徐梅玲 申大年 張育珠 (青海省第五人民醫(yī)院疼痛科,西寧 810007)
神經(jīng)病理性疼痛(neuropathic pain,NP)是由外周和中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷或功能障礙引起的疼痛,神經(jīng)損傷是NP 發(fā)生的常見病因,會(huì)誘發(fā)疼痛傳感器異常表達(dá),特別是疼痛上傳通路背根神經(jīng)節(jié)(dorsal root ganglion,DRG)內(nèi)感覺神經(jīng)元傳感器的變化,且目前尚無根治方法[1]。組蛋白去乙酰化酶抑制劑(histone deacetylase inhibitor,HDACI)有穩(wěn)定情緒、神經(jīng)保護(hù)和抗炎作用,在緩解NP 中具有較好的前景,但具體機(jī)制尚不明確[2];其中丙戊酸鈉(sodium valproate,VPA)作為 HDACI 的一種,在創(chuàng)傷性顱腦損傷中可誘導(dǎo)壞死細(xì)胞凋亡、降低炎癥因子水平從而保護(hù)神經(jīng)[3]。在NP中抑制鈣鈉交換蛋白(sodiumcalcium exchanger,NCX)逆向作用可抑制 TNF-α 表達(dá)、抑制鈣離子超載作用從而緩解鎮(zhèn)痛[4]。推測VPA 可能影響NCX 的表達(dá)從而實(shí)現(xiàn)對疾病的保護(hù)。因此,本研究右側(cè)坐骨神經(jīng)結(jié)扎手術(shù)建立坐骨神經(jīng)慢性壓迫損傷(chronic constriction injury,CCI)致NP模型,VPA處理后初步探究其機(jī)制。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 SPF 級(jí)、健康雄性SD 大鼠購自上海斯萊克動(dòng)物科技有限公司,許可證號(hào):SCXK(滬)-2016-0109,體質(zhì)量(200±20)g。所有大鼠均在溫度(24±1)℃、濕度(50±5)%、12 h光照/12 h黑暗條件下自由飲水?dāng)z食,每天對鼠籠清理并消毒,定期更換墊料,暫養(yǎng)7 d。本研究經(jīng)本院倫理委員會(huì)審核并批準(zhǔn)。
1.1.2 試劑與儀器 VPA(杭州制藥有限公司,批號(hào):A2270/2CA45);NCX 激動(dòng)劑E4031(美國 MEC 公司,編號(hào):HY-15551);大鼠TNF-α、IL-1β ELISA試劑盒,一抗兔抗組蛋白去乙?;福╤istone deacetylase,HDAC)1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX、β-actin(英國 Abcam 公司,貨號(hào)分別為:ab208348、ab197742、ab19845、ab32117、ab32369、ab187139、ab177952、ab8226)。電子 Von Frey 刺激針(美國Frey Haris 纖維機(jī)械公司,型號(hào):Von Frey Hairs Von Frey Filaments);熱輻射儀(意大利 Ugo Basile 公司,型號(hào):Ugo Basile38450);實(shí)時(shí)熒光定量 PCR(real-time quantitative PCR,qRT-PCR)儀(美國 ABI 公司,型號(hào):7500);蛋白凝膠成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad 公司,型號(hào):GelDoc EZ)。
1.2 方法
1.2.1 動(dòng)物分組及給藥處理 實(shí)驗(yàn)分為假手術(shù)組、模型組、VPA 組、VPA+E4031 組,每組 10 只。所有大鼠腹腔注射40 mg/kg 戊巴比妥鈉麻醉,除假手術(shù)組外其余各組建立CCI 模型[5],分離右側(cè)坐骨神經(jīng),4.0 絲線在坐骨神經(jīng)中段間隔2 mm 結(jié)扎,共結(jié)扎4次,僅留縊痕而不阻斷血供,分層縫合皮膚。假手術(shù)組僅暴露出坐骨神經(jīng)而不結(jié)扎。參考吳飛翔等[6]鞘內(nèi)置管,左掌壓住鼠身,拇指、中指固定大鼠,沿腰中線切開皮膚,暴露L5~L6 間隙,L5 棘突處垂直剪開,剔除部分L6 棘突,暴露出L5~L6 間的三角間隙,小針穿破硬膜,夾取PE-10導(dǎo)管延穿刺孔插入1 cm 左右,閉合管口、縫合皮膚。實(shí)驗(yàn)后及建模后腹腔注射100 mg/ml 的氨芐青霉素防止感染。置管成功當(dāng)天建模后的第3、5、7、10 天VPA 組鞘內(nèi)注射1 mg/kg VPA,VPA+E4031組在同天鞘內(nèi)注射1 mg/kg VPA 和150 μg/kg E4031,VPA、E4031 均用VPS 溶媒溶解,進(jìn)針4 cm 左右,針頭斜向下,針頭觸及椎骨有抵擋感停止進(jìn)針[7]。假手術(shù)組和模型組鞘內(nèi)注射等體積VPS溶媒。
