魏沈芳,張順棠,劉昆侖*,段曉杰,高立棟
1.河南工業(yè)大學(xué) 糧油食品學(xué)院,河南 鄭州 450001 2.蓮花健康產(chǎn)業(yè)集團(tuán)股份有限公司,河南 周口 466200
我國是肉雞生產(chǎn)和消費(fèi)大國,每年雞肉消費(fèi)量均在1 000萬t以上[1],其中雞皮是主要副產(chǎn)物之一。大部分雞皮被用于飼料或低廉的肉糜制品中,產(chǎn)品附加值低。研究表明,畜禽皮中富含不飽和脂肪酸[2],蛋白質(zhì)含量約為11%,其中85%為膠原蛋白(collagen)[3],因此可將雞皮作為蛋白質(zhì)的優(yōu)質(zhì)來源。膠原蛋白是由3條α鏈通過肽鏈間的氫鍵相互右旋形成的三螺旋結(jié)構(gòu)[4-5],穩(wěn)定性較高,分子量較大,占動(dòng)物體內(nèi)總蛋白的30%~35%[6-7],這種特殊的三螺旋結(jié)構(gòu)能使骨、皮、肌腱、血管等組織器官具備較高的機(jī)械強(qiáng)度,以支撐器官、維護(hù)機(jī)體正常生理功能[5],對細(xì)胞、組織乃至器官行使正常功能以及損傷部位修復(fù)有著重大的影響[8]。
目前提取膠原蛋白的方法有熱水浸提法、堿提法、酸提法、酶提法和復(fù)合提取法[6]。熱水浸提法主要應(yīng)用于魚皮中膠原蛋白的提取[9],堿提法通常用于明膠的提取[10],且這2種方法由于溫度、堿濃度等難以控制,易引起膠原蛋白的變性,從而失去生物活性[11],因此很少應(yīng)用。酸提法是用乙酸、檸檬酸等將膠原蛋白溶出,維持膠原蛋白的三級結(jié)構(gòu)[12],應(yīng)用廣泛,但是提取率較低[13]。酶提法是用胃蛋白酶限制性酶解膠原蛋白的端肽,使其更易溶出,且不破壞其特殊的三螺旋結(jié)構(gòu)[14-15],該方法能顯著提高膠原蛋白的得率[14]。復(fù)合法是在前4種方法的基礎(chǔ)上,加以超聲波、脈沖等物理方法輔助提取。研究發(fā)現(xiàn),超聲波的空化效應(yīng)和機(jī)械剪切力使蛋白質(zhì)分子內(nèi)部的基團(tuán)暴露出來[16-17],促進(jìn)底物與酶的結(jié)合,故超聲波輔助法可以顯著提高膠原蛋白提取率,而且能改善其流變和功能特性[18]。如李根等[19]以鯢皮為原料,采用超聲輔助酶法提取膠原蛋白,發(fā)現(xiàn)超聲波輔助后提取率從17.56%提升至37.36%,且不會(huì)影響膠原蛋白特有的三螺旋結(jié)構(gòu);Ali等[20]以鯉魚皮為原料,比較了酸提、酶提以及加入超聲輔助對膠原蛋白的提取率與理化性質(zhì)的影響,研究發(fā)現(xiàn),在適當(dāng)?shù)臈l件下進(jìn)行超聲波處理,可以有效提高酸提和酶提的效率,且不影響膠原蛋白的理化性質(zhì);Petcharat等[21]以小丑魚皮為原料提取膠原蛋白,發(fā)現(xiàn)超聲輔助法能顯著提高蛋白得率,且超聲對分子結(jié)構(gòu)沒有產(chǎn)生不利影響。目前,超聲波輔助法多用于提取水產(chǎn)動(dòng)物副產(chǎn)物中的膠原蛋白,對畜禽類動(dòng)物提取膠原蛋白的研究較少,且超聲對其物化性質(zhì)影響的研究不足。
作者以雞皮為原材料,在低強(qiáng)度超聲波的輔助作用下,采用酶法提取雞皮中的膠原蛋白,并考察提取過程中各因素對膠原蛋白得率的影響,采用JMP軟件定制試驗(yàn),建立預(yù)測模型,優(yōu)化提取工藝,以期為雞皮膠原蛋白生產(chǎn)提供理論依據(jù)。
雞皮購于當(dāng)?shù)厥袌?,洗凈,除去表面水分后,粉碎成約2 cm×2 cm的小塊,-20 ℃凍藏備用。
羥脯氨酸含量檢測試劑盒:北京索萊寶科技有限公司;胃蛋白酶:上海源葉生物科技有限公司;氫氧化鈉(粒)、正己烷、硼酸、硫酸鉀、硫酸銅、氯化鈉、溴甲酚綠、甲基紅、冰乙酸:均為分析純。
WBL-2501A攪拌機(jī):美的集團(tuán)股份有限公司;JY92-ⅡN超聲波細(xì)胞粉碎儀:新芝生物科技有限公司;YA1072透析袋(分子量8 000~14 000):北京索萊寶科技有限公司;Kjeltec 8400全自動(dòng)定氮儀:福斯分析儀器公司;GL-10000C冷凍離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠。
1.3.1 工藝流程
采用超聲輔助酶法從雞皮中提取膠原蛋白,具體工藝流程如下。
