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    基于機器學習的馬尾松松花粉提取工藝研究

    2022-02-24 06:32:22羅文莉劉賽虎金莉莉
    延邊大學學報(自然科學版) 2022年4期
    關(guān)鍵詞:松花粉浸膏馬尾松

    羅文莉, 劉賽虎, 金莉莉

    (延邊大學 藥學院, 吉林 延吉 133002)

    0 引言

    松花粉是馬尾松(PinusmassonianaLamb)、油松(PinustabuliformisCarr)、赤松(PinusdensifloraSiebet Zucc)、黑松(PinusthunbergiiParl)等松科植物的花粉[1].松花粉含有油脂、多糖、黃酮類、膽堿、甾醇等多種成分[2-5],其中多糖是松花粉的主要活性物質(zhì)之一.研究表明,松花粉具有抗炎、抗腫瘤、抗氧化、抗疲勞等作用[6-9].目前,對松花粉的提取及相關(guān)研究仍停留在初級階段[10].2016年,袁桂香等利用正交試驗對馬尾松松花粉中的多糖進行了工藝優(yōu)化篩選,但該方法僅僅能對已有的試驗水平進行篩選[11],并不能對工藝范圍內(nèi)的最優(yōu)工藝進行全局求解.機器學習方法因能夠有效解決非線性問題以及進行全局尋優(yōu),因此近年來被應用于提取工藝的優(yōu)化中,并取得了良好效果[12].基于此,本文利用正交試驗和機器學習兩種方法,以松花粉浸膏、多糖提取率和綜合評分為指標,對松花粉提取工藝進行優(yōu)化和對比,以期為松花粉提取工藝的擇優(yōu)選取提供參考.

    1 試驗材料與儀器

    1.1 材料

    馬尾松松花粉(產(chǎn)于長白山),經(jīng)延邊大學藥學院安仁波教授鑒定;無水乙醇、葡萄糖、苯酚均為分析純(天津市科密歐化學試劑有限公司);濃硫酸(吉林省遼源市西安區(qū)化學試劑廠).

    1.2 儀器

    分析天平,上海精天電子儀器有限公司;多功能超純水系統(tǒng)(Unique -R20),廈門銳思捷水純化技術(shù)有限公司; WZ -180SP旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海申生科技有限公司; HH-W型恒溫水浴箱,江蘇省常州市金壇區(qū)恒豐儀器廠;紫外分光光度儀(UV -2450型),島津公司;鼓風干燥箱,金壇市恒豐儀器廠; L -500臺式低速自動平衡離心機,上海四科儀器設備有限公司.

    2 試驗方法

    2.1 松花粉浸膏的制備

    將180 g干燥馬尾松松花粉等質(zhì)量地分為9份后,分別置于9個燒瓶中.采用乙醇回流方法提取馬尾松松花粉,并將得到的提取液趁熱過濾后再用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進行減壓濃縮.濃縮后所得的膏體即為浸膏.

    2.2 松花粉多糖的提取率測定

    2.2.1對照溶液的配置

    稱取20 mg干燥的葡萄糖置于250 mL容量瓶中,加入超純水將其定容.取葡萄糖對照溶液2 mL置于試管中,加入2 mL苯酚溶液(質(zhì)量分數(shù)為6%)和5 mL濃硫酸(體積分數(shù)為98%)后將試管置于40 ℃的恒溫水浴鍋中.40 min后取出試管,室溫下保存?zhèn)溆?

    2.2.2供試溶液的配置

    取500 mg松花粉浸膏置于500 mL容量瓶中,加入超純水定容后超聲、離心(3 000 r/min,15 min).將上清液減壓濃縮至5 mL后加入15 mL無水乙醇,放置24 h(4 ℃)后離心15 min (3 000 r/min).在離心得到的沉淀中加入少量蒸餾水,沉淀溶解后加入無水乙醇(加入量為溶液體積的3倍)使溶液再次出現(xiàn)沉淀.試驗平行3次,并將沉淀物置于干燥箱中烘干(60 ℃,60 min).取5 mg烘干品,研磨后加少量水溶解后轉(zhuǎn)入50 mL容量瓶中定容.取2 mL樣品液置于試管中,加入1 mL的苯酚 (質(zhì)量分數(shù)為6%) 和5 mL濃硫酸 (體積分數(shù)為98%),靜置20 min后搖勻.將上述試管放入恒溫水浴鍋中水浴15 min (40 ℃),取出后即得馬尾松松花粉的多糖供試液[13].