1.2.2 機(jī)械縮足反射閾值(mechanical withdrawal threshold,MWT)的測定 分別于造模前,建模后的第 1、3、5、7、10 天,所有大鼠置于有機(jī)透明玻璃箱(容積:長20 cm×寬12 cm×高20 cm)中限制其活動(dòng),箱底放0.5 cm×0.5 cm 網(wǎng)格鐵絲網(wǎng),每次實(shí)驗(yàn)前大鼠適應(yīng)15 min,測定MWT。電子Von Frey 刺激針刺激大鼠右足底,從1.0 g開始,逐漸增加纖毛折力,反射的最小刺激強(qiáng)度即為MWT,共測量3 次,計(jì)算其平均值為MWT。
1.2.3 縮足反射潛伏期(paw withdraw thermal latency,PWTL)的測定 MWT 實(shí)驗(yàn)結(jié)束 1 h,熱輻射照射大鼠右足底,其快速抬足或添足即停止,記錄持續(xù)時(shí)間即為PWTL,共測量3 次,計(jì)算平均值為PWTL。
1.2.4 ELISA 檢測脊髓中 TNF-α、IL-1β 水平 造模第14天立即處死大鼠,分離L4~L6 DRG組織置于-80℃冰箱待用;分離L4~L5 段脊髓組織,加入預(yù)冷的磷酸緩沖液,4℃、8 000 r/min 離心 10 min 收集上清,大鼠 TNF-α、IL-1β ELISA 試劑盒檢測脊髓中TNF-α、IL-1β水平。
1.2.5 qRT-PCR 檢 測 DRG 中 HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX mRNA 水平 -80℃ 冰箱取DRG,Trizol 法提總RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA,qRT-PCR儀擴(kuò)增,引物序列見表1。上樣體系:cDNA 1 μl、2×Mix 10 μl、正向引物/反向引物(10 μmol/L)各0.5 μl、ddH2O 8.0 μl。擴(kuò)增程序:95℃ 5 min,94℃20 s,62℃ 80 s,40 個(gè) 循 環(huán) 。 采 用 2-ΔΔCt法 計(jì) 算HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX mRNA 相對表達(dá)量。
表1 引物序列Tab.1 Primer sequences
1.2.6 Western blot 法 檢 測 DRG 中 HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX 蛋白表達(dá) 部分DRG加RIPA裂解液冰上研磨組織,4℃、13 400 r/min離心20 min,收集上清為總蛋白,上樣20 μg 行SDSPAGE,NC 膜轉(zhuǎn)膜,轉(zhuǎn)膜后加入一抗 HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX、β-actin 4℃ 孵育過夜,加入對應(yīng)二抗,ECL 化學(xué)發(fā)光液顯色,Image J 軟件定量掃描蛋白條帶灰度值,目的蛋白相對表達(dá)水平=目的蛋白灰度值/β-actin灰度值。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 所有數(shù)據(jù)用SPSS24.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量數(shù)據(jù)均采用表示,多組間比較行單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較行SNK-q檢驗(yàn)。P<0.05差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 VPA 對大鼠 MWT 的影響 造模前,4 組 MWT差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。建模后第1、3 天,與假手術(shù)組相比,模型組、VPA 組、VPA+E4031 組MWT 降低(P<0.05)。建模后第(5、7、10)天,與假手術(shù)組相比,模型組MWT 降低(P<0.05);與模型組相比,VPA 組MWT 升高(P<0.05);與VPA 組相比,VPA+E4031組MWT降低(P<0.05)。見表2。
表2 4組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)MWT比較(,n=10)Tab.2 Comparison of MWT at different time points in 4 groups(,n=10)
表2 4組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)MWT比較(,n=10)Tab.2 Comparison of MWT at different time points in 4 groups(,n=10)
Note:Compared with sham operation group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05;compared with VPA group,3)P<0.05.
