痛閾值無顯著差異。術(shù)后第3天,機(jī)械痛閾值結(jié)果顯示模型組、假手術(shù)組、假推拿組和推拿組較正常組相比均下降,模型組較假手術(shù)組下降(P〈0.05),且正常組及假手術(shù)組顯著高于模型組,數(shù)據(jù)顯示正常組為(54.00±5.07)、假手術(shù)組為(38.87±8.54)、模型組為(12.75±1.66);與模型組、假推拿組相比,推拿組的機(jī)械痛閾值升高(P〈0.05),且推拿組顯著高于模型組為(39.37±8.07)、假推組為(22.37±5.04)。術(shù)后第7天,結(jié)果顯示模型組與假推組的機(jī)械痛閾值較正常組降低,模型組的機(jī)械閾值較假手術(shù)組降低(P〈0.05),且發(fā)現(xiàn)大鼠模型組的機(jī)械痛閾值為(16.50±2.87),推拿組的機(jī)械痛閾值為(45.87±8.11),推拿組和模型組相比痛閾明顯提高(P〈0.05),提示推拿有助于緩解SNL大鼠的疼痛,且能恢復(fù)SNL大鼠的痛閾。如表2,圖1所示。

    圖1 推拿對NPP大鼠機(jī)械痛閾值的影響

    表2 推拿對NPP大鼠機(jī)械痛閾值的影響(±s,g,n=8)

    表2 推拿對NPP大鼠機(jī)械痛閾值的影響(±s,g,n=8)

    注:與正常組比較,#P〈0.05;與假手術(shù)組比較,*P〈0.05;與模型組和假推拿組比較,+P〈0.05。

    組別正常組模型組假手術(shù)組推拿組假推組術(shù)前1天52.87±6.97 50.75±8.32 51.00±7.32 53.62±7.5 50.37±5.62術(shù)后3天54.00±5.07 12.75±1.66#*38.87±8.54#39.37±8.07#+22.37±5.04#術(shù)后7天52.12±5.27 16.50±2.87#*44.25±6.11 45.87±8.11+26.00±4.34#

    3.2 各組大鼠的PWTL比較

    術(shù)前各組大鼠的熱痛閾值無顯著差異。術(shù)后第3天,熱痛閾值結(jié)果顯示模型組、假手術(shù)組、假推拿組和推拿組較正常組相比均下降,模型組較假手術(shù)組下降(P〈0.05),且正常組及假手術(shù)組顯著高于模型組,數(shù)據(jù)顯示正常組為(27.09±5.80)、假手術(shù)組為(21.64±1.54)、模型組為(12.20±1.36);與模型組、假推拿組相比,推拿組的熱痛閾值升高(P〈0.05),且推拿組顯著高于模型組為(23.01±0.98)、假推組為(16.73±1.81)。術(shù)后第7天,結(jié)果顯示模型組與假推組的熱痛閾值較正常組降低,模型組的機(jī)械閾值較假手術(shù)組降低(P〈0.05),且發(fā)現(xiàn)大鼠模型組的熱痛閾值為(16.43±1.27),推拿組的熱痛閾值為(27.98±2.19),推拿組與模型組相比對熱刺激的耐受明顯提高(P〈0.05),提示推拿有助于緩解SNL大鼠的疼痛,且能提高大鼠對熱刺激的閾值。如表3,圖2所示。

    表3 推拿對NPP大鼠熱痛閾值的影響(±s,g,n=8)

    表3 推拿對NPP大鼠熱痛閾值的影響(±s,g,n=8)

    注:與正常組比較,*P〈0.05;與假手術(shù)組比較,#P〈0.05;與模型組和假推拿組比較,△P〈0.05。

    組別正常組模型組假手術(shù)組推拿組假推組術(shù)前1天29.06±1.29 30.50±1.78 30.34±1.19 30.44±1.67 29.55±1.59術(shù)后3天27.09±5.80 12.20±1.36*#21.64±1.54*23.01±0.98*△16.73±1.81*術(shù)后7天27.26±7.48 16.43±1.27*#28.34±1.29 27.98±2.19△20.42±2.70*

    圖2 推拿對NPP大鼠熱痛閾值的影響

    3.3 各組大鼠脊髓背角中miR-21-5P mRNA表達(dá)的比較

    術(shù)后第7天,模型組脊髓miR-21-5P mRNA的表達(dá)相較于正常組及假手術(shù)的表達(dá)升高(P〈0.01),且推拿組miR-21-5P mRNA的表達(dá)較模型組顯著下降(P〈0.01)。如表4,圖3所示。

