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    丁苯酞和TLR4 抑制劑預(yù)處理對冠狀動脈微栓塞大鼠心肌損傷的改善作用及其機(jī)制

    2022-02-14 09:56:22黃駿文陳志清周游李浪
    山東醫(yī)藥 2022年3期
    關(guān)鍵詞:栓塞抑制劑炎性

    黃駿文,陳志清,周游,李浪

    1 廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院心血管內(nèi)科,南寧 530021;2 前海人壽南寧醫(yī)院心血管內(nèi)科

    冠狀動脈微栓塞(CME)指冠狀動脈粥樣硬化斑塊破裂后,斑塊碎片和脂質(zhì)等致血栓成分流向遠(yuǎn)端微小血管引起微循環(huán)堵塞,是冠脈介入治療(PCI)的常見并發(fā)癥之一[1]。CME容易使冠脈發(fā)生“慢血流”或“無復(fù)流”,嚴(yán)重影響患者預(yù)后[2-3]。研究表明,炎性因子參與的心肌組織局部炎性反應(yīng),與CME 所致的心肌損傷密切相關(guān)[4-5]。

    丁苯酞(NBP)在臨床中廣泛用于治療缺血性卒中,具有抗炎[6]、抗氧化應(yīng)激[7]、抗血小板聚集[8]、減少神經(jīng)細(xì)胞凋亡[9]多種分子靶點。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),NBP 預(yù)處理可減輕冠狀動脈微栓塞大鼠心肌炎癥反應(yīng)并保護(hù)心功能[10]。研究顯示,Toll 樣受體4(TLR4)抑制劑聯(lián)合右美托咪定能減輕缺氧復(fù)氧引起的心肌細(xì)胞凋亡和炎癥反應(yīng),增強(qiáng)右美托咪定單藥治療效果[11]。然而,NBP聯(lián)合TLR4抑制劑能否增強(qiáng)抗炎效應(yīng),增強(qiáng)NBP 對CME 大鼠的心肌保護(hù)作用仍未明確。2019年6月—2021年6月,本研究通過構(gòu)建大鼠CME 模型,以單用NBP 作為對照,觀察預(yù)先給予NBP 和TLR4 抑制劑的CME 大鼠心臟功能、心肌組織病理及TLR4 通路相關(guān)蛋白和炎性因子表達(dá)變化,以明確NBP 聯(lián)合TLR4 的干預(yù)效果是否優(yōu)于單用NBP,同時探討了NBP 聯(lián)合TLR4 抑制劑預(yù)處理對CME大鼠心肌損傷的改善作用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 動物、藥物、試劑及儀器 32 只SPF 級雄性SD大鼠,體質(zhì)量200~250 g,購自廣西醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心(動物合格證號SYXK 桂2020-0004)。實驗方案通過廣西醫(yī)科大學(xué)動物福利與倫理委員會審查。直徑45 μm 微栓塞球(美國Polyscience 公司),用生理鹽水調(diào)整密度為3×104/mL。丁苯酞軟膠囊(石藥集團(tuán)恩必普藥業(yè)有限公司,批準(zhǔn)文號:國藥準(zhǔn)字H20050299),用食用植物油調(diào)配成80 mg/mL。TLR4抑制劑TAK-242(美國APExBIO公司)。逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及RT-PCR 試劑盒購自Monad 公司。 兔抗鼠TLR4、兔抗鼠MyD88、兔抗鼠NF-κB、兔抗鼠IL-1β、兔抗鼠TNF-α 單克隆抗體、β-actin 單克隆抗體及熒光羊抗兔二抗購自索萊寶科技有限公司。ALCV9A 小型動物呼吸機(jī)(上海奧爾科特生物科技公司);E-Saote Mylab 彩色多普勒B 超儀(意大利百勝公司);NanoDrop 分光光度計、StepOnePlus熒光定量PCR 儀(美國Thermo Fisher Scientific 公司);T100 PCR 儀、電泳槽、轉(zhuǎn)膜儀等(美國Bio-rad 公司);FluorChem FC3 全能型成像系統(tǒng)(美國proteinsimple 公司);低溫離心機(jī)(德國Eppendorf 公司);BX50 光學(xué)顯微鏡(日本OLYMPUS公司)。