10 d after modeling 26.23±3.15 7.15±1.061)20.66±2.082)14.46±2.153)134.700<0.01 Groups Sham operation Model VPA VPA+E4031 F P Before modeling 26.48±3.17 27.05±4.08 26.98±2.18 26.86±3.41 0.060 0.980 1 d after modeling 23.45±2.18 13.46±1.581)14.46±1.521)13.98±2.581)55.873<0.01 3 d after modeling 24.33±2.65 10.68±1.921)13.18±2.251)11.45±1.971)82.497<0.01 5 d after modeling 24.95±3.08 8.19±2.061)15.68±1.952)9.48±1.863)111.527<0.01 7 d after modeling 25.45±3.08 7.69±1.281)18.45±2.062)12.64±1.583)131.086<0.01
2.2 VPA 對大鼠 PWTL 的影響 造模前,4 組PWTL 差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。建模后第1、3 天,與假手術(shù)組相比,模型組、VPA 組、VPA+E4031組PWTL 降低(P<0.05)。建模后第5、7、10 天,與假手術(shù)組相比,模型組PWTL降低(P<0.05);與模型組相比,VPA 組PWTL 升高(P<0.05);與VPA 組相比,VPA+E4031組PWTL降低(P<0.05)。見表3。
表3 4組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)PWTL比較(,n=10)Tab.3 Comparison of PWTL of rats in 4 groups at different time points(,n=10)
表3 4組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)PWTL比較(,n=10)Tab.3 Comparison of PWTL of rats in 4 groups at different time points(,n=10)
Note:Compared with sham operation group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05;compared with VPA group,3)P<0.05.
10 d after modeling 14.67±2.17 6.01±1.621)12.98±2.532)9.89±2.413)29.659<0.01 Groups Sham operation Model VPA VPA+E4031 F P Before modeling 15.65±1.15 15.53±2.14 15.38±1.29 15.59±2.09 0.045 0.987 1 d after modeling 12.62±2.48 7.45±1.681)7.95±1.911)7.81±2.061)14.246<0.01 3 d after modeling 12.98±1.65 7.14±1.831)9.14±2.041)7.48±1.951)20.418<0.01 5 d after modeling 13.45±1.86 6.87±1.691)11.15±1.952)8.15±1.863)25.933<0.01 7 d after modeling 14.05±1.83 6.34±1.581)12.48±2.122)9.15±2.153)31.770<0.01
2.3 VPA 對大鼠脊髓中 TNF-α、IL-1β 水平的影響 與假手術(shù)組相比,模型組脊髓中TNF-α、IL-1β水平升高(P<0.05);與模型組相比,VPA 組脊髓中TNF-α、IL-1β 水平降低(P<0.05);與VPA 組相比,VPA+E4031 組脊髓中 TNF-α、IL-1β 水平升高(P<0.05)。見表4。
表4 4組大鼠脊髓中TNF-α、IL-1β水平比較(,n=10)Tab.4 Comparison of TNF-α and IL-1β levels in spinal cord of rats in 4 groups(,n=10)
表4 4組大鼠脊髓中TNF-α、IL-1β水平比較(,n=10)Tab.4 Comparison of TNF-α and IL-1β levels in spinal cord of rats in 4 groups(,n=10)
Note:Compared with sham operation group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05;compared with VPA group,3)P<0.05.
IL-1β 24.56±3.46 86.11±6.561)46.16±7.152)68.15±6.493)192.407<0.01 Groups Sham operation Model VPA VPA+E4031 F P TNF-α 186.16±21.16 406.59±15.481)248.18±31.152)374.86±24.483)192.281<0.01
2.4 VPA 對大鼠DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX mRNA 水 平 的 影 響 4 組 DRG 中HDAC8 差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與假手術(shù)組相比,模型組 DRG 中 HDAC1、HDAC2、NCX mRNA水平升高(P<0.05);與模型組相比,VPA 組DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、NCX mRNA 水平降低(P<0.05);與 VPA 組 相 比 ,VPA+E4031 組 DRG 中HDAC1、HDAC2、NCX mRNA 水平升高(P<0.05)。見表5。
表5 4組大鼠DRG中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX mRNA水平比較(,n=10)Tab.5 Comparison of mRNA levels of HDAC1,HDAC2,HDAC3,HDAC8 and NCX in DRG of rats in 4 groups(,n=10)
表5 4組大鼠DRG中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX mRNA水平比較(,n=10)Tab.5 Comparison of mRNA levels of HDAC1,HDAC2,HDAC3,HDAC8 and NCX in DRG of rats in 4 groups(,n=10)
Note:Compared with sham operation group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05;compared with VPA group,3)P<0.05.