    表4 推拿對NPP大鼠脊髓組織中miR-21-5P mRNA表達(dá)的影響(±s,2-△△ct,n=8)

    表4 推拿對NPP大鼠脊髓組織中miR-21-5P mRNA表達(dá)的影響(±s,2-△△ct,n=8)

    注:與正常組及假手術(shù)組比較,*P〈0.01;與模型組比較,**P〈0.01。

    組別正常組模型組假手術(shù)組推拿組假推組miR-21-5P表達(dá)水平1.00±0.00 6.53±1.12*2.47±0.80 1.10±0.41**1.83±0.57

    圖3 推拿對NPP大鼠脊髓組織中miR-21-5P mRNA表達(dá)的影響

    3.4 各組大鼠脊髓背角中ERK、STAT3蛋白表達(dá)的比較

    術(shù)后第7天,模型組脊髓背角ERK、STAT3的表達(dá)相較于正常組及假手術(shù)組的表達(dá)升高(P〈0.01)。經(jīng)推拿干預(yù)后,推拿組的ERK表達(dá)下降,與模型組相比表達(dá)差異明顯(P〈0.05),推拿組的STAT3表達(dá)同樣下降,與模型組相比差異具有顯著性(P〈0.01)。如圖4所示。

    圖4 推拿對NPP大鼠脊髓組織中ERK、STAT3蛋白表達(dá)的影響

    3.5 各組大鼠血清中IL-1β表達(dá)的比較

    術(shù)后第7天,模型組IL-1β的表達(dá)相較于正常組及假手術(shù)組的表達(dá)升高(P〈0.05)。經(jīng)推拿干預(yù)后,推拿組的IL-1β表達(dá)降低,與模型組相比差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P〈0.05)。如表5,圖5所示。

    表5 推拿對NPP大鼠血清中IL-1β表達(dá)的影響(±s,pg·mg-1,n=8)

    表5 推拿對NPP大鼠血清中IL-1β表達(dá)的影響(±s,pg·mg-1,n=8)

    注:與正常組、假手術(shù)組比較,△P〈0.05;與模型組比較,*P〈0.05。

    組別正常組假手術(shù)組模型組假推組推拿組IL-1β表達(dá)水平0.09±0.33 9.12±0.83 30.95±0.58△20.53±0.73 18.01±0.93*

    圖5 推拿對NPP大鼠血清中IL-1β表達(dá)的影響

    4 討論

    4.1 推拿治療疼痛的中醫(yī)機(jī)制

    中醫(yī)學(xué)認(rèn)為疼痛有虛實(shí)之分,即所謂“不通則痛”和“不榮則痛”。“不通則痛”多為“實(shí)痛”,多因外感六淫、痰濁凝滯、跌仆外傷,或食積蟲擾等阻滯臟腑經(jīng)脈,氣血運(yùn)行不暢所致;“不榮則痛”多為“虛痛”,多因陽氣虧虛,精血不足,臟腑經(jīng)絡(luò)失養(yǎng)所致。而推拿手法作用于經(jīng)絡(luò)腧穴,可行氣活血、疏經(jīng)通絡(luò),從而達(dá)到治療疼痛的效果。正如《素問·血?dú)庑沃酒吩唬骸靶螖?shù)驚恐,經(jīng)絡(luò)不通,病生于不仁,治之以按摩醪藥[13]?!绷硗?,推拿手法通過對機(jī)體體表的溫?zé)岽碳ぃa(chǎn)生熱效應(yīng),從而加速氣血的流動達(dá)到散寒止痛的功效,如《素問·舉痛論》曰:“寒氣客于背俞之脈則脈泣,脈泣則血虛,血虛則痛……按之則熱氣至,熱氣至則痛止矣[14]?!苯罟顷P(guān)節(jié)受損的疾病通過推拿治療能起到理筋整復(fù)、松解粘連與滑利關(guān)節(jié)的作用,正如《醫(yī)宗金鑒·正骨心法要旨》曰:“因跌撲閃失,以至骨縫開錯……宜用按摩法。按其經(jīng)絡(luò),以通郁閉之氣……其患可愈[15]?!杯h(huán)跳穴為多氣多血之經(jīng)的足少陽膽經(jīng)與足太陽膀胱經(jīng)的交會穴,主腰胯疼痛、下肢痿痹等腰腿疾患。正如《針灸甲乙經(jīng)·陰受病發(fā)痹》云:“腰脅相引痛急……脛痛不可屈伸……環(huán)跳主之”,因此,推拿環(huán)跳穴可起到祛風(fēng)化濕、疏通經(jīng)絡(luò)之效[16]。陽陵泉為足少陽膽經(jīng)的合穴,膽的下合穴,八會穴之筋會,是足少陽膽經(jīng)氣血匯聚之所。據(jù)《針灸大成》記載:“陽陵泉,主治下肢經(jīng)筋病癥之要穴[17]”,因此,推拿作用于陽陵泉穴可以促進(jìn)局部的血液循環(huán)以及炎癥介質(zhì)的分解、稀釋,從而緩解局部的疼痛癥狀。懸鐘穴是足三陽之大絡(luò),為八會穴之髓會,是人體髓氣匯聚的地方,古有記載,《針灸甲乙經(jīng)》:“脛酸痛,按之不可,名曰胕髓病,以镵針針絕骨出其血立已?!笨梢姼深A(yù)懸鐘穴具有疏調(diào)肝膽氣機(jī)、通經(jīng)活絡(luò)、祛風(fēng)止痛、補(bǔ)髓壯骨之功效。因此推拿是緩解神經(jīng)病理性疼痛的一種有效措施。