雞皮→預(yù)處理(剪切、脫脂、去除雜蛋白)→清洗→酸溶脹→打漿→超聲波處理→酶解→鹽析→純化→凍干→膠原蛋白。
1.3.1.1 預(yù)處理
將新鮮的雞皮洗凈,并用粉碎機(jī)粉碎成約2 cm×2 cm的小塊,按質(zhì)量比1∶ 2加入正己烷浸泡脫脂(振蕩攪拌3 h,隔1 h換1次液);按質(zhì)量比1∶ 10加入0.05 g/100 mL NaCl溶液混合攪拌6 h以去除雜蛋白(每3 h換1次液),并用蒸餾水洗滌3次。以上操作均在低溫下進(jìn)行,并在-20 ℃冷凍保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.1.2 酸浸泡、打漿
取一定量預(yù)處理后的雞皮,按1∶ 20 g/mL加入0.5 mol/L乙酸,4 ℃浸泡過夜,待原料溶脹均勻后打碎成糊狀,使其充分混勻攪碎。
1.3.1.3 超聲波輔助酶法提取
向打碎的雞皮中繼續(xù)添加20倍體積的乙酸(即最終加入的乙酸總體積為雞皮質(zhì)量的40倍),攪拌成均勻的漿液后進(jìn)行超聲波處理(冰浴)。向超聲處理后的雞皮漿液中加入胃蛋白酶(15 000 U/g),調(diào)節(jié)pH值至2.0左右,在4 ℃下攪拌6 h后,以10 000 r/min離心30 min分離上清液和沉淀,上清液即雞皮膠原蛋白提取液。以上操作均在低溫下進(jìn)行。
1.3.1.4 中和、鹽析
用濃NaOH溶液調(diào)節(jié)雞皮膠原蛋白提取液pH值至7.0~8.0,攪拌并緩慢加入NaCl至濃度為1 mol/L,靜置鹽析直至出現(xiàn)白色絮狀物沉淀后離心(5 000 r/min,20 min),取沉淀,即得膠原蛋白粗提物。以上操作均在低溫下進(jìn)行。
1.3.1.5 純化、凍干
將上述沉淀充分溶解于0.5 mol/L乙酸中,完全溶解后灌入透析袋(分子截留量8 000~14 000 Da),0.1 mol/L乙酸為透析液透析24 h(每8 h換1次液),再用蒸餾水透析24 h(每8 h換1次液),經(jīng)凍干得到膠原蛋白。以上操作均在低溫下進(jìn)行。
1.3.2 指標(biāo)測定
1.3.2.1 雞皮基本成分的測定
水分的測定:參照GB/T 5009.3—2016 直接干燥法;灰分的測定:參照GB/T 5009.4—2016 食品中總灰分的測定;粗脂肪的測定:參照GB/T 5009.6—2016 索氏抽提法;總蛋白的測定:參照GB/T 5009.5—2016 凱氏定氮法。
膠原蛋白含量的測定:用羥脯氨酸試劑盒(可見分光光度法)測定。膠原蛋白的含量可由L-羥脯氨酸(膠原蛋白的特征氨基酸)含量乘以換算系數(shù)得到[19]。以吸光值為縱坐標(biāo),羥脯氨酸含量為橫坐標(biāo),制得標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.005x+0.017 2,R2=0.995。通常,羥脯氨酸的含量占14%左右,陸生動(dòng)物常用7.1為換算系數(shù)[22]。膠原蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù)(%)=羥脯氨酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)×7.1。
1.3.2.2 膠原蛋白提取率
1.3.3 提取工藝優(yōu)化
1.3.3.1 單因素試驗(yàn)
前期預(yù)試驗(yàn)的基礎(chǔ)條件為料液比1∶ 40 g/mL、酶用量1.0%、超聲波輸出功率130 W、超聲時(shí)間(持續(xù)2 s,間歇2 s)2 min、酶解時(shí)間6 h??疾炝弦罕?1∶ 40、1∶ 60、1∶ 80、1∶ 100、1∶ 120 g/mL)、胃蛋白酶添加量(0.5%、1%、1.5%、2.0%、2.5%)、超聲功率(65、130、195、260、325 W)、超聲時(shí)間(2、10、18、26、34 min)4個(gè)因素對膠原蛋白提取率的影響。
1.3.3.2 響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)
在以上單因素試驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,以料液比(X1)、加酶量(X2)、超聲功率(X3)、超聲時(shí)間(X4)為自變量,-1、0、1為3個(gè)水平,提取率(Y)為響應(yīng)值,進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)。