NCX 0.98±0.11 2.18±0.151)1.56±0.182)1.95±0.243)88.462<0.01 Groups Sham operation Model VPA VPA+E4031 F P HDAC1 1.01±0.12 1.85±0.231)0.86±0.152)1.34±0.243)52.184<0.01 HDAC2 0.99±0.09 2.34±0.261)1.24±0.182)1.86±0.123)121.543<0.01 HDAC3 1.01±0.14 1.21±0.21 0.95±0.152)1.09±0.19 4.132 0.013 HDAC8 1.02±0.15 1.25±0.32 1.28±0.21 1.38±0.35 3.178 0.065
2.5 VPA 對大鼠DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX 蛋白水平的影響 與假手術(shù)組相比,模型組 DRG 中 HDAC1、HDAC2、HDAC3、NCX 蛋白水平升高(P<0.05);與模型組相比,VPA 組DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、NCX 蛋白水平降低(P<0.05);與 VPA 組 相 比 ,VPA+E4031 組 DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX 蛋白水平升高(P<0.05)。見圖1、表6。
圖1 4組大鼠DRG 中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX蛋白水平Fig.1 Protein levels of HDAC1,HDAC2,HDAC3,HDAC8 and NCX in DRG of rats in 4 groups
表6 4組大鼠DRG中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX蛋白水平比較(,n=10)Tab.6 Comparison of protein levels of HDAC1,HDAC2,HDAC3,HDAC8 and NCX in DRG of rats in 4 groups(,n=10)
表6 4組大鼠DRG中HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8、NCX蛋白水平比較(,n=10)Tab.6 Comparison of protein levels of HDAC1,HDAC2,HDAC3,HDAC8 and NCX in DRG of rats in 4 groups(,n=10)
Note:Compared with sham operation group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05;compared with VPA group,3)P<0.05.
NCX 0.11±0.02 0.46±0.051)0.13±0.022)0.34±0.043)233.469<0.01 Groups Sham operation Model VPA VPA+E4031 F P HDAC1 0.37±0.05 0.89±0.051)0.08±0.012)0.78±0.043)836.219<0.01 HDAC2 0.42±0.04 1.05±0.061)0.38±0.042)0.71±0.083)291.919<0.01 HDAC3 0.56±0.06 0.89±0.091)0.35±0.042)0.54±0.063)119.053<0.01 HDAC8 0.95±0.10 1.05±0.12 1.02±0.11 1.17±0.133)6.311<0.01
NP 一直是治療的難點(diǎn)和熱點(diǎn),神經(jīng)損傷導(dǎo)致DRG 神經(jīng)元異常興奮,不斷向脊髓背角神經(jīng)元發(fā)出沖動(dòng),脊髓組織中小膠質(zhì)細(xì)胞異常激活,小膠質(zhì)細(xì)胞異常激活可產(chǎn)生大量細(xì)胞因子、炎癥介質(zhì)等,進(jìn)而增強(qiáng)脊髓北角神經(jīng)元興奮,過量的物質(zhì)積累聚集在脊髓背角可持續(xù)誘發(fā)病理性疼痛[8-9]。阻斷神經(jīng)元的過度興奮等過程可能緩解疾病。本研究發(fā)現(xiàn),與假手術(shù)組相比,模型組MWT、PWTL 降低,提示建立模型后NP 大鼠出現(xiàn)明顯的機(jī)械痛敏和熱痛敏癥狀,可能與神經(jīng)元異常興奮有關(guān)。