    1.2 大鼠分組及NBP 灌胃、TAK-242 尾靜脈注射、微栓塞球左心室注射 按隨機(jī)數(shù)字表法將32 只大鼠隨 機(jī)分為NBP + TAK-242 組、NBP 組、CME 組、Sham組,每組8只。NBP組CME術(shù)前予NBP 80 mg/kg連續(xù)灌胃7 d,NBP + TAK-242 組在NBP 組基礎(chǔ)上CME 術(shù) 前30 min 按2 mg/kg 尾靜脈注射0.5 mg/mL的TLR4抑制劑TAK-242,其余各組同法注射4 mL/kg的生理鹽水。 CME 術(shù)前予3% 戊巴比妥鈉按1.5 mL/kg 腹腔注射麻醉,術(shù)區(qū)剃毛、消毒,頸正中切口暴露氣管,經(jīng)口氣管插管,連接小動物呼吸機(jī)輔助通氣,于胸骨左緣剪開皮膚,鈍性分離肌肉,剪斷第2~4肋骨進(jìn)胸,開瞼器撐開肋骨,打開心包并暴露升主動脈,用血管夾鉗夾主動脈根部,CME 組、NBP組及NBP + TAK-242組立即用注射器從心尖部將直徑42 μm微栓塞球混懸液0.1 mL注射至左心室,10 s后松開血管夾,Sham 組同法注射0.1 mL 生理鹽水。待心跳平穩(wěn)后逐層關(guān)胸,待蘇醒后拔管脫機(jī)。大鼠術(shù)后6~12 h心功能明顯下降,心肌病理切片可見微栓塞提示CME模型制備成功。

    1.3 心功能檢查 術(shù)后6 h 麻醉大鼠,超聲探頭頻率12 MHz,測量左心室射血分?jǐn)?shù)(LVEF)、短軸縮短率(FS)、左心室舒張末徑(LVEDd)、左心室收縮末徑(LVEDs),連續(xù)測量3個心動周期,取平均值。

    1.4 大鼠心肌組織病理學(xué)觀察及心肌微梗死面積的測量 術(shù)后6 h,行心臟彩超后,處死大鼠,取大鼠心底部組織,放入4%多聚甲醛固定液中浸泡,12 h后取出,石蠟包埋,切片,行HE染色,普通光學(xué)顯微鏡觀察大鼠心肌組織病理學(xué)改變。行HBFP染色,普通光學(xué)顯微鏡拍照,Image J v1.80測量心肌微梗死面積。

    1.5 心肌組織TLR4 mRNA 檢測 采用RT-PCR法。心臟超聲檢查后,腹腔注射戊巴比妥鈉麻醉大鼠,沿原術(shù)口開胸取出心臟,預(yù)冷生理鹽水清洗,去除心耳、心房,心尖部用干冰冷凍后轉(zhuǎn)入-80 ℃冰箱保存。取心肌組織200 mg,按照TRIzol 試劑盒說明提取總RNA,并按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明將RNA 逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。實驗的特異性引物由Sangon 公司合成:TLR4上游引物:5'-CTGCATAGAGGTAGTTCCT-3’;下游引物:5'-TCCAGCCACTGAAGTTCTGA-3’。GAPDH 上游引物:5'-TGTGAACGGATTTGGCCGTA-3’;下游引物:5'-GATGGTGATGGGTTTC-CCGT-3’。按試劑說明設(shè)置反應(yīng)體系及參數(shù),用SYBRGREENI 法檢測PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物,每個樣本均做3個復(fù)孔檢測,結(jié)果以2-ΔΔCT表示。

    1.6 心肌組織TLR4 通路相關(guān)蛋白(TLR4、myD88、NF-κB)及炎性因子(IL-1β、TNF-α 蛋白)檢測 采用Western blotting法。取心肌組織加入RIPA裂解液與蛋白酶抑制劑,組織研磨儀中研磨,4 ℃、12000 r/min 離心15 min,取上清液,用BCA法檢測蛋白濃度,將各組樣品濃度統(tǒng)一調(diào)至10 μg/μL。配制10% 的分離膠和5% 的濃縮膠,每孔加樣5 μL,恒壓60 V 電泳,Marker分層后調(diào)至110 V 進(jìn)行電泳;恒流350 mA 60 min濕法將蛋白條帶轉(zhuǎn)至PVDF膜,用5%脫脂牛奶封閉1 h,置于TLR4、myD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α 的一抗溶液(1:1000)中,4 ℃下孵育過夜,次日TBST 洗膜后放置在相應(yīng)1∶10000 熒光二抗室溫孵育1 h;TBST 洗膜后用化學(xué)發(fā)光液顯影,全能型成像系統(tǒng)掃膜;最后,用ImageJv1.80測量條帶灰度值。

    1.7 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS25.0 統(tǒng)計軟件。采用Shapro-Wilk 檢驗數(shù)據(jù)是否符合正態(tài)分布,正態(tài)分布的計量資料以±s表示,多組比較采用單因素方差分析,使用Levene 檢驗進(jìn)行方差齊性檢驗,當(dāng)方差齊時,兩兩比較采用LSD-t檢驗,當(dāng)方差不齊時,兩兩比較采用Tambane’sT2 檢驗。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組大鼠心功能指標(biāo)比較 與Sham 組相比,其余各組LVEF 和FS 下降(P均<0.01);與CME 組相比,NBP 組 及NBP + TAK-242 組LVEF 和FS 升高(P均<0.01);與NBP 組 相 比,NBP + TAK-242組LVEF 和FS 升高(P均<0.05)。與Sham 組相比,CME 組LVEDs 增加(P<0.01);與CME 組相比,NBP組及NBP + TAK-242 組LVEDd、LVEDs 降低(P均<0.01),見表1。