1.3.4 數(shù)據(jù)處理
使用SPSS 20.0進(jìn)行數(shù)據(jù)顯著性分析,應(yīng)用JMP 14.0 設(shè)計(jì)試驗(yàn)及分析結(jié)果,利用Origin 2018 繪制響應(yīng)面3D曲面圖。
雞皮的基本成分含量見表1。
表1 雞皮基本成分Table 1 Basic composition of chicken skin
2.2.1 料液比的影響
雞皮在乙酸溶液中會(huì)發(fā)生溶脹現(xiàn)象,導(dǎo)致溶液黏度較高,不利于空化作用的傳導(dǎo)[23],且會(huì)影響底物與胃蛋白酶的結(jié)合。隨著料液比減小,體系的黏度降低,超聲波的空化效應(yīng)得到充分發(fā)揮,有利于膠原蛋白的溶出,提取率升高(圖1)。當(dāng)料液比為1∶ 80 g/mL時(shí),提取率達(dá)最佳,為(24.33±0.54)%。但是料液比過小時(shí),溶劑過多,降低了超聲波在溶液中的能量分布,導(dǎo)致提取率下降[24]。因此,確定1∶ 80 g/mL為最佳料液比。
注:不同小寫字母表示有顯著性差異(P<0.05)。圖2—圖4同。圖1 料液比對雞皮膠原蛋白提取率的影響Fig.1 Effect of solid-liquid ratio on collagen extraction rate
2.2.2 加酶量的影響
當(dāng)酶用量增多,提取率呈先增加后降低的趨勢(圖2)。在加酶量小于1.5%時(shí),底物與酶充分結(jié)合,胃蛋白酶的添加會(huì)提高膠原蛋白的提取率。當(dāng)酶添加量為1.5%時(shí),提取率達(dá)最佳,為(29.68±0.27)%。當(dāng)加酶量大于1.5%時(shí),蛋白與酶的結(jié)合位點(diǎn)達(dá)到飽和,此時(shí)酶的增加不再提高蛋白提取效率,反而產(chǎn)物濃度的增高會(huì)抑制酶促反應(yīng)[25-26],從而使提取率降低。因此,選擇加酶量為1.5%。
圖2 加酶量對雞皮膠原蛋白提取率的影響Fig.2 Effect of pepsin content on collagen extraction rate
2.2.3 超聲功率的影響
隨著超聲功率的增加,超聲波的微聲流會(huì)加速傳質(zhì)擴(kuò)散,產(chǎn)生空化、震蕩效應(yīng),活化酶分子構(gòu)象及催化部位[27],提取率呈先上升趨勢(圖3)。當(dāng)功率為195 W時(shí),膠原蛋白提取率最高,為(34.90±0.16)%。但當(dāng)功率繼續(xù)增大時(shí),提取率顯著下降(P<0.05)。研究表明,當(dāng)超聲密度過大,產(chǎn)生散射衰減,形成聲屏障,影響提取效果[28]。因此,選定超聲功率為195 W。
圖3 超聲功率對雞皮膠原蛋白提取率的影響Fig.3 Effect of ultrasonic power on collagen extraction rate
2.2.4 超聲時(shí)間的影響
超聲持續(xù)時(shí)間的增加,膠原蛋白提取率先增加后降低(圖4)。超聲2~26 min,提取率逐漸上升,說明超聲波輔助能顯著增加膠原蛋白的提取率,在26 min時(shí)提取率達(dá)到最大,原料中膠原基本溶解。超聲時(shí)間繼續(xù)增大,超聲的空化效應(yīng)引起溶液局部遭受高溫、高剪切力及過高的壓強(qiáng)[29],破壞多肽鏈上的氫鍵和范德華力,導(dǎo)致蛋白質(zhì)發(fā)生變性[30],蛋白質(zhì)卷曲、再折疊,使暴露的酶位點(diǎn)包裹在蛋白質(zhì)內(nèi)部[31],從而提取率下降。而18 min和26 min無顯著性變化,考慮到時(shí)間過長增加能耗,因此,確定最佳超聲時(shí)間為18 min。
圖4 超聲時(shí)間對雞皮膠原蛋白提取率的影響Fig.4 Effect of ultrasonic time on collagen extraction rate
2.3.1 回歸模型分析
通過對上述單因素試驗(yàn)的結(jié)果分析,編制因素與水平編碼(表2)。進(jìn)行定制試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果分析(表3),利用JMP軟件得到超聲輔助提取過程的回歸方程,回歸模型及系數(shù)方差分析結(jié)果如表4、表5所示。