NCX 通過1 個(gè)鈣離子與3 個(gè)鈉離子交換模式實(shí)現(xiàn)對胞內(nèi)外鈣濃度平衡的調(diào)節(jié),正常情況下將鈣離子從細(xì)胞內(nèi)泵出,病理狀態(tài)下將鈣離子泵入細(xì)胞,誘發(fā)細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載,而鈣離子大量內(nèi)流可激活第二信使鈣-鈣調(diào)素依賴性蛋白激酶Ⅱ,活化后與NMDAR 亞單元 2B 結(jié)合,增加 NMDAR 活性,增強(qiáng)突觸作用,增強(qiáng)痛覺[10-11]。在NP中NCX 活性增加是增加傷害性閾值的原因之一[12]。本研究發(fā)現(xiàn),與假手術(shù)組相比,模型組DRG中NCX水平升高,提示NP中確實(shí)存在鈣離子內(nèi)流,增強(qiáng)痛覺,加重NP。疼痛是神經(jīng)系統(tǒng)對傷害刺激的感覺,而補(bǔ)體與某些病理性疼痛關(guān)系密切,補(bǔ)體旁路激活會(huì)導(dǎo)致炎癥反應(yīng)和出現(xiàn)組織損傷[13]。TNF-α、IL-1β 作為炎癥因子,在NP中水平升高,且與抑郁樣行為關(guān)系密切[14]。本研究發(fā)現(xiàn),與假手術(shù)組相比,模型組脊髓中TNF-α、IL-1β水平升高,提示NP脊髓中炎癥明顯,損傷神經(jīng)元。
VPA 作為HDACs抑制劑,是臨床上常用廣譜抗癲癇藥,可通過血腦屏障進(jìn)入中樞神經(jīng)系統(tǒng),抑制神經(jīng)相關(guān)基因合成從而抑制癲癇;可降低鈉離子濃度,抑制神經(jīng)元去極化,維持神經(jīng)細(xì)胞膜穩(wěn)定性,抑制異常放電;且可降低炎癥因子水平,減少炎癥對神經(jīng)元的損傷[15]。本研究發(fā)現(xiàn),使用 VPA 后,NP 大鼠的機(jī)械痛敏和熱痛敏癥狀得以緩解,可能是VPA能降低鈉離子濃度,抑制神經(jīng)元去極化,維持神經(jīng)細(xì)胞膜穩(wěn)定性;同時(shí)減少炎癥反應(yīng),實(shí)現(xiàn)對神經(jīng)元的保護(hù),但具體抑制的HDAC 尚在探索。HDACs 作為一種翻譯后修飾酶,可去除核小體核心組蛋白氨基末端賴氨酸殘基中的乙?;?,促使染色體凝聚,從而阻止轉(zhuǎn)錄激活子進(jìn)入其靶位點(diǎn),抑制轉(zhuǎn)錄;分4 類 ,其 中 Ⅰ 類 包 括 HDAC1、HDAC2、HDAC3、HDAC8 4 個(gè)基因,與神經(jīng)發(fā)育關(guān)系密切[16]。NP 中HDAC1抑制劑LG325可顯著減輕損傷引起的疼痛,并且LG325可阻止c-Jun磷酸化途徑從而減輕傷害,但尚未發(fā)現(xiàn) HDAC3 的變化[17];升高 HDAC2 可影響下游基因水平變化可促進(jìn)鈉離子和鈣離子內(nèi)流,導(dǎo)致神經(jīng)元內(nèi)鈣離子水平升高,進(jìn)而誘導(dǎo)突觸結(jié)構(gòu)和功能的可塑性改變;同時(shí)直接影響疼痛相關(guān)因子如谷氨酸脫氫酶6 的表達(dá),且HDAC2 與炎癥基因關(guān)系密切,HDAC2 水平升高可募集炎癥基因復(fù)合物,從而降低組蛋白乙?;?、染色質(zhì)重塑[18-19]。但又有研究發(fā)現(xiàn)是HDAC2 而非HDAC1 通過調(diào)節(jié)Kv1.2 表達(dá)而參與NP 過程[20]。本研究發(fā)現(xiàn),與假手術(shù)組相比,模型組 DRG 中 HDAC1、HDAC2 mRNA 和蛋白水平升高;與模型組相比,VPA 組 DRG 中 HDAC1、HDAC2 mRNA 和蛋白水平降低,變化趨勢較一致,脊髓中 TNF-α、IL-1β 水平,DRG 中NCX mRNA 和蛋白水平降低,提示可能是通過抑制HDAC1、HDAC2從而抑制下游通路,減少炎癥水平從而加強(qiáng)組蛋白乙?;?、染色體重塑;減少鈣離子內(nèi)流,增強(qiáng)突觸結(jié)構(gòu)穩(wěn)定和增強(qiáng)突觸可塑性實(shí)現(xiàn)的。且增加NCX 水平可逆轉(zhuǎn)上述情況,提示VPA 抑制NCX 實(shí)現(xiàn)對NP大鼠的保護(hù)。
綜上所述,VPA 下調(diào) NCX 實(shí)現(xiàn)對 NP 大鼠的保護(hù),且起到緩解炎癥的作用。但VPA 抑制HDAC1或者HDAC2 或二者皆有作用影響NCX 尚不明確,是接下來研究重點(diǎn)。