    4.2 NPP與miR-21-5P及ERK、STAT3蛋白的關(guān)系

    MicroRNA參與多種生物調(diào)控過程,包括細(xì)胞增殖、分化和凋亡以及炎癥反應(yīng)等,而在神經(jīng)病理性疼痛動物模型中MicroRNA的調(diào)節(jié)異常,提示MicroRNA在神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生發(fā)展中起著至關(guān)重要的作用。Chang等[18]通過微陣列分析評估了大鼠DRG中差異MicroRNA的表達(dá),與假手術(shù)組相比,SNL組在神經(jīng)損傷后7d觀察到83個差異MicroRNA。有文獻(xiàn)報道m(xù)iR-183在SNL大鼠模型中表達(dá)顯著下調(diào),而過表達(dá)miR-183可通過抑制miR-183的靶基因來緩解疼痛樣行為[19]。ERK是絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)家族細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶的關(guān)鍵組成部分,通過調(diào)節(jié)代謝途徑、細(xì)胞增殖、分化和凋亡來控制某些神經(jīng)活動,ERK還影響神經(jīng)彈性特性、神經(jīng)生長以及腦損傷時的神經(jīng)和認(rèn)知過程[20]。研究發(fā)現(xiàn),在神經(jīng)病理性疼痛的幾種動物模型中,ERK在神經(jīng)元、微膠質(zhì)和星形細(xì)胞中被激活,且ERK的抑制劑可以在不同的時間點(diǎn)減輕疼痛[21]。因此,ERK是神經(jīng)性疼痛產(chǎn)生、痛覺信號傳遞等過程中的關(guān)鍵性因子[22]。STAT3主要分布在神經(jīng)系統(tǒng)中,可調(diào)節(jié)多種神經(jīng)遞質(zhì)受體和離子通道蛋白的表達(dá),其過度活化與大鼠神經(jīng)病理性疼痛癥狀同步,抑制其活化可作為治療神經(jīng)病理性疼痛的新靶點(diǎn)[23]。與此同時,在慢性疼痛的背景下,一些報道將p-STAT3的激活與炎癥細(xì)胞因子或生長因子聯(lián)系起來。例如在疼痛的實(shí)驗(yàn)?zāi)P椭衃24],p-STAT3或STAT3激活水平的增加與DRG神經(jīng)元中通道的TNF-α上調(diào)有關(guān)。Bernal等[25]證實(shí)神經(jīng)損傷時,DRG中的STAT3被激活,且存在于非軸突化神經(jīng)元中。Dominguez等[26]在脊髓結(jié)扎的大鼠模型發(fā)現(xiàn)脊髓背角的小膠質(zhì)細(xì)胞會出現(xiàn)IL-6和p-STAT3的高表達(dá),并伴隨著機(jī)械痛敏和熱痛潛伏期的減小或縮短。IL-1β是主要由單核-巨噬細(xì)胞合成的促炎癥細(xì)胞因子,參與多種炎癥反應(yīng)的發(fā)生,IL-1β促進(jìn)炎癥的發(fā)生,從而誘導(dǎo)軸突損傷和傷害性纖維的自發(fā)活動,導(dǎo)致非典型信號轉(zhuǎn)導(dǎo)到DRG,因此,在神經(jīng)損傷和炎癥刺激后,IL-1β水平升高,所以,IL-1β在神經(jīng)病理性疼痛中發(fā)揮重要作用[27-28]。Mei等[29]發(fā)現(xiàn)IL-1β在周圍神經(jīng)損傷小鼠體內(nèi)的mRNA和蛋白水平均迅速上調(diào),而與野生型同窩小鼠相比,缺乏IL-1β的小鼠損傷后的傷害感受敏感性降低,且在IL-1β敲除小鼠的坐骨神經(jīng)損傷部位注射微量重組IL-1β可使機(jī)械痛閾恢復(fù)到損傷野生型小鼠的水平。與此同時,有研究表明抑制miR-21-5p可逆轉(zhuǎn)PI3K/AKT和ERK通路的異常激活[30]。而抑制了ERK的表達(dá)可以降低STAT3的激活,最終抑制肝癌的增殖[31]。同時,抑制了STAT3的表達(dá)后又可以下調(diào)IL-1β的表達(dá)[32]。以上實(shí)驗(yàn)皆證實(shí)了NPP與miR-21-5P及ERK、STAT3蛋白密切相關(guān)。因此,我們推測miR-21-5P、ERK、STAT3、IL-1β之間存在關(guān)聯(lián)性,而推拿可能通過影響miR-21-5P、ERK、STAT3及IL-1β的表達(dá),從而達(dá)到鎮(zhèn)痛的目的。