對回歸方程進(jìn)行方差分析見表4,模型的F值為8.51,顯著性檢驗(yàn)P<0.05,說明該模型存在顯著性差異,失擬項(xiàng)P=0.104 1>0.05 不顯著,無失擬因素存在,表明該模型對數(shù)據(jù)的擬合程度高。膠原蛋白提取率與各因素間的線性關(guān)系顯著(R2=0.894 9),表明該模型可以很好預(yù)測響應(yīng)值。
表2 因素與水平編碼Table 2 Factor and level coding
表3 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Experimental design and results
表4 回歸模型方差分析Table 4 Variance analysis of regression model
表5反映了4個(gè)因素與提取率(Y)的關(guān)系,回歸模型系數(shù)中一次項(xiàng)X3、X4對Y的影響極顯著,X1影響顯著,X2的影響不顯著,且二次項(xiàng)X22對Y的影響顯著,說明因素X1—X4對Y的影響不是單一的線性關(guān)系。根據(jù)P值可以得到對Y影響程度的順序?yàn)閄4>X3>X1>X2。
表5 回歸系數(shù)方差分析Table 5 Variance analysis of regression coefficient
2.3.2 雙因子交互作用分析
用Origin 8.5繪制兩個(gè)因素間交互作用的曲面圖,見圖5、圖6。響應(yīng)面曲面坡度可說明各因素對蛋白提取率影響的敏感度。圖5為料液比(X1)和加酶量(X2)的交互作用,其中X1曲面相對陡峭,說明其對提取率的影響更大,這是由于乙酸溶液增多導(dǎo)致體系中胃蛋白酶濃度降低,酶無法充分與底物結(jié)合,從而降低提取率。從加酶量(X2)和超聲功率(X3)的交互作用響應(yīng)面圖(圖6)可以看出,加酶量(X2)曲面變化相對平滑,表明X3的變化對提取率(Y)的影響更大,這可能是由于超聲的空化效應(yīng)使底物分散并增加酶的催化效果,從而促進(jìn)提取效率。
圖5 料液比和加酶量交互作用對雞皮膠原蛋白提取率影響的響應(yīng)面圖Fig.5 Response surface of effect of interaction between solid-liquid ratio and pepsin content on collagen extraction rate
圖6 加酶量和超聲功率交互作用對雞皮膠原蛋白提取率影響的響應(yīng)面圖Fig.6 Response surface of effect of interaction between pepsin content and ultrasonic power on collagen extraction rate
該試驗(yàn)的最大化意愿因素水平見圖7。預(yù)測分析得出:料液比為1∶ 73 g/mL,加酶量為1.58%,超聲功率為260 W,超聲時(shí)間為26 min。此條件下雞皮膠原蛋白提取率最大,為83.58%,預(yù)測最佳提取率為75.75%~91.40%。通過以上分析,以最佳提取條件進(jìn)行膠原蛋白的提取,獲得實(shí)際平均提取率為(83.42±0.65)%,試驗(yàn)值與預(yù)測值接近。
圖7 試驗(yàn)預(yù)測刻畫圖Fig.7 Test prediction profile
為了進(jìn)一步提高雞皮膠原蛋白的提取效率,采取超聲技術(shù)輔助胃蛋白酶提取雞皮中的膠原蛋白,并系統(tǒng)分析了提取過程中料液比、加酶量、超聲功率、超聲時(shí)間4個(gè)因素對提取率的影響,并采用JMP軟件定制設(shè)計(jì)試驗(yàn),對提取方法進(jìn)行優(yōu)化,得到各個(gè)因素對提取率的影響順序?yàn)槌晻r(shí)間>超聲功率>料液比>加酶量;最佳工藝為料液比1∶ 73 g/mL、加酶量1.58%、超聲功率260 W、超聲時(shí)間26 min,此條件下進(jìn)行試驗(yàn)獲得最佳提取率為(83.42±0.65)%,與模型預(yù)測值接近,證實(shí)該模型能用于雞皮膠原蛋白提取率的理論預(yù)測,說明超聲輔助酶法可以顯著提高膠原蛋白得率,為雞皮膠原蛋白工業(yè)化生產(chǎn)提供了理論依據(jù)。