    2.2.3標準曲線的繪制

    在250 mL容量瓶中,用葡萄糖標準液和超純水分別配制8.0、12.0、16.0、20.0、24.0、28.0、32.0 μg/mL的標準葡萄糖溶液[14].取1 mL苯酚溶液 (質(zhì)量分數(shù)為6%) 置于7個試管中,然后加入2 mL配制的不同質(zhì)量濃度的葡萄糖標準液;充分混勻后加入5 mL濃硫酸 (體積分數(shù)為98%),靜置10 min后搖勻;在恒溫水浴鍋(40 ℃) 中繼續(xù)靜置15 min, 然后在490 nm處測定7組試管的吸光度值[15].測定平行3次,取平均值.利用Origin軟件繪制標準曲線(以葡萄糖標準液的濃度為橫坐標,以該濃度下測定的葡萄糖吸光度為縱坐標),如圖1所示.由圖1可知,葡萄糖標準液的濃度(X)和吸光度(Y)之間存在良好的線性關(guān)系:Y= 0.014 9X-0.065 6,R2=0.996 2.

    圖1 苯酚 -硫酸法測定葡萄糖含量的標準曲線

    2.2.4松花粉多糖的含量測定

    2.2.5加樣回收率測定

    取3份馬尾松松花粉浸膏各50 mg置于試管中,并在浸膏中分別加入不同量的對照品(供試品已知量的80%、100%、120%),然后在490 nm處測定溶液的吸光度和計算其RSD值.經(jīng)計算,松花粉多糖的平均加樣回收率為98.41%,RSD=0.949%.

    2.3 工藝數(shù)據(jù)的處理

    本文根據(jù)文獻[16]中的方法對松花粉的多目標提取工藝進行綜合評分,評分公式為S=γ×D+(1-γ)×P, 其中γ為松花粉浸膏的提取權(quán)重系數(shù)(取0.4), 1-γ為松花粉多糖提取率的權(quán)重系數(shù)(取0.6).

    2.4 正交試驗的設計

    基于文獻[17],本文選取乙醇體積分數(shù)、提取溫度和提取時間作為影響因素,每個因素均選取3個水平(如表1所示).正交試驗L9(33)利用Minitab軟件設計.

    表1 正交試驗的各因素水平

    2.5 機器學習的優(yōu)化算法

    圖2為利用機器學習方法對松花粉提取工藝進行優(yōu)化的流程圖.優(yōu)化時,將正交試驗所得的數(shù)據(jù)作為人工神經(jīng)網(wǎng)絡(artificial neural network,ANN)的訓練數(shù)據(jù)集,并對訓練后的數(shù)據(jù)進行皮爾遜相關(guān)性分析(Pearson correlation analysis),以此得到各個工藝參數(shù)的影響權(quán)重.為使神經(jīng)網(wǎng)絡模型能夠快速收斂,對數(shù)據(jù)進行歸一化處理,并在訓練過程中采用K折交叉驗證(K-fold cross validation)的方式對模型進行評估,以此確保模型的泛化能力.

    圖2 利用機器學習的松花粉提取工藝優(yōu)化流程

    利用Python語言中的Pytorch框架構(gòu)建BP(back propagation)神經(jīng)網(wǎng)絡[18],并利用該網(wǎng)絡對馬尾松松花粉正交試驗提取的數(shù)據(jù)進行訓練和預測.訓練時,交叉驗證的K折數(shù)設定為6, 遍歷次數(shù)取2 000, 優(yōu)化器選用Adam, 學習率設定為0.01.在不同目標下對松花粉浸膏提取、多糖提取和綜合評分進行網(wǎng)絡結(jié)構(gòu)分析,所得的結(jié)果見表2.

    表2 不同目標下的網(wǎng)絡結(jié)構(gòu)

    由于遺傳算法在優(yōu)化數(shù)據(jù)時需給定目標函數(shù)和約束條件,因此本文根據(jù)浸膏提取、多糖提取及綜合評分的正交試驗結(jié)果給出如下約束條件: 60% ≤ 乙醇體積分數(shù) ≤ 90%, 40 ℃ ≤ 提取溫度 ≤ 90 ℃, 0.75 h ≤ 提取時間 ≤ 3.2 h.迭代數(shù)據(jù),并將種群規(guī)模設置為1 000, 最大進化代數(shù)設置為500, 重組概率設置為0.7.

    3 結(jié)果與分析

    3.1 正交試驗方法的相關(guān)性分析

    正交試驗結(jié)果如表3所示.由表3可以看出,影響浸膏提取、多糖提取及綜合評分的因素其大小順序依次為乙醇體積分數(shù)、提取時間、提取溫度.