    5 結(jié)果分析

    SNL大鼠模型是一個可靠的、可重復(fù)的誘導(dǎo)周圍神經(jīng)病變的嚙齒動物模型,因此該模型在神經(jīng)病理性疼痛的研究中被廣泛應(yīng)用。因SNL模型造模時傷口過深,為排除因手術(shù)造成的炎癥損傷及疼痛,所以設(shè)置假手術(shù)組。同理,本研究設(shè)置假推拿組的目的是為了與推拿組對比,從而驗(yàn)證經(jīng)絡(luò)腧穴及推拿手法的治療療效。本研究觀察到,SNL大鼠在造模后第3天有明顯的跛行、抬足及啃咬術(shù)后一側(cè)腳趾等疼痛行為表現(xiàn),同時SNL大鼠的機(jī)械痛閾值和熱痛閾值均有所降低,造模后第7天推拿組SNL大鼠的行為學(xué)表現(xiàn)較第3天有所好轉(zhuǎn),機(jī)械痛閾值與熱痛閾值較第3天同樣有所提高,這說明在推拿的干預(yù)下,SNL大鼠疼痛行為的發(fā)生下降,同時能夠提高SNL大鼠的機(jī)械痛閾值和熱痛閾值,推拿的鎮(zhèn)痛效果顯著。本實(shí)驗(yàn)通過qPCR觀察到SNL大鼠損傷7天后,L4-6脊髓背角的miR-21-5P表達(dá)明顯升高,經(jīng)推拿干預(yù)后miR-21-5P的表達(dá)水平降低;通過WB觀察到造模后SNL大鼠脊髓背角中ERK、STAT3表達(dá)升高,推拿干預(yù)后ERK、STAT3的表達(dá)水平均有所降低;通過ELISA觀察到SNL大鼠造模后IL-1β表達(dá)水平上升,經(jīng)推拿干預(yù)后IL-1β的表達(dá)水平降低。這表明miR-21-5P、ERK、STAT3在SNL大鼠中被激活,然后誘導(dǎo)了炎癥反應(yīng)的發(fā)生,導(dǎo)致疼痛感。經(jīng)過7天的推拿干預(yù)后,miR-21-5P、ERK、STAT3和IL-1β的表達(dá)均顯著減少,這表明推拿可以通過降低miR-21-5P、ERK、STAT3的表達(dá)來抑制SNL大鼠的炎癥反應(yīng),從而減輕SNL大鼠對疼痛的感知。

    綜上所述,推拿可緩解神經(jīng)病理性疼痛,其機(jī)制可能與通過下調(diào)miR-21-5P、ERK、STAT3的表達(dá),減少炎癥因子IL-1β的表達(dá)相關(guān)。本研究在一定程度上為臨床推拿治療神經(jīng)病理性疼痛提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù),但本實(shí)驗(yàn)還未證實(shí)miR-21-5P/ERK/STAT3的上下游關(guān)系,今后將用miR-21-5P抑制劑或基因敲除等方式進(jìn)一步探究miR-21-5P與ERK、STAT3及推拿鎮(zhèn)痛的關(guān)系。

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