    表1 各組大鼠心功能比較(±s)

    表1 各組大鼠心功能比較(±s)

    注:與Sham組相比,*P<0.05;與CME組相比,△P<0.05;與NBP組相比,#P<0.05。

    組別NBP + TAK-242組NBP組CME組Sham組LVEF(%)72.6 ± 2.4*△#68.9 ± 4.2*△56.4 ± 1.6*77.0 ± 2.1 FS(%)36.5 ± 2.2*△#33.5 ± 3.1*△25.4 ± 0.7*40.4 ± 2.2 LVEDd(mm)5.3 ± 0.55.1 ± 0.5△5.7 ± 0.45.4 ± 0.2 LVEDs(mm)3.4 ± 0.3△3.4 ± 0.3△4.2 ± 0.3*3.2 ± 0.1

    2.2 各組大鼠心肌病理學(xué)表現(xiàn)及心肌微梗死面積 HE染色顯示Sham 組未見微栓塞球及心肌梗死灶;其余各組均可見血管內(nèi)微栓塞球,微球周圍心肌細(xì)胞核溶解或消失,細(xì)胞水腫、變性,周圍可見白細(xì)胞浸潤和紅細(xì)胞滲出。與CME 組比較,NBP 組及NBP + TAK-242 組心肌細(xì)胞結(jié)構(gòu)改變較輕,炎性細(xì)胞浸潤減少,見圖1。HBFP 染色結(jié)果顯示,Sham 組心肌組織未見明顯的微梗死灶,其余各組均可見血管內(nèi)微栓塞球及周圍明顯的微梗死灶(梗死區(qū)顯紅色)。Sham 組、CME 組、NBP 組、NBP + TAK-242 組的微梗死面積占比分別為3.72% ± 0.51%、17.25% ± 1.74%、13.60% ± 1.59%、11.30% ±0.51%。與CME 組相比,NBP 組及NBP + TAK-242組的微梗死面積減?。≒均<0.01);與NBP 組相比,NBP + TAK-242 組心肌微梗死面積進(jìn)一步減?。≒<0.01)。

    圖1 各組大鼠心肌組織HE染色結(jié)果(×100)

    2.3 各組TLR4 mRNA 相對表達(dá)量比較 NBP +TLR4 組、NBP 組、CME 組、Sham 組的TLR4 mRNA 相對表達(dá)量分別為1.44 ± 0.21、1.67 ± 0.47、3.18 ±0.57、0.87 ± 0.28。 與Sham 組 相 比,CME 組TLR4 mRNA 相對表達(dá)量升高(P<0.01)。與CME 組相比,NBP 組及NBP + TAK-242 組TLR4 mRNA 相對表達(dá)量降低(P均<0.01)。與NBP 組相比,NBP +TAK-242 組TLR4 mRNA 相對表達(dá) 水 平降低(P>0.05),但差異無統(tǒng)計學(xué)意義。

    2.4 各組大鼠心肌TTLR4、MyD88、NF-κB 及炎性因子蛋白相對表達(dá)量比較 與Sham 組相比,CME組、NBP 組TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α 蛋白相對表達(dá)量升高(P均<0.05)。與CME 組相比,NBP 組及NBP + TAK-242 組TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF- α蛋白相對表達(dá)量均降低(P均<0.05)。與NBP 組相比,NBP + TAK-242 組TLR4、MyD88、IL-1β、TNF-α 蛋白相對表達(dá)量降低(P均<0.05);NBP + TAK-242 組NF-κB 蛋白相對表達(dá)量降低,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P均>0.05),見表2、圖2。

    表2 各組大鼠心肌TLR4、MyD88、NF-κB、TNF-α、IL-1β相對表達(dá)量比較(±s)

    表2 各組大鼠心肌TLR4、MyD88、NF-κB、TNF-α、IL-1β相對表達(dá)量比較(±s)

    注:與Sham組相比,*P<0.05;與CME組相比,△P<0.05;與NBP組相比,#P<0.05。

    組別NBP + TAK-242組NBP組CME組Sham組TLR40.70 ± 0.28△#0.89 ± 0.20*△0.96 ± 0.22*0.77 ± 0.23 MyD880.64 ± 0.19△#0.87 ± 0.25*△1.08 ± 0.27*0.61 ± 0.11 NF-κB 0.70 ± 0.28△0.88 ± 0.27*△1.12 ± 0.31*0.58 ± 0.18 TNF-α 0.81 ± 0.16△#1.13 ± 0.20*△1.23 ± 0.27*0.77 ± 0.23 IL-1β 0.73 ± 0.16*△#0.97 ± 0.21*△1.05 ± 0.23*0.56 ± 0.18