    圖3為浸膏、多糖提取率及綜合評分的主效應圖.由圖3可知:當乙醇體積分數(shù)為90%、提取溫度為85 ℃,提取時間為3 h時,松花粉浸膏的提取率最高;當乙醇體積分數(shù)為80%、提取溫度為75 ℃,提取時間為3 h時,松花粉多糖的提取率最高;當乙醇體積分數(shù)為80%、提取溫度為85 ℃,提取時間為3 h時,綜合評分最高.

    表3 正交試驗結(jié)果

    注:R為正交試驗的極差值(由Minitab軟件計算得出).

    圖3 浸膏、多糖提取率及綜合評分的主效應圖

    3.2 機器學習方法的預測結(jié)果

    圖4為松花粉提取工藝的皮爾遜相關(guān)性分析圖.由圖4可知,影響兩種方法(正交試驗法和機器學習方法)的權(quán)重(浸膏提取率、多糖提取率和綜合評分的權(quán)重)其順序均相同,即由大到小的順序均為乙醇濃度、提取時間、提取溫度.

    圖5為基于BP網(wǎng)絡的馬尾松松花粉浸膏、多糖提取率和綜合評分的響應圖.由圖5(a)和圖5(b)可以看出,乙醇體積分數(shù)為80%時,浸膏提取率隨提取溫度或提取時間的增加而增加;由圖5(c) 可以看出,當提取溫度為75 ℃時,浸膏提取率隨提取時間的增加呈先上升后下降的趨勢;由圖5(d)和圖5(e) 可以看出,提取溫度為75 ℃或提取時間為2.5 h時,多糖提取率隨著乙醇體積分數(shù)的增加呈先上升后下降的趨勢;由圖5(f) 可以看出,提取溫度為75 ℃時,多糖提取率隨提取時間的增加而增加;由圖5(g)和圖5(h)可以看出,提取溫度為75 ℃或提取時間為2.5 h時,多糖提取率隨乙醇體積分數(shù)的增加呈先上升后下降的趨勢;由圖5(i)可以看出,提取溫度為75 ℃時,綜合評分隨提取時間的增加而增加.

    圖4 松花粉提取工藝的皮爾遜相關(guān)性分析圖

    圖5 基于BP網(wǎng)絡的馬尾松松花粉浸膏、多糖提取率和綜合評分的響應圖

    3.3 試驗工藝驗證

    圖6為種群個體目標函數(shù)值隨代數(shù)變化的曲線.由圖6可知,經(jīng)過20次迭代后,遺傳算法已找到最優(yōu)工藝值.表4為正交試驗和機器學習的優(yōu)化結(jié)果及驗證值.由表4可知,以松花粉浸膏為指標時,機器學習方法獲得的松花粉浸膏的優(yōu)化驗證值為21.06% (提取工藝為乙醇體積分數(shù)90%、提取溫度65 ℃、提取時間3.2 h) ,正交試驗的驗證值為20.98%;以松花粉多糖為指標時,機器學習方法獲得的多糖提取率的優(yōu)化驗證值為2.74%(提取工藝為乙醇體積分數(shù)81%、提取溫度89 ℃、提取時間3.2 h),正交試驗的驗證值為2.61%;以松花粉綜合評分為指標時,機器學習方法獲得的綜合評分優(yōu)化驗證值為92.01% (提取工藝為乙醇體積分數(shù)83%、提取溫度89 ℃、提取時間3.2 h),正交試驗的驗證值為89.78%.上述結(jié)果表明,機器學習法的提取率顯著優(yōu)于正交試驗法,且所得的提取率相對穩(wěn)定.

    圖6 種群個體目標函數(shù)值隨代數(shù)變化的曲線

    表4 正交試驗和機器學習的優(yōu)化結(jié)果及驗證值

    4 結(jié)論

    本文利用正交試驗設計和機器學習兩種方法,對馬尾松松花粉提取工藝進行對比研究顯示:以松花粉的浸膏、多糖提取率及綜合評分為評價指標時,采用機器學習方法獲得的松花粉浸膏、多糖提取率和綜合評分顯著優(yōu)于正交試驗設計方法,這表明機器學習可用于非線性的復雜問題的擬合,且使用該方法求解得到的極值通常為工藝的最優(yōu)解.該方法同時具有良好的穩(wěn)定性,并可降低試驗費成本和時間,因此可為松花粉的工業(yè)化提取提供參考.在今后的研究中,我們將對馬尾松松花粉多糖的生物活性進行研究,以促進馬尾松松花粉的開發(fā)和利用.

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