    圖2 各組大鼠心肌組織TLR4通路相關(guān)蛋白及炎性因子的電泳圖(Western blotting)

    3 討論

    研究顯示,CME 可導(dǎo)致心肌損傷及近、遠(yuǎn)期心功能明顯下降,與急性ST 段抬高型心肌梗死患者PCI 治療后1年內(nèi)心衰的病死率和住院率密切相關(guān)[3]。炎性因子參與CME 后心肌組織局部炎性反應(yīng),心肌炎癥反應(yīng)與CME 后心肌收縮功能障礙密切相關(guān)[4-5],抑制炎癥因子水平、減輕CME 后心肌炎癥反應(yīng)可改善CME后心功能[12-13]。

    NBP 有多種生物靶點,研究表明NBP 能減輕神經(jīng)血管炎癥,保護(hù)神經(jīng)功能[14-15]。BAI 等[6]研究發(fā)現(xiàn),NBP 可抑制大鼠急性心肌梗死后IL-1β、TNF-α表達(dá),減輕炎癥反應(yīng),抑制心肌細(xì)胞凋亡。QIU 等[16]發(fā)現(xiàn)在大鼠心力衰竭模型中,NBP 能抑制TNF-α 蛋白表達(dá)水平,保護(hù)心功能。在前期研究中,我們也發(fā)現(xiàn)NBP 預(yù)處理能減少CME 大鼠心肌IL-1β、TNF-α表達(dá)水平,減輕心肌炎癥反應(yīng),并改善CME 大鼠心功能[10]。

    TLR4/MyD88/NF-κB 信號傳導(dǎo)通路與心肌炎癥反應(yīng)、心肌細(xì)胞凋亡等密切相關(guān)[17]。SU 等[18]發(fā)現(xiàn)使用TLR4 特異性抑制劑TAK-242 可有效抑制TLR4/MyD88/NF-κB 信號通路激活,減輕CME 后心肌炎癥反應(yīng),改善心功能。另外,在大鼠CME 模型中,使用大蒜素、尼可地爾等同樣能抑制TLR4/MyD88/NF-κB信號通路激活,減輕CME后心肌炎癥反應(yīng)[19-20],提示阻斷TLR4/MyD88/NF-κB 信號通路可能成為減少CME 后心肌損傷的有效方法。本研究針對NBP 聯(lián)合TAK-242 能否增強(qiáng)抗炎效應(yīng),提高NBP保護(hù)CME所致心肌損傷的作用進(jìn)行了研究。

    本研究發(fā)現(xiàn),CME 后6 h 大鼠心功能下降,心肌組織HE 染色可見血管內(nèi)微梗塞球及周圍壞死心肌組織,白細(xì)胞浸潤明顯,心肌炎癥因子水平升高,而給予NBP 可明顯改善這種變化,與前期實驗結(jié)果基本一致。通過進(jìn)一步檢測,我們發(fā)現(xiàn)CME 大鼠心肌組織TLR4 在mRNA 及蛋白水平的表達(dá)明顯升高,同時TLR4 調(diào)控的MyD88、NF-κB 蛋白水平均升高,提示CME 后TLR4 信號通路激活參與調(diào)控CME后大鼠心肌炎癥反應(yīng)。給予NBP 后,大鼠心肌組織TLR4 mRNA 及蛋白水平的表達(dá)明顯降低,TLR4 調(diào)控的MyD88、NF-κB 蛋白及炎癥反應(yīng)因子IL-1β、TNF-α水平均降低,提示NBP可能通過抑制TLR4表達(dá),抑制TLR4信號通路激活,減輕CME 大鼠心肌炎癥反應(yīng)。在NBP 聯(lián)合TAK-242 預(yù)處理后,CME 大鼠心肌TLR4 及下游通路蛋白水平進(jìn)一步降低,心肌微梗死面積進(jìn)一步減少,大鼠心功能進(jìn)一步改善,說明NBP 聯(lián)合TAK-242 能協(xié)同抑制TLR4 通路激活,進(jìn)一步減輕心肌炎癥反應(yīng),減輕心肌損傷,提高NBP單獨(dú)用藥對CME大鼠心肌損傷的保護(hù)作用。

    綜上所述,NBP 聯(lián)合TAK-242 可能通過協(xié)同抑制TLR4/MyD88/NF-κB 信號通路信號激活,減輕CME 所致的心肌炎癥反應(yīng),從而減輕心肌損傷,改善心功能。NBP 聯(lián)合TAK-242 可能為防治CME 所致心肌損傷提供新的線索與方向。

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